Методическая статья

Иммуноокрашивание Biocytin заполненных и переработанным секций для нейрохимических маркеров

22.9K просмотров

DOI:

10.3791/54880

31 декабря 2016 г.

В этой статье

Краткое содержание

Этот протокол представляет собой метод морфологического восстановления нейронов исправленных во время электрофизиологических записей с использованием наполнения biocytin и последующего иммуногистохимического постобработки. Покажем, что толстые секции biocytin заполненные которые окрашивали и покрывали могут быть restained со вторым первичных дней антител или месяцев спустя.

Аннотация

Электрофизиологические записи клеток с использованием метода патч зажим позволили для идентификации различных типов нейронов, основанных на образцах стрельбы. Включение biocytin / neurobiotin в записи электрода позволяет ретроспективном восстановление морфологических деталей, которые необходимы для определения ветвления дендритов и регионы, ориентированные на аксонов записанных нейронов. Однако, учитывая наличие морфологически сходных нейронов с различными нейрохимических идентичностей и функции, иммуногистохимическое окрашивание для белков клеточного типа конкретных важно, чтобы окончательно определить нейроны. Для поддержания подключения к сети, срезы головного мозга для физиологических записей готовят при толщине 300 мкм или больше. Тем не менее, эта толщина часто мешает иммуногистохимического постобработку из-за проблем с проникновением антител, что требует резекции ткани. Резекции срезов является сложным искусством, часто Ресултин в потере ткани и морфологии клеток, из которых электрофизиологические данные были получены, рендеринг данных непригодным для использования. Поскольку восстановление морфологии ограничит потери данных и руководство в выборе нейрональных маркеров, мы приняли стратегию восстановления морфологии клеток первого, а затем вторичным иммунным окрашиванием. Введем практический подход к biocytin наполнения во время физиологических записей и последующего серийного иммунным окрашиванием для восстановления морфологии, с последующим restaining участков для определения нейрохимических идентичности. Мы сообщаем, что участки, которые были заполнены с biocytin нелетучие с параформальдегидом (ПФА), окрашивали и покрывали могут быть удалены и restained со второй первичной дней антитела позже. Это restaining включает в себя удаление покровного, промывка секций в буферном растворе, и инкубацию первичных и вторичных антител выявить нейрохимических идентичность. Метод является предпочтительным для устранения ДАТпотери из-за невозможности восстановления морфологии и сужения нейрохимические маркеры для тестирования на основе морфологии.

Введение

Мозг известен разнообразием в структурных и функциональных характеристик отдельных его элементов нейрональных. Понимание роли различных типов нейронов в функции мозга и патологии требует определения характеристик и однозначной идентификации нейронов. Конструктивно, морфологические признаки, определяемые сомато-дендритной месте определить потенциальные входы, которые получает данный нейрон, в то время как модель аксонов разветвление выявляет потенциальные постсинаптические цели. Структурное разнообразие нейронов была оценена со времен семенных гистологических исследований Рамона Кахаль в 1. Появление методов записи одноклеточных показало, что структурно раз....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

1. Biocytin Заполнение во электрофизиологии

Примечание: читатели могут обратиться к альтернативным источникам для основных методов записи патч-зажим и приборов 19-22, которые не конкретизируются здесь. Подробно изложенные здесь шаги предполагают, что оборудование и процедуры для патч-зажим записи уже установлены, и описание будет ограничено к деталям, связанным с biocytin-начинку и ретроспективном иммуноокрашивания. Все эксперименты, описанные в этой рукописи были выполнены на крысах.

  1. Использование vibratome, подготовить живые срезах мозга требуемой области при толщине 300 - 350 мкм 23.
  2. Подготовь....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

После успешного завершения, секции сохраняют наполнитель biocytin и иммуномечение выполняется на этапе 2 и может быть визуализируют с помощью конфокальной микроскопии или эпифлуоресцентной. Кроме того, обработанные участки будут также показывают иммуногистохимическое антигена с меткой в процессе последующей обработки на этапе 3. В блоке , показанном на фиг.2, морфология biocytin заполненные нейрон в толстой секции (300 мкм) выявляли с помощью стрептавидина визуализируетс.......

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Критические шаги в рамках Протокола

Заполнение исправленной клетки с biocytin является наиболее важным шагом для обеспечения полного восстановления морфологии. Для полного восстановления клетки, важно, чтобы выбрать оптимальную ориентацию среза, чтобы свести к минимуму Отрыв процессов во время нарезания. Эта ориентация может отличаться в зависимости от типа схемы и ячейки обследуемого. Далее, необходимо, чтобы обеспечить достаточное время для biocytin диффун.......

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторы не имеют ничего раскрывать.

Благодарности

Авторы хотели бы отметить поддержку со стороны NIH / NINDS R01 NS069861 и NJCBIR CBIR14IRG024 к VS.

....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
NaClSigmaS7653Иммуноокрашивание
KClFluka60129Иммуноокрашивание
Na2HPO4 SigmaS7907Иммуноокрашивание
KH2PO4 Sigma229806Иммуноокрашивание
Triton X-100SigmaT8787Иммуноокрашивание
морской свинки анти CB1 SigmaAf530-1Иммуноокрашивающий
Мышиный анти-CCKCure, Калифорнийский университет в Лос-Анджелеселюбезно предоставлен G. OhningИммуноокрашивающий
Кролик против парвальбуминаSwantPV27Иммуноокрашивающий
стрептавидин, конъюгат Alexa FluorМолекулярные зондыS11227Иммуноокрашивание
Нормальная козья сыворотка (NGS)SigmaG9023Иммуноокрашивание
Vectashield Vector LabsH-1000Иммуноокрашивание
Вторичные антителаИнвитоген Молекулярные зондыAlexa Фторконъюгированные красителиИммуноокрашивание
Labnet орбитальный низкоскоростной шейкерBioexpressS-2030-LSИммуноокрашивающие
щипцыDumont11231-30Иммуноокрашивание
Слайды папкиEMS71520Иммуноокрашивание
Вибратом VT 1200 SLeica14048142066Электрофизиология
Multiclamp 700B УсилительМолекулярные приборыMulticlamp 700BЭлектрофизиология
pCLAMP 10 Программное обеспечениеМолекулярные приборыpCLAMP 10 Электрофизиологии
ДигитайзерМолекулярные приборыDigidata 1440 ДигитайзерЭлектрофизиология
Фильтрующие наконечникиNalgene171-0020Электрофизиология
СоникFisher Scientific15-335-100Электрофизиология
МикрозагрузчикиEppendorf930001007Электрофизиология
БиоцитинSigmaB4261Электрофизиологии

Ссылки

  1. Garcia-Lopez, P., Garcia-Marin, V., Freire, M. The histological slides and drawings of cajal. Front Neuroanat. 4, 9(2010).
  2. Klausberger, T., Somogyi, P. Neuronal diversity and temporal dynamics: the unity of hippocampal circuit operations. Science. 321 (5885....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи