Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Геном широкий анализ HDAC ингибиторов-опосредованной модуляция микроРНК и мРНК в B клетки вынуждены подвергаются класса переключатель рекомбинации ДНК и дифференцировки клеток плазмы

5.8K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/55135

⸱

20 сентября 2017 г.

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Microbiology, Immunology and Molecular Genetics, University of Texas Long School of Medicine at San Antonio, 2Xiangya School of Medicine, Cental South University, 3Greehey Children’s Cancer Research Institute, University of Texas Long School of Medicine at San Antonio

В этой статье

Краткое содержание

Эпигенетических факторов может взаимодействовать с генетической программы модуляции экспрессии генов и регулировать функции B клеток. Объединив в vitro клетки B стимуляции, qRT-PCR и высок объём микроРНК последовательности и мРНК последовательность подходов, мы можем анализировать эпигеномные модуляции экспрессии Мирна и генов в клетки B.

Аннотация

Антитело ответы выполняются через несколько критических клетки B внутренние процессы, включая соматических Гипермутационный (ГИМ), класс переключатель рекомбинации ДНК (КСО) и дифференцировки клеток плазмы. В последние годы эпигеномные изменения или факторов, таких как гистона диацетилморфина и микроРНК (интерферирующим), было показано взаимодействовать с B-клетки генетических программах ответов антитела форму, в то время, как было установлено, что дисфункция эпигенетических факторов приводят к аутоантитела ответы. Анализ генома общесистемной Мирна и мРНК выражение в B клеток в ответ на эпигеномный модуляторы имеет важное значение для понимания эпигеномные регулирование B-клеточной функции и антител реакции. Здесь мы демонстрируем протокол для заставить клетки B пройти КСО и плазматических клеток дифференциации, рассматривая эти клетки с Ингибиторы гистоновых деацетилаз (ГДАЦ) (ГУВБ) и анализа выражение mRNA и микроРНК. В этом протоколе, мы непосредственно анализировать дополнительные ДНК — (cDNA кДНК) последовательности, используя последовательность мРНК следующего поколения (мРНК seq) и Мирна seq технологий, картирование секвенирования читает генома и количественная обратная транскрипция (qRT)-PCR. С этими подходами мы определили, что в индуцированной пройти КСО и дифференцировки клеток плазмы клетки B, ИРЧП, эпигенетических регулятор, выборочно модулирует Мирна и мРНК выражения и изменяет КСО и плазматических клеток дифференциации.

Введение

Эпигенетических меток или факторов, таких как метилирование ДНК, Посттрансляционная изменения гистона и РНК-кодирования (включая микроРНК), модулировать функции клеток путем изменения выражения гена1. Эпигенетические модификации регулировать функции лимфоцитов, например иммуноглобулинов класса переключатель рекомбинации ДНК (КСО), соматические Гипермутационный (ГИМ) и дифференциации в памяти B клетки или клетки плазмы, таким образом модулируя антитела и аутоантитела ответы2,3. КСО и SHM критически требуют активации индуцированной Цитидин Аденозиндеминазный (помощь, кодируются как Aicda), который высоко индуцируется в B клеток в ответ на Т-зависимых и T-независимая антигены4. Класс включен/hypermutated клетки B Далее дифференцироваться в плазматические клетки, которые выделяют большое количество антител в значительной степени зависит от созревания лимфоцитов индуцированного белка моды 1 (Blimp1, кодируются как Prdm1)5. Аномальные эпигеномные изменения в клетках B может привести к аномальным антитела/аутоантител ответы, которые могут привести к аллергической реакции или Аутоиммунная реакция1,4. Понимание как эпигенетических факторов, таких как адаптивной, модулировать клетки B встроенные выражения гена важно не только для разработки вакцины, но важно также выявить механизмы потенциальной реакции ненормальные антител/аутоантител.

Ацетилирование гистона и диацетилморфина являются модификациями остатков лизина на гистоны обычно катализируемой гистона ацетилтрансфераза (ШЛЯПУ) и гистоновых деацетилаз (ГДАЦ). Эти изменения приводят к рост или снижение доступности хроматина и далее разрешить или запретить связывание транскрипционных факторов или белки ДНК и изменением ген выражение5,6, 7 , 8. ингибиторы ГДАЦ (ИРЧП) являются класс соединений, которые вмешиваются с функцией гда. Здесь мы использовали HDI (VPA) для решения регулирование HDAC на профиль выражение внутренней гена B клеток и его механизм.

интерферирующим являются маленькие, -кодирования RNAs приблизительно 18-22 нуклеотидов в длину, создаваемые через несколько этапов. Мирна хост генов являются расшифрованный и формируют шпилька первичной микроРНК (pri адаптивной). Они экспортируются в цитоплазму, где pri адаптивной Далее перерабатывается в адаптивной прекурсоров (pre адаптивной). Наконец зрелый интерферирующим образуются путем расщепления pre адаптивной. интерферирующим признают взаимодополняющие последовательности в 3' непереведенные регионе их целевой mRNAs6,7. Через post-transcriptional глушителей, адаптивной регулировать клеточную активность, например распространение, дифференциация и апоптоз10,11. Поскольку несколько интерферирующим можно ориентировать же мРНК, а один единый Мирна потенциально может предназначаться нескольких мРНК, важно иметь представление в контексте выражение профиля Мирна понять значение человеческой личности и коллективный эффект адаптивной. интерферирующим было показано, быть вовлечены в развитие B-клеток периферической дифференциации, а также B-клеточной стадии конкретных дифференциации, реакции антитела и аутоиммунные заболевания1,4,9. В 3' УТР Aicda и Prdm1есть несколько проверенных или прогнозируемых эволюционно сохранены сайтов, которые могут быть объектом интерферирующим8.

Эпигеномные модуляции, включая изменения гистона после транскрипции и адаптивной, отображать шаблон типа клеток и клеток стадии конкретных правил выражение гена9. Здесь мы описываем методы для определения HDI-опосредованной модуляции Мирна и выражение mRNA, КСО и дифференцировки клеток плазмы. К ним относятся протоколы для заставить клетки B пройти КСО и дифференцировки клеток плазмы; для лечения клетки B с ИРЧП; и для анализа Мирна и мРНК выражение qRT-PCR, Мирна seq и мРНК seq10,11,12,8,13.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

протокол руководящими животных ухода институциональный уход животных и использование комитетов в университете центра науки здоровья Техас в Сан-Антонио.

1. стимуляции B клетки мыши для КСО, дифференцировки клеток плазмы и ИРЧП лечения

  1. приготовления суспензий клеток селезенки
    Примечание: выполнить все шаги в Ламинарный шкаф за исключением мыши эвтаназии и рассечение.
    1. Euthanize конкретного возбудителя свободный C57BL/6J мышь (8-12 недель возраста), CO 2 ингаляции.
    2. Лежит мыши на борту рассечения живота вверх. Закрепить все четыре ноги мыши с 18-калибровочного, иглы 1.5 - в.
    3. Стерилизации кожи с помощью 70% этанола, пропитанной салфетки.
    4. Использовать один набор газобетона хирургические инструменты (щипцы и рассечения ножницы), чтобы прорваться через кожу чуть ниже грудной клетки для визуализации селезенки (на левой стороне живота, чуть ниже печени).
    5. Использовать другой стерильный пинцет и ножницы Ножницы для извлечения селезенки, которая находится под более кривизны желудка, зажимные селезенки аккуратно пинцетом и отрезать все соединительные ткани с рассечения. Убедитесь в том удалить все соединительные ткани.
    6. Место селезенки в 1,5 мл microcentrifuge трубка, содержащая 1000 мкл полного RPMI1640 среднего (средне RPMI 1640 дополнена 10% тепло инактивированная плода теленка сыворотки (ФБС), 2 мм L-глютамином, 100 мкг/мл пенициллин, 100 мкг/мл стрептомицин, амфотерицин B 0,25 мкг/мл и 50 мкм β-меркаптоэтанол).
    7. Место стрейнер ячейки 70 мкм в 50-мл полипропиленовые конические пластиковых пробирок и залить хандры от microcentrifuge трубу на клетки ситечко. Используйте кончик трубки 15 мл полипропиленовые конические центрифуги для осторожно Маш селезенки через стрейнер. Промойте ситечко ячейки с 15 до 20 мл полного среднего.
    8. Оборотов клетки на 350 g x 5 мин и удалить супернатант.
    9. Удаление красных кровяных клеток из суспензий клеток селезенки. Ресуспензируйте Пелле ячейки в буфер lysis ACK (5 мл на селезенки). Инкубируйте 4 мин при комнатной температуре с время от времени встряхивая и затем утолить с 25 мл полной среды.
    10. Спин вниз клетки на 350 g x 5 минут и удалить супернатант. Ресуспензируйте Пелле клеток в 1 или 10 мл полной среды. Количество жизнеспособных клеток с помощью Горяева.
  2. B-клетки изоляции
    Примечание: изолировать B клеток негативный выбор после производитель ' s инструкции. Non-B клетки предназначены для удаления с биотинилированным антитела, направленные против не-лимфоцитов (CD4, CD8, CD11b, CD43, CD49b, CD90.2, Ly-6C/G (Gr-1) и TER119) и покрытием стрептавидина магнитные частицы.
    1. Подготовить 0,25-2 мл суспензии клеток 1 x 10 8 клеток/мл в полной среде в стерильный 5 мл (12 x 75 мм) полистирола раунд дно трубки. Добавление нормальных крыс сыворотка (50 мкл/мл) в.
    2. Добавьте 50 мкл/мл изоляции коктейль для образца. Mix клетки мягко дозирование вверх и вниз 2 - 3 раза и инкубации при комнатной температуре на 10 мин
    3. Добавить 75 мкл/мл стрептавидина покрытием магнитных частиц в образце. Смешайте смесь осторожно закупорить вверх и вниз 2 - 3 раза и инкубировать в течение 2,5 мин при комнатной температуре и.
    4. Добавить полный RPMI 1640 среднего. Mix клетки мягко закупорить вверх и вниз 2 - 3 раза.
    5. Положите трубку (без крышки) магнит и инкубации при комнатной температуре за 2,5 мин налить покинуть супернатанта, содержащий нетронутой клетки B в новом 15-мл конические.
    6. Количество жизнеспособных клеток с помощью Горяева и Трипановый синий пятно. Оценить чистоту клетки B cytometry анализ потока B-клеточной поверхности маркеров, например B220 и CD19.
  3. B-клетки стимуляции и ИРЧП лечение
    1. Ресуспензируйте очищенный клетки в полной RPMI 1640 среде в конечной концентрации 0,3 x 10 6 клеток/мл.
    2. Использовать плиты культуры клеток 48-хорошо для клеточной культуры. Для каждой скважины добавляют 1 мл очищенной B-клетка подвески (0,3 x 10 6 клеток/мл), ПЛАСТИНКИ (конечная концентрация 3 мкг/мл) от кишечной палочки, Ил-4 (конечная концентрация 5 нг/мл) и 0 или 500 мкм HDI (вальпроевая кислота; VPA).
    3. Инкубации клеток при 37 ° C и 5% CO 2 для 60 h qRT-PCR и высок объём мРНК - и Мирна последовательности анализа или 96 h для анализа потока цитометрии.
  4. Потока cytometry анализ КСО и дифференцировки клеток плазмы
    1. после 96 h культуры, отсоедините клетки от каждой скважины, закупорить клетки вверх и вниз несколько раз. Передача суспензию клеток в 1,5 мл microcentrifuge трубку. Спин вниз клетки на 350 g x 5 минут с помощью настольная центрифуга и удалить супернатант.
    2. Ресуспензируйте клетки с 100 мкл буфера HBSS, содержащей 1% BSA и 0,5 нг/мл флуоресцеин (FITC) - конъюгированных коза анти-– мыши IgM антител (Ab) , 0.2 аллофикоцианин нг/мл (APC)-конъюгированных крыса анти мыши IgG1 моноклональных Ab (МАБ), 0,2 нг/мл фикоэритрин (PE)-конъюгированных крыса анти мыши B220 МАБ, 0.2 нг/мл PE-Cy7-конъюгированных крыса анти мыши CD138 МАБ и 2 нг/мл 7-aminoactinomycin D (7-AAD).
    3. Инкубировать клетки с флуоресценции конъюгированных антител (шаг 1.4.2) в темноте при комнатной температуре за 30 мин.
    4. Мыть ячейки с 1 мл раствора HBSS с 1% BSA.
    5. Оборотов клетки на 1500 g x 5 минут с помощью настольная центрифуга и удалить супернатант.
    6. Ресуспензируйте клетки в 300 мкл HBSS с 1% BSA и передачи суспензию клеток в раунд дно из полистирола трубку. Обложка трубку с фольгой, чтобы избежать воздействия света.
    7. Выполнение потока cytometry анализ на одну ячейку подвеска. Соберите 50 000 событий для каждого образца, компенсации и 250 000 для других образцов. Анализировать данные с помощью программного обеспечения оборудования.
    8. Ликвидации мусора и Дуплеты с помощью импульса геометрии ворота (FSC-H x FSC-A и SSC-H x SSC-A). Надлежащим образом ворот участка на 7-AAD исключить мертвые клетки.

2. Высок-объём мРНК Seq

  1. после 60 h культуры, извлечение всего РНК из 2-4 × 10 6 клеток с использованием всего РНК изоляции комплект, который может восстановить малые РНК после производитель ' s инструкции. Включать DNase я лечения шаг.
  2. Проверки целостности РНК с помощью bioanalyzer, после производитель ' s инструкции.
  3. Использовать 500-1000 нг высокого качества всего РНК (РНК целостности номер Рин > 8.0) для РНК seq библиотека подготовки с коммерческой РНК образец pREP комплект после производитель ' s инструкции.
  4. Бассейн библиотек отдельных мРНК seq, на основе их соответствующих 6-bp индекс части адаптеров и последовательности библиотек в 50 bp/последовательности. Использовать систему ДНК высокой пропускной способности, по словам производителя ' протоколы ф.
  5. После выполнения виртуализации, использовать мультиплексирование с CASAVA для создания fastq файла для каждого образца. Выполнять чтение сопоставления и анализа биоинформатики, как ранее изложенные 11.
  6. Выровнять все последовательности чтения с их ссылку геномов (mm9 построения геноме UCSC мыши) с использованием параметров по умолчанию TopHat2 14. Процесс bam файлы из выравнивание с помощью HTSeq граф для получения сиг / ген во всех пробах.

3. Высок-объём Мирна Seq

  1. использования 100 нг-1 мкг высокого качества всего РНК, подготовленную в шаг 2.1, для малых РНК seq библиотека подготовки с использованием коммерческих малых РНК seq Кит.
  2. Ligate выродились 3 ' адаптер на 5 ′ концы начиная малых молекул РНК с комплектом коммерческих перевязки. Перевязать выродились 5 ' адаптер на 3 ′ концы начиная малых молекул РНК с комплектом коммерческих перевязки. Преобразовать РНК cDNA, обратной транскрипции и усиливать малые РНК seq библиотека по амплификации PCR с коммерческие наборы.
  3. Использовать 6% КЭ родной страница гель для изоляции окончательный малых РНК seq библиотеки. Побегите гель с 1 X TBE буфера на 200 V до тех пор, пока группа бромфеноловый синий, отслеживание краситель приближается к нижней части геля (0,5 - 1 см).
  4. Удалить гель из стекла и пятно бромидом ethidium (в воде 0,5 мкг/мл) в чистую емкость на 2-3 мин визуализировать гель полос на transilluminator УФ или другого инструмента документации гель.
  5. Вырезать из группы ~ 150-ВР, с использованием чистого бритвой и поместить его в 1,7 мл трубку.
  6. Извлечь ДНК, используя набор извлечения геля в инструкции производителя.
  7. Проверить распределение по размерам окончательный библиотека с коммерческого анализа ДНК высок чувствительности и концентрации с коммерческой dsDNA assay на производителей ' инструкции.
  8. Бассейн библиотек для амплификации и последующие последовательности запуска с коммерческой системы секвенирования ДНК высок объём за производитель ' протоколы ф.
  9. Демультиплексирования с CASAVA для создания fastq файла для каждого образца в производителя ' протоколы ф.
  10. Для малых РНК seq анализа каждого образца, используйте мерцания для малых РНК выравнивания на производителя ' s протоколы.
    1. Удалить чтений, которые выровняны загрязняющих веществ, таких как митохондрии, рРНК, грунты и так далее.
    2. Выравнивание данных в зрелые Мирна последовательностей.
    3. Выравнивание данных в последовательности цикла шпильки (прекурсор miRNA).
    4. Выравнивание данных в других малых РНК последовательности (с использованием базы данных fRNA) 15.
  11. После того, как все образцы количественно, определения дифференциального выраженной интерферирующим между различными группами/образцы. Предсказать адаптивной, выбранных мРНК или мРНК, которые могут быть объектом селективного Мирна, используя онлайн Мирна целевого прогноза инструменты, такие как TargetScan 16, микрокосм 17 и PicTar 18 .
  12. Если необходима функциональная Аннотация или путь анализ, представить предсказал гены изобретательность пути анализа (IPA) или Дэвид.

4. Количественная ПЦР (qRT-PCR) мРНК и адаптивной

  1. qRT ПЦР-анализа мРНК
    1. извлечь РНК от 0,2-5 × 10 6 клеток с использованием коммерческих всего РНК изоляции комплект, который может восстановить малые РНК, после Производитель ' s инструкции. Включать DNase я лечения шаг.
    2. Синтез cDNA от общего РНК с использованием праймера oligo-dT системы синтеза cDNA перв стренги.
    3. Количественно cDNA qRT-ПЦР с соответствующей грунтовки, используя следующий протокол 2 x реальном масштабе времени PCR Мастер микс: 95 ° C 15 s, 40 циклов 94 ° C 10 сек, 60 ° C за 30 s и 72 ° C для 30 s.
    4. Выполняет сбор данных на этапе расширения 72 ° C и анализ плавления кривой от 72 до 95 ° C.
  2. qRT ПЦР анализ Мирна
    1. аликвота РНК из образцов, подготовленную на этапе 4.1.1.
    2. , Реверс транскрибировать РНК в cDNA. Использовать коммерческие микроРНК обратной транскрипции Кит, после производитель ' s инструкции.
    3. Выполнять ПЦР в реальном времени с помощью SYBR зеленый реального времени PCR мастер смесь с 250 Нм Зрелые Мирна вперед грунтовки в сочетании с универсальным обратный грунт микроРНК.
      1. Оттепель 2 x ПЦР Мастер микс, Мирна специфического праймера вперед и реверс Универсальный грунт при комнатной температуре. Сочетание индивидуальных решений.
        2. Следующим
      2. готовят смесь реакции для тома 25 мкл за ну реакции (используется в 96-луночных ПЦР планшетов):
        2 x 12,5 Mix Master ПЦР мкл
        miRNA вперед грунтовки (2,5 мкм) 2,5 мкл
        Universal обратный грунтовка (2,5 мкм) 2,5 мкл
        RN ASE бесплатная воды5 мкл
      3. Добавить 22,5 мкл реакция смеси к 96-луночных ПЦР-планшете. 2.5 мкл шаблон cDNA (50 ПГ-3 нг) для отдельных лунках.
      4. Плотно печать фильм пластины. Центрифуга пластину за 1 мин 1000 x g и комнатной температуре.
      5. Место пластину в реальном времени циклователь и запустить программу следующие Велоспорт: 95 ° C за 5 мин, 40 циклов 94 ° C 15 s, 55 ° C за 30 s и 72 ° C за 30 s.
    4. Используйте метод ΔΔCt для анализа данных qRT ПЦР с электронной таблицей. Нормализует выражения соответствующих интерферирующим выражение малых ядерных/ядрышковые РНК Rnu6/RNU61/2, Snord61/SNORD61, Snord68/SNORD68, и Snord70/SNORD70.
  3. Статистический анализ
    1. выполнять статистический анализ, чтобы определить значения p парные и непарные студент ' s t - тест с использованием таблицы и рассматривать значения p < 0,05 а значительное.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

С помощью нашего протокола, очищенный клетки B с ПЛАСТИНОК (3 мкг/мл) и Ил-4 (5 нг/мл) за 96 ч может вызвать 30-40% КСО для IgG1 и ~ 10% дифференцировки клеток плазмы. После лечения с HDI (500µM VPA), КСО для IgG1 сократилось до 10-20%, а дифференцировки клеток плазмы снизилась до ~ 2% (рис. 1). HDI-опосредованной ингибирование КСО далее подтвердили снижение числа после рекомбинации Iμ-Cγ1 и зрелые VHDJH-Cγ1 стенограмм, которые являются отличительной...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Этот протокол обеспечивает всеобъемлющие подходы к заставить клетки B класса переключения и дифференцировки клеток плазмы; для анализа их воздействия на эпигеномный модуляторы, а именно ИРЧП; и обнаружить влияние ИРЧП на мРНК и Мирна выражение в этих клетках. Большинство из этих подходов может также использоваться для анализа влияния эпигеномные фактора на человека B-клеточной функции и мРНК/Мирна выражения. QRT-PCR и мРНК seq/Мирна seq подходы могут также использоваться для анализа клетки B изолированы от мышей, получав...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторы заявляют, что они не имеют никаких финансовых интересов.

Благодарности

Эта работа была поддержана NIH грантов Ай 105813 и 079705 Ай (для ПК), Альянс для идентификации целевых исследований волчанки в Lupus Грант ALR 295955 (для ПК) и артрит, Национальный исследовательский фонд исследования Грант (в Гц). TS была поддержана педиатрии медицинский центр, второй Xiangya больницы, Центральный Южный университет, Чанша, Китай, в контексте программы посещения медицинских студент Xiangya-UT школа медицины Сан-Антонио.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
C57BL/6 мышейJackson Labs664
Corning cellgro RPMI 1640 Medium (Mod.) 1X с L-глютамином (Размер: 6 x 500 мл; с L-глютамином)Fisher ScientificMT 10-040-CV 
FBSHycloneSH300
HyClone Антимикотический раствор антибиотика 100 млFisher Scientific - HycloneSV3007901 
β-МеркаптоэтанолFisher Scientific44-420-3250ML
Фильтры для соколиных клетокFisher Scientific21008-952   
Трипановый синий морилка 0,04%GIBCO/Life Technologies/INV15250
ACK Буфер для лизиса Fisher ScientificBW10-548E 
Счетная камера Hausser Scientific Bright-LineFisher Scientific02-671-51B
EasySep MagnetStem Cell Technologies18000
Falcon Круглодонные полистирольные трубки с колпачкомFisher Scientific14-959-1A
EasySep Набор для выделения B-клетокмыши Stem Cell Tech19854
BD Игла только 18 калибра 1,5 дюйма КОРОТКИЙ ФАСКА 100 / коробкаBD Biosciences 
PE/Cy7 антимышиное антитело CD138 (Syndecan-1)BioLegend 142513 (25 мкг)
PE-Cy7 B220 антителоBioLegend103222
7-AAD (1 мг)Sigma AldrichA9400-1MG
APC антитело против мыши/человека CD45R/B220Biolegend103212
мыши APC-IgG1 200 &микро; gBiolegend406610
FITC антимышиный IgM антителоBiolegend406506
FITC антимышиный/человеческий CD45R/B220 антителоBiolegend103206
PE античеловеческий/мышиный CD45R (B220) (RA3-6B2)Biolegend103208
HBSS 1XFisher ScientificMT-21-022-CM
бычий сывороточный альбумин, фракция V, Лечение теплового шока Fisher ScientificBP1600-100
LPS 25 мг (липополисахариды из Escherichia coli 055:B5)Sigma AldrichL2880-25MG
Рекомбинантная мышь IL-4 (без носителей)BioLegend574302 (размер: 10 мкг)
Натриевая соль вальпроевой кислотыSigma AldrichP4543
SterilGARD e3 Class II Type A2 Кабинет биобезопасностиThe Baker CompanySG404
Встраиваемый CO2 инкубатор большой емкости Водяные3950
Isotemp: модель 205Fisher Scientific15-462-5Q
5 мл полистирольная пробирка с круглым дномFisher Scientific  14-959-5
Центрифужные пробирки Corning CentriStar 15 мл Fisher Scientific 05-538-59A
1,7 мл Микропробирка, прозрачнаяGenesee22-282
Высокоскоростная пластиковая центрифуга для чтения 50 млFisher Scientific06-443-18
ELMI SkySpin CM-6MTELMICM-6MT
Ротор6М ELMI6M
Ротор 6M.06ELMI6M.06
Drummond Портативный Pipet-Aid XP Pipet ControllerDrummond Scientific4-000-101
25 мл серологические наконечники для пипетокFisher Scientific89130-900
10 мл серологические наконечники для пипетокFisherScientific 89130-898
5 мл серологические наконечники для пипетокFisherScientific 898130-896
48-луночные планшетыFisher Scientific07-200-86
Настольная центрифуга Allegra 6, не охлаждаемаяBeckman Coulter366802
ротор GH-3.8A, горизонтальный, ARIES Smart BalanceBeckman Coulter366650
Allegra 25R настольная центрифуга, охлаждаемыйсошник Beckman369434
ротором TA-15-1.5, с фиксированным угломнаклона Beckman Coulter368298
Fisher Scientific AccuSpin Micro 17Fisher Scientific13-100-675
Аналоговый вихревой смеситель Fisher Scientific Fisher Scientific02-215-365
miRNeasy Mini Kit (50)Qiagen217004
Direct-zol RNA MiniPrep kitZymo ResearchR2050
Хлороформ (около 0,75% этанола в качестве консерванта/молекулярная биология)Fisher ScientificBP1145-1
Набор ДНКазы без РНАЗ1145 (50)QIAGEN79254
NanoDrop 2000 СпектрофотометрыThermo ScientificND-2000
Superscript III Система синтеза первой нити RT-PCRInvitrogen175013897
iTaq Universal SYBR Green SupermixBio-rad 172-5121
Fisherbrand 96-луночные полуюбки ПЦР-планшеты, корпус из 25Fisher14-230-244
Microseal 'B' адгезивные уплотнителиBio-RadMSB-1001
MyiQ оптический модульBio-Rad170-9744
iCycler ChassisBio-Rad170-8701
Оптический комплектBio-Rad170-9752
BD LSR II Проточный цитометрический анализаторBD Biosciences
FACSДива программное обеспечениеBD Biosciences
FlowJo 10BD Biosciences
2100 БиоанализаторAgilent TechnologiesG2943CA
S200 Фокусно-ультразвуковой аппаратCovarisS200
SPRIworks Fragment Library System I для IlluminaBeckman CoulterA288267
cBot Cluster Generation Station IlluminaSY-312-2001
HiSeq 2000 Секвенатор геномаIlluminaSY-401-1001
TruSeq Набор для подготовки библиотеки РНК v2IlluminaRS-122-2001
TruSeq Набор для подготовки библиотеки малых РНКIlluminaRS-200-0012
NEXTflex Illumina Small Набор для секвенирования РНК v3Bioo Scientific5132-05
2200 TapeStationAgilentG2964AA
305199 бани с цифровым управлением Thermo Scientific

Ссылки

  1. Allis, C. D., Jenuwein, T. The molecular hallmarks of epigenetic control. Nat Rev Genet. 17, 487-500 (2016).
  2. Li, G., Zan, H., Xu, Z., Casali, P. Epigenetics of the antibody response. Trends Immunol. 34, 460-470 (2013).
  3. Zan, H., Casali, P. Epigenetics of Peripheral B-Cell Differentiation and the Antibody Response. Front Immunol. 6, 631(2015).
  4. Xu, Z., Zan, H., Pone, E. J., Mai, T., Casali, P. Immunoglobulin class-switch DNA recombination: induction, targeting and beyond. Nat. Rev. Immunol. 12, 517-531 (2012).
  5. Nutt, S. L., Hodgkin, P. D., Tarlinton, D. M., Corcoran, L. M. The generation of antibody-secreting plasma cells. Nat. Rev. Immunol. 15, 160-171 (2015).
  6. Bartel, D. P. MicroRNAs: target recognition and regulatory functions. Cell. 136, 215-233 (2009).
  7. Fabian, M. R., Sonenberg, N., Filipowicz, W. Regulation of mRNA translation and stability by microRNAs. Annu. Rev. Biochem. 79, 351-379 (2010).
  8. White, C. A., et al. Histone deacetylase inhibitors upregulate B cell microRNAs that silence AID and Blimp-1 expression for epigenetic modulation of antibody and autoantibody responses. J Immunol. 193, 5933-5950 (2014).
  9. Farh, K. K., et al. Genetic and epigenetic fine mapping of causal autoimmune disease variants. Nature. 518, 337-343 (2015).
  10. Nagalakshmi, U., Waern, K., Snyder, M. RNA-Seq: a method for comprehensive transcriptome analysis. Curr Protoc Mol Biol. , 11-13 (2010).
  11. Martin, J. A., Wang, Z. Next-generation transcriptome assembly. Nat Rev Genet. 12, 671-682 (2011).
  12. Luo, S. MicroRNA expression analysis using the Illumina microRNA-Seq Platform. Methods Mol. Biol. 822, 183-188 (2012).
  13. Shen, T., Sanchez, H. N., Zan, H., Casali, P. Genome-wide analysis reveals selective modulation of microRNAs and mRNAs by histone deacetylase inhibitor in B cells induced to uUndergo class-switch DNA recombination and plasma cell differentiation. Front. Immunol. 6, 627(2015).
  14. Trapnell, C., et al. Differential gene and transcript expression analysis of RNA-seq experiments with TopHat and Cufflinks. Nat Protoc. 7, 562-578 (2012).
  15. Kin, T., et al. fRNAdb: a platform for mining/annotating functional RNA candidates from non-coding RNA sequences. Nucleic Acids Res. 35, D145-D148 (2007).
  16. Agarwal, V., Bell, G. W., Nam, J. W., Bartel, D. P. Predicting effective microRNA target sites in mammalian mRNAs. Elife. 4, (2015).
  17. Griffiths-Jones, S., Saini, H. K., van Dongen, S., Enright, A. J. miRBase: tools for microRNA genomics. Nucleic Acids Res. 36, D154-D158 (2008).
  18. Anders, G., et al. doRiNA: a database of RNA interactions in post-transcriptional regulation. Nucleic Acids Res. 40, D180-D186 (2012).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

BHDAC
Геном широкий анализ HDAC ингибиторов-опосредованной модуляция микроРНК и мРНК в B клетки вынуждены подвергаются класса переключатель рекомбинации ДНК и дифференцировки клеток плазмы
Свяжитесь с нами
Рекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

Авторские права © 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.