Методическая статья

Эффективность удаления воздуха в двух лососевых рыб, радужной форели (Oncorhynchus Mykiss) и кумжа (Salmo Trutta Морфа fario)

7.5K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/56894

⸱

16 сентября 2018 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Gamete and Embryo Biology, Institute of Animal Reproduction and Food Research, Polish Academy of Science, 2Department of Salmonid Fish Research, The Stanisław Sakowicz Inland Fisheries Institute

В этой статье

Краткое содержание

Основной целью данного исследования является для стандартизации и проверить метод пневматические (воздуха зачистки) сбора яиц в радужной форели и форель. Этот метод позволяет просто и эффективно сбора яиц без необходимости массаж живота рыбы.

Аннотация

Яйцо коллекция является одной из самых важных процедур во время размножения рыб лососевых инкубаториев. Классические методы связаны с использованием ручной массаж на животы рыбы высылать яйца. Альтернативный метод использует давление газа, вводят в полость тела, что приводит последующего выпуска яиц. Считается, что этот метод является менее негативное воздействие на благополучие и яйцо качество broodstocks. Здесь мы сравниваем результаты воздуха и ручной зачистки методы в отношении один год выживания и яйцо количества и качества в двух лососевых рыб, радужной форели (Oncorhynchus mykiss) и кумжа (Salmo trutta Морфа fario). Наши результаты показывают, что воздух зачистки дали лучшее качество яиц и выше один летняя выживаемость в радужной форели. Кроме того, зачистки воздуха привело к ниже показателя смертности в группе подвергается ручной зачистки (25% против. 35%). Уровень pH и штриховка рука лишил группы был ниже, чем те из воздуха лишил группы. В случае форель качество яиц, полученные как ручной, так и воздуха зачистки методы был похож; Однако один год потери рыбы были выше в раздели авиагруппы (15% по сравнению с 0% в руки раздели рыбы). Хотя преимущества воздуха, зачистки метод над ручной зачистки с точки зрения качества яиц может не соблюдаться в всех лососевых видов, воздух зачистка процедура может быть многообещающим вариантом должен быть принят в инкубаторах, как он обеспечивает высокий уровень воспроизводимости и эффективности.

Введение

И радужной форели (Oncorhynchus mykiss), кумжа (Salmo trutta Морфа fario) принадлежат к семейству лососевых ихтиологии1. Производство этих двух видов в мирового аквакультурного приобрела быстрого роста, вследствие их коммерческого и рекреационного значения. В Польше производство лососевых рыб составляет около 20 000 тонн, с радужной форели, будучи доминирующим видом. С другой стороны ручьевая форель представляет источник основных ресурсов пресноводных рыб в Европе из-за его коммерческую ценность в области аквакультуры и важность для ловли. Во многих водных экосистемах существование кумжа население находится под угрозой. В результате Искусственное воспроизводство был применен для пополнения местного населения этого вида2.

Ручьевая форель и радужная форель достигает половой зрелости обычно в возрасте трех лет, с самцами, созревания на год раньше, чем самки1. В искусственных условиях яйца и спермы и радужная форель ручьевая форель обычно собираются нежный массаж живота. На практике, в небольших масштабах зачистки ручной метод сбора яиц является экономически эффективным. Однако в больших масштабах, метод ручной зачистки может быть трудоемкой и изнурительной. В результате этот метод может привести к сломанной яиц из-за усталости Хатчери работников. Обрыв яиц часто приводит к снижению рН яичников жидкости и выпуск яичного желтка, оба из которых негативно сказаться на оплодотворение яйца3. Кроме того этот традиционный метод сбора яиц (неоднократно нажимая живота) может также привести к broodstock смертности, вызванной инфекции кожи, связанные с ухудшением защитный барьер слизи.

Пневматический метод сбора яиц был впервые использован в Австралии в 19574. Метод основан на инъекции газы (воздух, азот или кислорода) в полость тела высылать яйца с помощью давления газа. Это быстрый и простой метод успешно применяется в лососевых рыб без каких-либо негативных побочных эффектов на рыб4. Недавно этот метод был использован в диких видов (щука, Esox lucius) собрать Зрелые яйца в искусственные условия5. Было показано, что воздуха раздели яйца выше оплодотворение и инкубационные ставки по сравнению с ручной раздели яйца, независимо от решения, используемых для оплодотворения (раствор Woynarovich, Billard буфер или инкубатор воды)5.

Основной целью данного исследования было для тестирования метода пневматические (воздуха зачистки) сбора яиц в радужной форели и форель по сравнению с традиционной ручной зачистки метод. Эффективность обоих методов (объем полученных яйца) и время сбора, качество гамет (яичников жидкости рН), а также штриховки и после нереста смертности были сопоставлены.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Процедуры были проведены в соответствии с местным комитетом по этике животных эксперименты в Ольштыне, Польша.

1. Подготовка оборудования

  1. Используйте шприц и игла для инъекций газа в полость тела рыбы.
  2. Установите давление газа на 0,5 бар и поддерживать это давление, чтобы быть ниже 1 бар во всем.
  3. Контроль потока воздуха. Для лососевых рыб 1,5 Л/мин является наиболее эффективным скорость истощения газа. Поддерживать оптимальную скорость, потому что выше скорость не может получить все яйца в то время как медленнее скорость может излишне затягивать процедуру.
  4. Подключите шприц с иглой резьбовой (0,8-1,2 мм диаметр) чтобы избежать иглы отряда, вызванные давление газа.

2. Воздушный нереста

  1. Анестезировать рыба с 0,2% Propiscin. Место рыбы в водяной бане с 0,2% Propiscin и ждать, пока рыба перестает отвечать на запросы.
  2. Тщательно высохнуть перед нерестом, вытирая сухой хлопчатобумажной тканью.
  3. Место рыбы на наклонной кровать о 35-40°, на ее стороне стороне хвоста вниз. С мягкий толчок брюшко рыбы проверьте поток яйцо из половых путей. Если яйца не присутствуют, рыбы не должны быть породил.
  4. Поместите контейнер с сеткой ниже соска рыбу собирать яйца.
  5. Быстро Вставьте иглу ниже брюшной плавники.
  6. Свободно удалите яйца, газ до тех пор, пока только сингулярных яйца удаляются из тела рыбы.
  7. Нежно массируйте живот, чтобы удалить излишки газа из тела рыбы.
  8. После нереста, мягко передавать рыбы танк с потоком воды. Рыба, выпущен в бак после нереста воздуха может первоначально плавают на поверхности воды. После нескольких минут рыба выпускает оставшийся газ во время купания и начинает плавать нормально.
    Примечание: Полученные яйца очень чистой и свободной от заражения крови или Кале.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Самцов и самок радужной форели (возраст 2 +, 1700 ± 328 g) и кумжа (возраст 3 +, 1900 ± 435 g) были получены из лососевых рыбопитомник (Рутки Żukowo, внутреннему рыболовству институт в Ольштыне, Польша). Мужчины и женщины были размещены в отдельных резервуаров объемом около 5 м3. Температура воды была 12±1 ° C. До манипуляции, рыбы были под наркозом с 0,2% Propiscin. Рыбы были разделены на две группы. Часть из них прошел традиционный метод, чтобы получить яйца,

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Пневматический метод сбора яиц из рыбы, хотя больше времени, чем традиционный метод (ручной зачистки), может обеспечить высокое качество зрелой яйцеклетки (эта работа). Это связано с низким риском механического разрушения яйца при применении этой процедуры. Высокий рН в яичнике жидкости, а также увеличение коэффициента оплодотворения, свидетельствуют о полезности пневматический метод. В целом воздуха, зачистки метод сбора яиц в воспроизводство рыб может быть многообещающим вариантом с точки зрения стандартизации протокол...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторы не имеют ничего сообщать.

Благодарности

Представлены исследования был поддержан проект «пневматический метод зачистки рыбы - возможного применения, влияние на гамет качества и количества и благополучия рыбы» (акроним: PNEUFISH) финансируемых «оперативной программы развития рыбного хозяйства Сектор и прибрежных районах 2007 - 2013 годы» (OR-61724-OR1400001/10), средств, ассигнованных институт репродукции животных и продовольствия исследований Польской академии наук, Ольштын, Польша и поддерживать стоимость бюро (продовольствие и сельское хозяйство стоимость действий FA1205: AQUAGAMETE ). Мы хотели бы поблагодарить, Стэнли Савельева Угву за огромную поддержку в английском редактирования. Мы хотели бы также признать производителей анимации «Studio Filmowe Ruchome Obrazki».

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Глицин чистый.А.AVANTOR527560117активирующий сперму буфер
Основание ТризмаSigma AldrichT1503активирующий буфер спермы
Хлорид натрия БиореагентSigma AldrichS5886активирующий сперму
Хлорид кальция безводныйSigma AldrichC4901сперматозоидный активирующий буфер
Прописцин (0,2% раствор этомидата)IRS Ольштын, Польшане указан
компрессорThomas  Шебойган, штат Висконсин, США DT/SR 070800001882
Camozzi Воздушный шланг cRJUS U7J
ZEC T.P.U.  Ш.98&nбсп;
syrgineEFD7012118
Нерестовая стадия воздухаBiopasz, ПольшаPNEU001
Электрод Orion Ross UltraThermo Scientific, Уолтем, Массачусетс, США8102BNUWP
Редукционный клапан

Ссылки

  1. Nelson, J. S. Fishes of the World. , 4th, JohnWiley and Sons, Inc. Hoboken, NJ, USA. (2006).
  2. García-Marín, J. L., Sanz, N., Pla, C. Proportions of native and introduced brown trout in adjacent fished and unfished Spanish rivers. Conservation Biology. 12, 313-319 (1998).
  3. Dietrich, G. J., Wojtczak, M., Slowinska, M., Dobosz, S., Kuzminski, H., Ciereszko, A. Broken eggs decrease pH of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) ovarian fluid. Aquaculture. 273, 748-751 (2007).
  4. Zurbuch, P. E. A structure for easy fish recovery during drainage of an impoundment. Progressive FishCulturist. 27, 237-238 (1965).
  5. Cejko, B. I., et al. Effects of different stripping methods of female and activation medium on fertilization success in northern pike (Esox lucius). Czech Journal of Animal Sciences. 10, 481-486 (2016).
  6. Morisawa, S., Morisawa, M. Induction of potential for sperm motility by bicarbonate and pH in rainbow trout and chum salmon. Journal of Experimental Biology. 136, 13-22 (1988).
  7. Billard, R., Cosson, J., Perchec, G., Linhart, O. Biology of sperm and artificial reproduction in carp. Aquaculture. 129, 95-112 (1995).
  8. Iuchi, I., Ha, C. R., Sugiyama, H., Nomura, K. Analysis of chorion hardening of eggs of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Development Growth and Differentiation. 38, 299-306 (1996).
  9. Wojtczak, M. A., Kowalski, R. K., Dobosz, S., Goryczko, K., Kuźminski, H., Glogowski, J., Ciereszko, A. Assessment of water turbidity for evaluation of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) egg quality. Aquaculture. 242, 617-624 (2004).
  10. Tabrizi, E. N., Khara, H., Nezami, S. A., Lorestani, R., Shamspour, S. Broken Eggs Influence on Fertilization Capacity and Viability of Eggs, Turbidity and pH of Ovarian Fluid and Fertilization Water in the Endangered Caspian Brown Trout, Salmo Trutta Caspius. International Journal of Biology. 3 (1), 161-166 (2011).
  11. Carl, G. C. Beware of the broken egg! A possible cause of heavy losses of salmon eggs. Progresive Fish-Culturist. 53, 30-31 (1941).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи