Методическая статья

Свинину как учебный модуль для головы и шеи микрососудистой реконструкции

DOI:

10.3791/58104

29 сентября 2018 г.

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Здесь мы представляем собой протокол для использования лоскут перфоратор превосходной эпигастральной артерии свиньи как учебный модуль для головы и шеи микрососудистой реконструкции.

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Живой модели, которые напоминают хирургические условия людей необходимы для подготовки свободных лоскут заготовки и анастомоза. Животные модели для учебных целей были доступны для лет во многих хирургических областях. Мы использовали самка (потому что они просты в обращении для процедуры) Йоркшир свиней для реконструкции головы и шеи при уборке perforator глубоко нижней эпигастральной артерии или лоскут перфоратор превосходной эпигастральной артерии. Анастомоз сайта (дефект кожи шеи или дефект стенки трахеи) был подготовлен через диссекция общей сонной артерией и внутренней яремной вены, в котором 3,5 × Увеличение лупы был использован для анастомоза, как мы используем на случаи заболевания людей в реальной жизни. Данная процедура демонстрирует новый метод обучения, с использованием надежных обучения модели и предоставляет подробное анатомии в сценарии живой. Мы сосредоточились на время ишемии, сбора урожая, судно анастомоза и проектирование лоскут, чтобы поместиться на сайте дефекта. Эта модель улучшает обработку ткани и с применением надлежащих инструментов может повторяться много раз, так что хирург полностью уверены, перед началом операции на людях.

Введение

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Реконструкция после хирургии головы и шеи злокачественных заболеваний является сложной процедуры, связанной с значительным заболеваемости. Микроваскулярная бесплатно лоскут реконструкции была создана хорошо как стандартный подход к реконструкции для более чем 20 лет1,2,3. Бесплатно лоскут передачи играет значительную роль в улучшении управления головы и шеи в раковых больных и Посттравматические повреждения, тем самым раздвигая границы хирургическое иссечение болезни за пределами предыдущих методов, что приводит к большей пациента качество жизни и больше выживание ставки1,2,3. Различные клапаны для реконструкции включают вращения, взяточничество и свободной закрылки.

Расширилась роль свободного заслонки в реконструкции головы и шеи. Это наиболее сложных лоскут, чтобы работать с, требующих квалифицированной и деликатного обращения. Лоскут отказ является катастрофическое событие, с значительным заболеваемости4,5. Таким образом значительные учебного времени требуется для разработки точности, необходимой для успешного хирургического результаты3,4,5,6,,78, 9. Крутой кривой обучения, связанного с такой операции может повлиять на результаты для пациентов и влияют на лечение управления3,4,5,6,7, 8,9. Чтобы сократить время обучения и кривой обучения для новых хирургов, модель обучения необходима который имитирует биологии человека и обеспечивает аналогичные операционного поля условия8.

Цель этого исследования заключается в том, чтобы показать видимость свинину в качестве хорошей учебный модуль для головы и шеи микрососудистой реконструкции, напоминающий человеческий случай с улучшение навыков в активной форме.

Это исследование изучали использование свинину модели для подготовки новых коллег в головы и шеи микрососудистой реконструкции для свободного лоскута передачи для обеспечения рентабельной и меньше стрессовых дополнение к клинической полевой подготовки с надежно аналогичные возможности для свободного лоскута процедур. Свиньи были использованы для многих исследований и обучения моделей для различных хирургических реконструкций, например, реконструкции груди; 5 однако, свиньи никогда не были использованы для реконструкции головы и шеи за исключением в нашем исследовании трахеи реконструкции благодаря стеноз трахеи10.

Идея была начата после Фредерик Бодин7, которые описывают аналогичный клапан для реконструкции груди. Главное преимущество для исследования над другой модуль микрососудистой обучения является активной livening модуль с реальной непосредственным результатом процедуры.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Это исследование руководствовался и одобрены Департаментом лабораторных животных ресурсов, Йонсей биомедицинских научно-исследовательского института, Йонсейского университета медицинский колледж, аккредитованных в ассоциации оценки и аккредитации лабораторных животных уход Международная. Это исследование следовали руководящим принципам для ухода и использования лабораторных животных Института лабораторных животных ресурсов Комиссии по наук о жизни, Национальный исследовательский совет. Все свиньи были акклиматизировались на одну неделю до операции.

1. Подготовка

  1. Держите свиней без пищи в течение более чем 12 h перед общей анестезией с бесплатным доступом к воде.
    Примечание: Шесть женщин Йоркшира свиней были использованы весом 25 – 30 кг.
  2. Используйте 16 иглы длиной 1 см придать внутримышечно alfaxan (1 мг/кг), Ксилазина (2 мг/кг) и азаперон (2 мг/кг) сзади и ниже уха инициировать анестезии.
  3. Бритье передней средней линии шеи и брюшной стенки свиньи, используя бритву удаления хирургической волос.
  4. Безопасные внутривенного (IV) маршрут через Вену Центральной или маргинальных уха на задней стороне ушной раковины с иглой 22 G. Придать кеторолак (1 мг/кг) через IV линии.
  5. Затем ввести атропин (0,04 мг/кг) внутримышечно, как описано в 1.2. Вводить внутримышечно, как описано в 1.2 цефазолина (30 мг/кг).
  6. Положите свиньи, лежа в лежачем положении над столом операционной комнате.
  7. Разрешить свинья дыхание 2 Л кислорода с 5% изофлюрановая через свиной анестезии маска спонтанно.
  8. Подвергать голосовых связок через рот с помощью ларингоскоп и распылить их с двумя затяжек 2% лидокаин актуальные решения для предотвращения интубации индуцированной ларингоспазм.
  9. Интубировать с 6,5 мм трубки, завысить трубки манжеты с 3-5 мл воздуха с помощью шприца без иглы, прилагается к нему.
    Примечание: Выполнение capnometry для обеспечения что трахеи трубку, которая является частью анестезия машины, находится в правильном положении и CO2 на машину как признак правильного оксигенации.
  10. Поддержания анестезии после интубации с 2% изофлюрановая.
  11. Используйте мазь ветеринар на свинью в глаза и закрыть его с глаз патч обложки.

2. процедура: Прием сайт

  1. Вылечить шею и брюшной стенки с скраб на основе йода раствор 1%.
  2. Начало средней вертикальной линии разреза в передней шеи, с помощью лезвия № 23 до грудины.
  3. Рассечь мышцы ремень и отозвать боков с помощью Келли ткань ножницами и Lahey втягивающего устройства.
  4. Разоблачить трахеи от первого кольца грудной к входу.
  5. Затем разоблачить общей сонной артерией и внутренней яремной для анастомоза.
  6. Создание окна в втором или третьем хрящ трахеи, ~ 1 см в ширину с помощью лезвия № 11.
  7. Ищите эндотрахеальную трубку через трахеи дефект создан и убедитесь, что продолжение аэрации через трубку с помощью вентилятора без утечки.

3. процедура: Заслонки сайт

Примечание: Урожай лоскут перфоратор (СЕАП) Улучшенный эпигастральной артерии могут выполняться, по методу, описанному Frederic Бодин7.

  1. Дизайн лоскут на верхней части живота, хирургические маркер ручка (рис. 1A).
  2. Создание эллиптической Кожный разрез 4 x 3 см, с помощью скальпеля № 23 к оболочке передней брюшной стенки на медиальной стороне обращается клапан (рис. 1B).
  3. Поднимите (пил) щиток от Прямая мышца оболочка ищет перфораторы, собирается кожного лоскута удерживая фасции, Эллис.
  4. Выполните внутримышечной диссекции и следуйте перфораторы Улучшенный эпигастральной судам (рис. 1B)
  5. Теперь выполняют боковой разрез на разработанные заслонки (рис. 1A) с помощью скальпеля № 23 (рис. 1 c)
  6. Зажим Улучшенный эпигастральной судов и полых comitantes с кровоостанавливающий главно и использовать Келли ткань ножницы сократить ниже кровоостанавливающий и перевязать судна над кровоостанавливающий, шов 3-0. Затем снять зажим.

4. анастомоза и закрытие

  1. Положите на хирургические лупа.
  2. Зажим сонной артерии, используя два hemostats с расстояния 1-2 см между ними.
  3. Использование микро ножницы, чтобы вырезать между сонной артерии и галстук верхней части с двойной шов застраховать не сочится.
  4. Используйте двойной зажим без рамки между сонной артерии и лоскут артерии.
  5. Запустите анастомоза с помощью 10-0 шов простой полная толщина интерпретировать.
  6. Первые два пребывания зашивает около 120 градусов друг от друга на судна окружность, а затем между место 2-3 строчки.
  7. Отпустите зажим. Если есть кровь сочилась сделать аналогичные шовный материал на объекте Боллом.
  8. Ищите венозного оттока из полых comitantes.
  9. Выполните анастомоза, как описано в шаге 4.1 до 4,7 для внутренней яремной вены и полых comitantes (рис. 1 d).
  10. Используйте размер иглы шприца 18 колоть кожу для обеспечения жизнеспособности лоскут, видя капли крови.
  11. Закройте окно трахеи и шовный материал с мышечной фасции ППОС заслонки с помощью швов 3-0.
  12. Неубранной и шовные кожи весло ППОС заслонки для шейки матки срединной Кожный разрез (рис. 2A).
  13. Закройте брюшной Кожный разрез (рис. 2B).

5. послеоперационный уход

  1. Получите обратно свиньи в лежачем положении.
  2. Остановить изофлюрановая и отучить свиньи из вентилятора.
  3. Разрешить свинья восстановить в клетке, животных и контролировать его внимательно, чтобы обеспечить ее гладкой восстановления от процедуры.
  4. Ищите лоскут на сайте реконструкции после заживления (рис. 2 c).
  5. Посмотрите на сайте доноров в животное после заживления (Рисунок 2D).
  6. Начать рингера лактата в размере 150 мл/ч до полного восстановления и администрировать бупренорфина 0,3 мг для обезболивания.
  7. После экстубации следить свиньи до тех пор, пока он достаточно сознание для поддержания позиции и дыхание и умеет пить спонтанно.
  8. Держите послеоперационный свиней в разделенных место от не эксплуатируемых животных.
  9. Начните внутримышечной амоксициллин – клавуланат (14 мг/кг) за 1 неделю.
  10. Начните внутримышечной мелоксикам (0,2 мг/кг) за 1 неделю.

6. эвтаназии

  1. Запустите анестезии для свиньи путем введения пропофола через и.в. (5-10 мл) и поддерживать его с изофлюрановая 5%.
  2. Интубировать свиньи, как описано на шаге (1.1, 1.2, 1.6-1.10).
  3. Вызвать остановку сердца, внутривенные инъекции 40 ммоль KCl.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Мы выполнили процедуру на шесть свиней: реконструкция дефект шейки матки кожи на двух свиней, трахеи реконструкция двух свиней, и свободным лоскутом проверить устройство сосудистого анастомоза в двух свиней. Свиней наблюдали за 3 месяца, и нет никаких клинических признаков неврологического дефицита.

Среднее время ишемии был 50 мин (диапазон, 35-80 мин); время уменьшилось, поскольку процедура повторяется. Средний урожай время шес...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Значительные заболеваемости и дефекты могут произойти в голове и шеи во время хирургического лечения больных злокачественными опухолями. Микроваскулярная бесплатные ткани передачи стала необходимой для реконструкции в большинстве случаев. Жизнеспособность лоскут является одним из важнейших вопросов, требующих уравновешенность, точная обработка ножке, тактильные ощущения, visuospatial способности и отличные постановляющей части потока от хирурга8. Чтобы развить эти навыки, необходимо обширную практ...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы не имеют ничего сообщать.

Благодарности

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эта работа была финансируется и поддерживается базовой программы исследований науки через национальных исследований фонда из Кореи (NRF) финансируется министерством науки, ИКТ и будущего планирования (2015R1C1A1A01051907). Эта работа была также поддерживается базовой программы исследований науки через национальных исследований фонда из Кореи (NRF) финансируется министерством науки, ИКТ и будущего планирования (СР 2016M3A9E9941746).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Pigs XP Bio, Сеул, Южная Корея
Хирургическая бритва для эпиляции3M
22 gage катетерB.BRAUN
шасси с иглой размер 18Jung Rim Medical
Intramuscular alfaxanCareside10ml/VAL
IntramuscularxylazineBayer
Азаперон внутримышечноСигма-олдрич34223
Атропин внутримышечноDaewon0,5 мг/А
Цефазолин внутримышечноЮхан
внутривенно КеторолакХана Фарм30мг
Маска для свиной анестезииDRE1392
эндотрахеальная манжета трубка 6,5 ммСМИТ медицинский100/150/065
Аппарат для анестезииDrä PRIMUS IE
2% раствор лидокаина для местного примененияTaejoon
vet мазьPfizerterramycin figure-materials-1
повязка для покрова глазInnomedS-universal010S
раствор бетадина 1%.Korea Pharma
марля 4*4First Medical22*30CM 320S
лезвие No23Paragon23
lahey ретракторV.MuellerSU3960
келли ножницы для салфетокSOLCO05-1990
лезвие No11Paragon11
хирургическая маркировочная ручкаAspen SurgicalОбычный #2750
allisV.MuellerSU4055
галстук шовныйCovideinбезигольный
3,5&кратный; хирургическая лупаzeisseyemag умный
двойной зажим без рамкиV.MuellerCH7155
микроножницыAESCULAPFD038R
лактат РингераDaehan500ml/1bag
amoxicillin– клавуланатIlsung0,6 г/V
MeloxicamSamil7,5 мг
пропофолDong Kook120 мг/V
внутривенный раствор KClDaehan20ml/50P
комар изогнутыйSOLCO013-0111
комар прямойSOLCO05-1050
этилон 10-0 шовethicone10/0W1756
Викрил 3-0.ethicone3/0W9890
бупренорфинHanlim0.3мг
ger

Ссылки

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Chen, C. L., Zenga, J., Roland, L. T., Pipkorn, P. Complications of double free flap and free flap combined with locoregional flap in head and neck reconstruction: A systematic review. Head & Neck journal of the Science and Specialties of the Head and Neck. 40 (3), 632-646 (2018).
  2. Smith, R. K., Wykes, J., Martin, D. T., Niles, N. Perforator variability in the anterolateral thigh free flap: a systematic review. Surgical and Radiologic Anatomy. 39 (7), 779-789 (2017).
  3. Bauer, F., Koerdt, S., Hölzle, F., Mitchell, D. A., Wolff, K. D. Eight free flaps in 24 hours: a training concept for postgraduate teaching of how to raise microvascular free flaps. British Journal of Oral and Maxillofacial. 54 (1), 35-39 (2016).
  4. Schoeff, S., Hernandez, B., Robinson, D. J., Jameson, M. J., Shonka, D. C. Jr Microvascular Anastomosis Simulation Using a Chicken Thigh Model: Interval Versus Massed Training. The Laryngoscope. 127 (11), 2490-2494 (2017).
  5. Bodin, F., Diana, M., Koutsomanis, A., Robert, E., Marescaux, J., Bruant-Rodier, C. Porcine model for free-flap breast reconstruction training. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 68 (10), 1402-1409 (2015).
  6. Rodriguez, J. R., Yañez, R., Cifuentes, I., Varas, J., Dagnino, B. Microsurgery Workout: A Novel Simulation Training Curriculum Based on Nonliving Models. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 138 (4), 739e-747e (2016).
  7. Carey, J. N., et al. Simulation of plastic surgery and microvascular procedures using perfused fresh human cadavers. Plastic and Reconstructive Surgery journal. 67 (2), e42-e48 (2014).
  8. Chan, W., Niranjan, N., Ramakrishnan, V. Structured assessment of microsurgery skills in the clinical setting. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 63 (8), 1329-1334 (2010).
  9. Matsumura, N. A newly designed training tool for microvascular anastomosis techniques: Microvascular Practice Card. Surgical Neurology Journal. 71 (5), 616-620 (2010).
  10. Kim, W. S., et al. Tracheal reconstruction with a free vascularized myofascial flap: preclinical investigation in a porcine model to human clinical application. Scientific Reports. 7 (1), 10022(2017).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи