Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Ламинэктомия и имплантация окна спинного мозга в мыши

12.5K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/58330

⸱

23 октября 2019 г.

 ,  ,  , 

В этой статье

Краткое содержание

Этот протокол описывает имплантацию стеклянного окна на спинной мозг мыши для облегчения визуализации с помощью внутривитой микроскопии.

Аннотация

Этот протокол описывает метод для ламинэктомии спинного мозга и имплантации стекла окна для in vivo изображения спинного мозга мыши. Интегрированный цифровой испаритель используется для достижения стабильной плоскости анестезии при низкой скорости потока изолюран. Удаляется один позвоночник позвонка, а на тонкой агарозной кровати накладывается коммерчески доступное крышка. 3D-печатной пластиковой задней панели затем крепится к соседним позвоночника моль с помощью ткани клея и зубного цемента. Платформа стабилизации используется для уменьшения артефакта движения от дыхания и сердцебиения. Этот быстрый и без зажимов хорошо подходит для острой мультифотоновой флуоресценции микроскопии. Репрезентативные данные включены для применения этого метода к двухфотонической микроскопии сосуды спинного мозга у трансгенных мышей, выражающих eGFP:Claudin-5 - плотный протеин соединения.

Введение

Трансгенные модели животных, выражающие флуоресцентные белки, в сочетании с интравитальной микроскопией, обеспечивают мощную платформу для решения биологии и патофизиологии. Чтобы применить эти методы к спинному мозгу, специальные протоколы необходимы для подготовки спинного мозга для визуализации. Одной из таких стратегий является проведение имплантации ламинэктомии и окна спинного мозга. Ключевыми особенностями идеального протокола ламинэктомии для микроскопии являются сохранение структуры и функции родной ткани, стабильность поля изображения, быстрое время обработки и воспроизводимость результатов. Особая задача заключается в стабилизации поля изображения против дв....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Все эксперименты следуют протоколам Комитета по институциональному уходу и использованию животных ВУЗа. Это терминальная процедура.

1. Подготовка реагента

  1. Подготовка искусственного спинного мозга (aCSF), чтобы содержать 125 мМ NaCl, 5 мм KCl, 10 мм глюкозы, 10 мМ HEPES, 2 мМ MgCl26H2O, 2 мМ CaCl22H2O в ddH2O. Стерильный фильтр и заморозить в индивидуальном использовании aliquots. Теплый aCSF в водяной бане до 39 градусов по Цельсию перед использованием.
  2. Теплая агароза с низкой температурой плавления (2%) в aCSF до полного растворения в водяной бане, установленной до ....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Имплантированные стеклянные окна и интравитальная двухфотонная микроскопия являются полезным инструментом для оценки динамических изменений белков ЦНС. На функциональную целостность BBB влияет экспрессия, субклеточная локализация и скорость текучести плотных соединений7. Предыдущие исследования показали, что плотные белки соединения проходят быструю и динамичную ремоделирование при стабильном состоянии8. В настоящее время описано ламинэктоми.......

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Описанный здесь метод позволяет стабильно сделать визуализацию спинного мозга у мышей через стеклянное окно. Этот метод был применен для оценки BBB ремоделирования в трансгенных eGFP: Claudin5 /- мышей, которые выражают флуоресцентный BBB плотный белок соединения, но он может быть применен одинаково хорошо для исследований любых флуоресцентных белков или клеток в спинном мозге.

Разработано несколько методов ламинэктомии и стабилизации спинного мозга. Все протоколы касаются стабилизации спинног.......

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

S.E. Lutz поддерживается Национальным центром продвижения трансляционных наук, Национальными институтами здравоохранения под руководством Гранта KL2TR002002 и начального медицинского фонда Чикагского медицинского колледжа. Саймона Алфорда поддерживает RO1 MH084874. Содержание является исключительно ответственностью авторов и не обязательно отражает официальные взгляды NIH. Авторы благодарят Дритан Agalliu в кафедре неврологии в Колумбийском университете медицинский центр для Tg eGFP: Claudin-5 мышей, научных дискуссий, а также понимание развития хирургического протокола и изображений приложений. Авторы благодарят Сунила. Ганди на кафедре нейробиологии и поведения Кали....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
3D-принтерRaise3DPro2Для печати опорных пластин
PLA Нить для 3D-печатиInlandPLA+-175-BМатериал для 3D-печати из черного
пластика Программное обеспечение 3D CADDassault SystemesSolidworks программное обеспечениепроектирования 3D-форм
Программное обеспечение для 3D-принтераПрограммное обеспечение Raise3DIdeamakerдля взаимодействия с 3D-принтером
3D-печатная овальная задняя пластинана заказСтабилизирующее поле визуализации
Хирургический препарирующий микроскопLeicaM205 CОснащен Leica FusionOptics, объективом Planapo 0,63x M-серии и камерой для скользящего стола
Камера для микроскопаLeicaMC170HD цветная камера для визуализации хирургического поля
Скользящая сценаLeica10446301Скользящая ступень сконструирована из двух металлических пластин. Опорная плита фиксируется. Верхняя пластина скользит по смазанному интерфейсу, обеспечивая вращательное и линейное перемещение.
Хирургическая станция и стабилизационная вилкаКитовое производствопо индивидуальному заказуЛаминэктомия
SomnoSuite Низкопоточная установка для доставки изофлуранаKent ScientificSS-01Хирургическое введение анестезии со встроенным цифровым испарителем
Нержавеющая сталь 1,5-дюймовый монтажный постThorLabsP50/MДля монтажа хирургической станции на оптический стол для двухфотонной визуализации
Котованная зажимная вилка для монтажа 1,5" PostThorLabsPF175Для стабилизации хирургической станции для крепления на оптическом столе для двухфотонной визуализации
Идеальная костная микродрельГарвардский аппарат72-6065Истончающая кость для ламинэктомии
Водяная баняFisher Scientific15-462-10Согревающий солевой
пистолет для прижиганияFST18010-00Прижигание малого bleeds
ГрелкаBenchmarkBF11222силиконовый нагреватель 1,9 x 4,5 дюйма с диагональю 20 дюймов Тефлоновые провода, 10 Вт, 5
В типа K Термосопряженный ректальный зондPhysitempRET3Измерение температуры тела мыши
вазелинSigma8009-03-8Смазывающий ректальный зонд
Терморегулятор с обратной связьюна заказNAКоммерчески доступные альтернативы включают серию Physitemp TCAT
PVA Хирургические глазные копьяBeaver-visitec international40400-8Электрический
триммерWahl41590-0438Обрезка шерсти мыши
Лезвие, #11FST14002-14Хирургический инструмент
Щипцы, #5FST11254-20Хирургический инструмент
Щипцы, #4FST14002-14Хирургический инструмент
Titatnium зубчатые щипцыWPI555047FTХирургический инструмент
Титановые ирисовые ножницыWPI555562SХирургический инструмент
Vetbond тканевый клей3M084-1469SBПодготовка поверхности ткани для стоматологического акрила
Керамический лоток для смешиванияJack Richeson420716Смешивание стоматологического акрилового средства с ускорителем
Orthojet стоматологический акриловыйLang Dental1520BLK, 1503BLKПостоянное приклеивание задней пластины к ткани
Маленькое круглое защитное стекло, толщина #1, 3 ммГарвардский аппарат64-0720оптическое окно
NaClFisher Scientific7647-14-5Для aCSF
KClFisher Scientific7447-40-7Для aCSF
ГлюкозаFisher Scientific50-99-7Для aCSF
HEPESSigma7365-45-9Для aCSF
MgCl2& миддот; 6H2OFisher Scientific7791-18-6Для aCSF
CaCl2· 2H2OFisher Scientific10035-04-8Для aCSF
КарпрофенРимадилQM01AE91Анальгезия
Бактериостатическая водаГенри Шейн2587428Разбавитель для карпрофена
ИзофлуранГенри Шейн11695-6776-2Анестезия
Лактатный раствор РингераBaxter0338-0117-04Гидратация для мыши
Agarose High EEOSigmaA9793гелевая точка 34-37 градусов
C Офтальмологическая смазывающая мазьAkwa Tears68788-0697Предотвратить высыхание роговицы
MOM Двухфотонный микроскопSutter
для для впитывания крови

Ссылки

  1. Weinger, J. G., et al. Two-photon imaging of cellular dynamics in the mouse spinal cord. Journal of Visualized Experiments. (96), (2015).
  2. Davalos, D., Akassoglou, K. In vivo imaging of the mouse spinal cord using two-photon microscopy. Journa....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Больше статей

Процедура ламинэктомииспинной мозг мышивизуализация in vivoдвухфотонная микроскопия3D-печатная пластина для фиксацииадгезия стоматологическим цементомстабилизация в агарозном слоеимплантация покровного стеклавизуализация клаудина-5