RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.
Research Article
Wenyue Guan1, Lalanti Venkatasubramanian2, Myungin Baek3, Richard S. Mann2, Jonathan Enriquez1
1Institut de Génomique Fonctionnelle de Lyon, ENS de Lyon, CNRS, 2Departments of Biochemistry and Molecular Biophysics, and Neuroscience, Mortimer B. Zuckerman Mind Brain Behavior Institute,Columbia University, 3Neuroscience Program,NYU School of Medicine
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Erratum Notice
Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice
Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
Здесь мы описываем протокол для визуализации аксональное ориентации с флуоресцентными белка в взрослых ноги дрозофилы , фиксации, монтаж, обработка изображений и шаги пост изображений.
Большая часть работы по нейрональных спецификации были проведены в генетически и физиологически шансов справиться с возникающими моделей, таких как C. Элеганс, дрозофилы личинок и рыбы, которые занимаются волнообразно движений (как обход или плавание) как их основной режим локомоции. Однако, более сложный понимание спецификации индивидуального двигательного нейрона (MN) — по крайней мере с точки зрения информирования терапии болезни — требует столь же шансов справиться с возникающими системы, которая лучше моделирует комплекс на базе придаток локомоции схемы позвоночных животных. Взрослых дрозофилы опорно-двигательного аппарата отвечает за ходьба отвечает всем из этих критериев с легкостью, поскольку в этой модели это можно изучить спецификации небольшое количество легко отличить ноги MNs (примерно 50 MNs на ноги) как с использованием обширной массив из мощных инструментов генетических и в контексте физиологические системы на основе придаток локомоции. Здесь мы описываем протокол для визуализации иннервации мышц ног в взрослых летать.
Как позвоночных конечности дрозофилы взрослых ноги делится на сегменты. Каждый полет нога содержит 14 мышцы, каждая из которых включает в себя несколько мышечных волокон1,2. Клетки тела взрослых ноги MNs расположены в Т1 (prothoracic), (mesothoracic) T2 и T3 (metathoracic) ганглиев на каждой стороне воспалении брюшины шнура (VNC), структурный аналог позвоночных спинного мозга (рис. 1). Есть примерно 50 MNs в каждом ганглии, какие целевые мышцы в четырех сегментах ипсилатеральной ноге (coxa, вертела, бедра и голени) (рис. 1)3. Важно отметить, что каждый индивидуальный Взрослый ноги MN имеет уникальный морфологической идентификации, который весьма стереотипно между животных3,4. Все эти уникальные MNs являются производными от 11 стволовых клеток, называемых нейробласты (НБС) производства ногу MNs в личиночной стадии3,4. В конце все личиночной стадии незрелых Постмитотические MNs дифференцировать во время метаморфозы приобретать их конкретных дендритных беседки и аксональной терминала цели, которые определяют их уникальной морфологии3,4. Ранее мы тестировали гипотеза, комбинаторные код транскрипционных факторов (TFs) определяет уникальный морфология каждой дрозофилы ноги MN5взрослых. Как модель мы использовали линии B, один из 11 линий NB, которые производит семь из МНБ и продемонстрировал, что комбинаторной кода TFs, выраженные в Постмитотические взрослых ногу MNs диктует свои индивидуальные морфологии. Reprograming код TF МНБ мы были в состоянии переключиться MN морфологии на предсказуемой основе. Мы называем эти TFs: mTFs (морфологические TFs)5.
Одна из самых сложных частей морфологического анализа взрослых MNs является визуализировать аксоны через толстые и авто люминесцентные кутикулы с высоким разрешением. Мы обычно ярлык аксоны с меткой мембраны GFP, что выражается в MNs с системой двоичного выражения, такие как DVglut-Gal4/бла mCD8::GFP или DVglut-QF / QUAS mCD8::GFP, где DVglut — это сильное драйвер, выраженных в 6мотонейронов. Объединив эти инструменты с другими клоновых методы, как анализ мозаика с repressible маркер (MARCM)7,8стран СНГ MARCM или MARCMbow5, мы можем ограничить экспрессия гена GFP в субпопуляции МНБ фенотипического анализа аксонов проще. Мы породили протокол для того, чтобы держать ноги MN аксональное морфология нетронутыми для изображений и последующих 3D-реконструкции путем решения конкретных проблем, присущих взрослых дрозофилы ноги как (1) фиксация внутренних структур взрослых ноги не затрагивая аксона морфологии, эндогенного флуоресцентные выражение и мускулатура ноги, (2) монтаж ноги, чтобы сохранить общую структуру под coverslip и соответствующей ориентации для обработки для получения кутикулы изображений изображений и (3) фон, а также аксональное флуоресцентного сигнала. Хотя этот протокол был подробно для обнаружения флуоресцентные выражения в MN аксонов, он может применяться для визуализации другие компоненты ноги neuromusculature в членистоногих.
1. ноги диссекции и фиксация
2. нога монтажа
3. томография
4. пост обработки изображений
Как показано на рисунке 4, эта процедура позволяет отличные снимки GFP-меченых аксоны в взрослых дрозофилы ноги, вместе с их терминала беседки. Главное чистый сигнал GFP получается без любого загрязнения от флуоресценции, испускаемых кутикулу ног. Сигнал от кутикулы затем может сочетаться с GFP сигнала для идентификации позиционирования аксоны в ногах (4E рисунок, Рисунок 1и 1 видео). Критически важно для получения хорошо фиксированной ноги. Рисунок 5 показывает примеры хорошо фиксированная (Рисунок 5A) и плохо Исправлена ног (Рисунок 5B). В первом случае внутренней структуры внутри ног однородного цвета и трахеи, которые являются темные, видны. Основные трахеи трубку работает в центре каждого сегмента ноги (рядом с основной ствол нерва) и много тоньше последствия также видны. В последнем, темный материал присутствует в Тарсусе и голени и системе трахеи не видна в бедренной и coxa: в таких случаях всегда отмечается, что сигнал от флуоресцентных белков разлагается низкой интенсивности или отсутствует вообще. Во-вторых, тщательное вскрытие ног необходимо для получения всех сегментов ноги (от coxa голени) и избегать механических ударов на ногах. В-третьих ноги должны быть оставлены в монтаж среднего достаточно долго для того, чтобы проникнуть внутрь ног. Иногда появляются рухнул нога сегментов, особенно бедренной кости, — это может быть из-за отсутствия проникновения фиксатором и/или монтажа среднего. Наконец необходимо использовать высокое качество Микроскоп целей, исправления для ровности поля и специально разработанные для флуоресценции и/или apochromatic.

Рисунок 1: схема системы взрослых дрозофилы ноги мотора. Клетки тела взрослых ноги MNs (зеленый) локализуются в коре (серый) грудной ганглий VNC. MNs arborize их дендритов в ногу Нейропиль (синий) и отправить их аксоны в ноги, чтобы иннервируют одной из мышц 14 ног (красный). Обратите внимание, что только ноги T1 схематизируются. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Рисунок 2: процедура монтажа ноги на скольжениях микроскопа. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Рисунок 3: Imaging процедуры. (A) выбросов спектры GFP и ноги кутикулы с помощью 488 нм аргон лазерного возбуждения, полученные с помощью спектральных изображений секций ноги, выражая GFP и ноги дрозофилы , которые не выражают GFP соответственно. Обратите внимание, что интенсивностью флюоресценции не были нормализованы, например, от необработанных данных, с использованием тех же параметров (цель, монтаж среднего, мощность лазера, конфокальная диафрагмы, усиление, смещение) что касается ноги изображений процедуры. Также изображены детектор windows, используемый для визуализации GFP + кутикулы флуоресцирования (детектор 1: зеленый) и кутикулы (детектор 2: розовый), основанный на спектры фон GFP против кутикулы. (B, C) Конфокальный часть ноги, помечены mCD8::GFP под контролем DVGlut-Gal4 получены от 1 (B) и извещатель 2 (C). (D, E) Насыщенность маркер параметры, используемые для изображения (B, C), соответственно (см. текст для разъяснения): синий не насыщение сигнала, красный. Обратите внимание, что на детектор 1 главный нерв треков насыщения, в то время как на детектор 2 некоторых регионов кутикулу, насыщенных (см. стрелки). Шкалы бар = 100 µm. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Рисунок 4: обработка изображений с помощью ImageJ/Фиджи. (A) Макс проекция конфокальный стеков, полученные от 498-535 Нм детектора. (B) Макс проекция конфокальный стека, полученные от 566-652 Нм детектора. (C) изображение с только GFP сигнала, получаемое в результате вычитания (A) от (B). (D) слияние изображений (B) и (C). (E) 3-D реконструкция (C). Шкалы бар = 100 µm. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Рисунок 5: маломощные вид расчлененных ноги, показывая примеры хороших (A) и плохие (B) фиксации. Шкалы бар = 200 мкм. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Видео 1: фильм GFP-меченых аксонов (зеленый) вместе с кутикулы (серый) leg. Пожалуйста нажмите здесь, чтобы посмотреть это видео. (Правой кнопкой мыши для загрузки.)
Авторы не имеют ничего сообщать.
Здесь мы описываем протокол для визуализации аксональное ориентации с флуоресцентными белка в взрослых ноги дрозофилы , фиксации, монтаж, обработка изображений и шаги пост изображений.
Мы благодарим Роберт Ренар для подготовки среднего покупать продукты питания. Эта работа было поддержано NIH Грант NS070644 R.S.M. и финансирования от ALS ассоциация (#256), FRM (#AJE20170537445) и программа ATIP-Avenir ю.е.
| Абсолютный этанол | Fisher | E/6550DF/17 | Абсолютный аналитический реагент |
| класса неионогенного поверхностно-активного вещества моющее средство | Sigma-Aldrich | T8787 | Triton X-100, для молекулярной биологии |
| Тонкие щипцы | Sigma-Aldrich | F6521 | Ювелирные щипцы, Dumont No. 5 |
| Стеклянная многолуночная пластина | Электронная микроскопия Sciences | 71563-01 | 9 полостей Pyrex, 100 мм x 85 мм |
| PFA | Thermofisher | 28908 | Пирс 16% формальдегид (w/v), глицерин без метанола |
| Fisher BioReagents | BP 229-1 | глицерин (молекулярная биология) | |
| Спейсеры | Sun Jin Lab Co | IS006 | iSpacer, четыре лунки, около 12 мкм; L рабочий объем на лунку, диаметр 7 мм, глубина 0,18 мм |
| Квадрат 22 мм x 22 мм покровные стекла | Fisher Scientific | FIS#12-541-B | No.1,5-0,16 толщиной от 0,19 мм |
| Монтаж Medium | Vector Laboratories | H-1000 | Vectashield Antifade Монтаж Средний |
| конфокальный микроскоп | Carl Zeiss | ЛСМ780; объектив использован LD LCI Plan-Apochromat 25X/0,8 Imm Korr DIC M27 (масло/ кремний/глицерин/вода погружение) (420852-9871-000) | |
| программное обеспечение для визуализации | Carl Zeiss | ZEN 2011 | |
| 3D-Image программное обеспечение | ThermoFisher Scientific | Amira 6.4 | |
| ImageJ | Национальные институты здравоохранения | https://imagej.nih.gov/ij/ | ImageJ/FIJI |