Методическая статья

Выявление аминокислотных перепроизводителей с использованием редких Кодон-богатых маркеров

DOI:

10.3791/59331

⸱

24 июня 2019 г.

 ,  ,  ,  ,  , 
1Key Laboratory of Molecular Medicine and Biotherapy, School of Life Sciences, Beijing Institute of Technology, 2UCLA Institute for Technology Advancement (Suzhou)

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Это исследование представляет собой альтернативную стратегию к обычным токсичным аналоговым методом в выявлении аминокислотных сверхпроизводителей с помощью редких богатых кодон маркерами для достижения точности, чувствительности и высокой пропускной силы одновременно.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Для удовлетворения постоянно растущего рынка аминокислот необходимы высокопроизводительные производственные штаммы. Аминокислоты overproducers условно определены путем использования конкуренции между аминокислотами и их аналогов. Однако этот аналоговый метод имеет низкую точность, а надлежащие аналоги для конкретных аминокислот ограничены. Здесь мы представляем альтернативную стратегию, которая позволяет точно, чувствительный и высокопроизводительный скрининг аминокислот с использованием редких кодон богатых маркеров. Эта стратегия вдохновлена феноменом смещения использования кодона в переводе белков, для которого кодоны классифицируются на общие или редкие на основе их частот возникновения в кодирующей ДНК. Перевод редких кодонов зависит от их соответствующих редких переносных РНК (tRNAs), которые не могут быть полностью заряжены аминокислотами cognate под голодом. Теоретически, редкие tRNAs могут быть заряжены, если есть избыток аминокислот после зарядки синонимов общих изоастежителей. Поэтому отсталые переводы, вызванные редкими кодонами, могут быть восстановлены путем кормления или внутриклеточного перепроизводства соответствующих аминокислот. Согласно этому предположению, система отбора или скрининга для выявления аминокислотных производителей устанавливается путем замены общих кодонов целевых аминокислот их синонимами редких альтернатив в генах устойчивости к антибиотикам или генах кодирование флуоресцентных или хромогенных белков. Мы показываем, что протеиновые экспрессии могут быть значительно затруднены включением редких кодонов и что уровни белков положительно коррелируют с аминокислотными концентрациями. Используя эту систему, перепроизводители нескольких аминокислот можно легко отсеивать из библиотек мутаций. Эта стратегия на основе редкого кодона требует только одного модифицированного гена, и усев с меньшей вероятностью избежит выделения, чем в других методах. Он предлагает альтернативный подход для получения аминокислотных производителей.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Нынешнее производство аминокислот в значительной степени зависит от брожения. Тем не менее, титры и дает для большинства штаммов производства аминокислот ниже растущих требований глобального рынка аминокислот, который стоит миллиарды долларов1,2. Получение высокопроизводительных аминокислотных производителей имеют решающее значение для модернизации аминокислотной промышленности.

Традиционная стратегия для выявления аминокислот overproducers использует конкуренции между аминокислотами и их аналогов в синтезе белка3,4. Эти аналоги способны заряжать tRNAs, которые распознают соответствующие аминокислоты и тем самым подавляют удлинение пептидных цепей, что приводит к арестованному росту или смерти клеток5. Одним из способов противостоять аналоговым стрессам является увеличение концентрации внутриклеточных аминокислот. Обогащенные аминокислоты превзойдят аналоги конечной тРНК и обеспечат правильный синтез функциональных белков. Таким образом, штаммы, которые выживают аналоги могут быть выбраны и, вероятно, overproducers соответствующих аминокислот.

Хотя оказался успешным в выборе overproducers для аминокислот, таких как L-лейцин6, аналоговая стратегия страдает от серьезных недостатков. Одной из основных проблем является аналоговое сопротивление, возникает из процесса мутагенеза или через спонтанные мутации. Штаммы с сопротивлением могут избежать выбора, блокируя, экспортируяили унижая аналоги 5. Еще одной проблемой является токсические побочные эффекты аналогов на другие клеточные процессы7. Как следствие, штаммы, которые выживают аналоговый выбор не может быть аминокислоты overproducers, в то время как желаемые overproducers могут быть ложно уничтожены из-за негативных побочных эффектов.

Здесь представлена новая стратегия, основанная на законе о предвзятом отношении кодона, с тем чтобы добиться точной и быстрой идентификации аминокислотных перепроизводителей. Большинство аминокислот кодируются более чем одним нуклеотидным триплетом, которыйпо-разному благоприятствует организмам-хозяину 8,9. Некоторые кодоны редко используются в последовательности кодирования и называются редкими кодонами. Их переводы в аминокислоты опираются на коньяк tRNAs, которые несут соответствующие аминокислоты. Тем не менее, tRNAs, которые признают редкие кодоны обычно имеют гораздо меньше изобилия, чем tRNAs общих кодонов10,11. Следовательно, эти редкие tRNAs менее вероятно, чтобы захватить свободные аминокислоты в соревнованиях с другими изоастои, и переводы редких кодон-богатых последовательностей начинают замедляться или даже прекращаются, когда количество аминокислот ограничено 10. Переводы теоретически могут быть восстановлены, если есть избыток аминокислот после зарядки синонимных общих tRNAs из-за перепроизводства или дополнительных кормлений соответствующих аминокислот12. Если редкий богатый кодоном ген кодирует маркер выбора или скрининга, штаммы, демонстрирующие соответствующие фенотипы, могут быть легко идентифицированы и, вероятно, являются перепроизводителями целевых аминокислот.

Вышеупомянутая стратегия применяется для создания системы отбора и скрининга для идентификации производителей аминокислот. Система отбора использует гены устойчивости к антибиотикам (например, kanR) в качестве маркеров, в то время как система скрининга использует гены, кодирующие флуоресцентные (например, зеленый флуоресцентный белок (GFP) или хромагенные (например, PrancerPurple) белки. Гены маркеров в обеих системах модифицируются путем замены определенных чисел общих кодонов для целевой аминокислоты на ее синонимную редкую альтернативу. Штаммы в библиотеке мутаций, которые гавани редких кодон богатых маркер гена отбираются или скрининга при надлежащих условиях, и overproducers целевых аминокислот могут быть легко определены. Рабочий процесс начинается со построения редко-кодон-богатых маркера генной системы, а затем оптимизации условий труда, а затем выявление и проверка аминокислоты overproducers. Эта аналогово-независимая стратегия основана на догме в переводе белков и была практически проверена для точной и быстрой идентификации аминокислотных перепроизводителей. Теоретически, он может быть непосредственно использован для аминокислот с редкими кодонами и для всех микроорганизмов. В целом стратегия на основе редкого кодона послужит эффективной альтернативой традиционному аналоговому подходу, когда отсутствуют надлежащие аналоги конкретных аминокислот или когда главной проблемой является высокая уровень ложного положительного уровня. Протокол ниже использует лейцин редкий кодон, чтобы продемонстрировать эту стратегию в выявлении Escherichia coli L-leucine overproducers.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Конструкция плазмидов, выражающих редко-кодон-богатые гены маркера

  1. Выберите ген маркера, который содержит соответствующее количество общих кодонов для целевой аминокислоты.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Для L-лейцина, ген резистентности канамицина kanR, который содержит 29 кодонов лейцина, из которых 27 являются общими кодонами, используется для строительства системы отбора13. Ген gfp, который содержит 17 общих кодонов из 19 кодонов лейцина, или фиолетовый белок-кодируя ген prancerpurple (ppg),который гавани 14 leucine общие кодоны, используется для системы скрининга (Дополнительная таблица 1 ).
  2. Замените общие кодоны в генах маркеров синонимом редкого кодона. Для L-лейцин, заменить его кодоны в канR, gfp, или ppg с редкимкодон CTA, генерации кан R-RCs, gfp-RC, или ppg-RC, соответственно13 ( Дополнительная таблица 1).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Частота редкого кодона в генах маркера повлияет на строгость системы отбора или скрининга. В целом, увеличение числа редких кодонов повысит строгость системы отбора или скрининга. Для достижения соответствующего отбора или скрининга силы, дизайн серии маркер генов, которые гавани различные номера редких кодонов и сравнить их последствия.
  3. Создавайте строительные блоки редкобогатых кодонами маркерных генов с помощью таких инструментов, как GeneDesign14 (http://54.235.254.95/gd/) для синтеза генов. Кроме того, закажите гены маркеров из коммерческих услуг синтеза генов.
    1. На странице GeneDesign выберите дизайн строительного блока (постоянная перекрытие длины).
    2. Вставьте последовательности редко-кодон-богатых генов маркера в поле Последовательности.
    3. Определить длину перекрытия между олиготами сборки; имейте в виду, что по умолчанию 40 bp прекрасно работает для большинства последовательностей.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Смотрите онлайн-руководство для получения дополнительных инструкций по настройкам других параметров.
    4. Нажмите кнопку дизайн строительных блоков и заказать олигонуклеотиды, перечисленные на странице.
  4. Синтезировать редко-кодон-модифицированные гены путем полимеразной цепной реакции (ПЦР) на основе точного синтеза15.
  5. Ligate редких кодон богатых кан R-RC вектор pET-28a, gfp-RC pSB1C3, и ppg-RC к CPB-37-44116.
    ПРИМЕЧАНИЕ: PET-28a и pSB1C3 плазмидные карты доступны на SnapGene онлайн плазмидной базы данных(Дополнительная таблица 1); Карта плазмидирования CPB-37-441 доступна на веб-сайте атум-хромогенного белка.
    1. На льду добавьте вектор и фрагменты маркера в молярном соотношении 1:1 до 7,5 л сборочной смеси (см. Таблица Материалов) к общему объему 10 зл. Инкубировать образец при 50 градусах по Цельсию в течение 1 ч.
    2. Преобразуйте 5 qL сборочного продукта в 50 л компетентных ячеек (см. ТаблицуМатериалов) при 42 градусах по Цельсию на 30 с.
    3. Восстановление клеток в SOC (Супер оптимальный бульон с катаболитрепрессии) среды на 37 градусов по Цельсию в течение 1 ч, пластины их на LB (лизогенный бульон) агар среды, и инкубировать их при 37 градусов по Цельсию в одночасье.
    4. Привить колонию в среде LB и инкубировать при 37 кс на 8 ч.
    5. Изолировать плазмид с помощью предпочтительного коммерческого комплекта.

2. Оптимизация условий отбора

  1. Сделать родительский штамм, используемый для мутагенеза в компетентные клетки17.
  2. Преобразуйте 50 зл компетентных клеток с 1 зл и плазмида, который несет дикий тип kanR, и преобразовать другой набор компетентных клеток с плазмидом, содержащим канR-RC29 со всеми лейцин кодон заменены редкими кодон CTA.
  3. Добавьте 950 кл. среды SOC и инкубировать образец в шейкере при 250 об/мин при 37 градусах по Цельсию на 1 ч.
  4. Плита 100 л клеточной культуры на среде агара LB, содержащую 50 мкгл-1 канамицин, и инкубирует его при 37 градусах По Цельсию в течение примерно 8 ч до появления колоний.
  5. Выберите колонии, которые гавани дикого типа канR и лейцин редких кодон-богатых кан R-RC29 и использовать каждый для привить 5 мл пятиразового разбавленного среднего LB (0,2x LB), содержащий 50 мкгмл-1 канамицин. Инкубировать образцы в шейкере при 250 об/мин при 37 градусах Цельсия.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Среда имеет решающее значение для системы отбора. Он должен содержать достаточно углерода и азота, чтобы позволить экспрессию белка устойчивости к антибиотикам от гена дикого типа, а не от редко-кодон-модифицированных производных. В этом случае концентрация L-лейцина в среде 1x LB слишком высока, чтобы полностью ингибировать экспрессию белка от редкого богатых кодоном канR. Таким образом, разбавленная среда LB с фактором разбавления, таким как 5, используется для генерации явной разницы в выражениях белка от диких и редких генов, богатых кодоном.
  6. Передача 200 л каждой из клеточных культур в 96-пуговую пластину в трипликате в определенных временных точках (например, 8 ч, 16 ч и 24 ч). Измерьте OD600 (оптическая плотность на 600 нм) с помощью считывателя пластин.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Если уменьшение в клетке OD600 не может быть обнаружено для штаммов укрывательство редких кодон-богатых маркергенов по сравнению с OD600 штамма укрывательство диких типа маркер генов, попробуйте увеличить количество редких кодон в маркер генов или использовать более разбавленной среде.
  7. Выполните анализ кормления аминокислот, чтобы проверить, могут ли быть восстановлены выражения генов, богатых редкими кодонами маркерами (например, kan R-RC29),путем увеличения концентрации целевых аминокислот.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Для выбора L-лейцин overproducers, L-лейцин используется для кормления.
    1. Прививать штаммы, укрывающие ген маркера kan R-RC29, в 5 мл 0,2x LB (содержащего 50 мкгл-1 канамицин) с или без поставки 1 г L-1 L-лейцин. Прививать еще 5 мл 0,2x LB с штаммами, которые гавани дикого типа канR в качестве контроля. Инкубировать образцы в шейкере при 250 об/мин при 37 градусах Цельсия.
    2. Измерьте OD600 для каждой культуры в определенных точках времени (например, 15 ч, 17 ч, 19 ч и 22 ч).

3. Оптимизация условий скрининга

  1. Преобразуйте 50 зл родительского штамма, используемого для мутагенеза, с 1 л плазмида (50 нг-Л-1),который несет в себе гпп дикого типа или пигдикого типа. Кроме того, преобразуйте родительский штамм с редко-кодон богатых производных маркергенов.
  2. Добавьте 950 кл. среды SOC и инкубировать образец в шейкере при 250 об/мин при 37 градусах по Цельсию на 1 ч.
  3. Плита 100 л клеточной культуры на среде агара LB, содержащую соответствующие антибиотики (25 мкгл-1 хлорамфеникол для гfp плазмида, несущего маркер смR, или 50 мкг-мл-1 канамицин для ppg плазмид проведения канR маркер) и инкубировать на ночь при 37 градусов по Цельсию.
  4. Выберите одну колонию, которая гавани дикого типа gfp или ppg и одна колония, которая гавани соответствующих редких кодон богатых производных, и передать их на 5 мл правильно разбавленной среде LB индивидуально. Инкубировать образцы в шейкере при 250 об/мин при 37 градусах Цельсия.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Для E. coli штаммов укрывательство лейцин редких кодон-богатых gfp-RC или ppg-RC, неразбавленный LB среды (1x LB) могут быть использованы для создания значительных различий в выражениях дикого типа и редких кодон-богатых маркера Гены. Кроме того, индуцируемые промоутеры используются для управления экспрессиями генов маркера скрининга. Начните индукцию, когда клетки вступают в экспоненциальную фазу для достижения лучшей дискриминации.
  5. Для флуоресценции, передача 200 л каждой из клеточных культур в 96-хорошо яснодном дне черная пластина в тройной в определенных точках времени (например, 2 ч, 4 ч, и 6 ч). Измерьте OD600 и флуоресценцию и вычислите интенсивность флуоресценции (отношение флуоресценции к OD600). Для хромогенных маркеров измерьте развитие цвета клеточных культур.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Если нижняя интенсивность флуоресценции не может быть обнаружена для штаммов укрывательство gfp-RC по сравнению с штаммами укрывательство дикого типа gfp, или если более светлый цвет не может быть обнаружен для клеток, выражающих фиолетовый белок от ppg-RC, чем от гена дикого типа, попробуйте увеличить количество редких кодон ов генов маркера или использовать более разбавленную среду.
  6. Выполните асссы кормления (см. шаги 2.7.1 и 2.7.2). Измерьте интенсивность флуоресценции или развитие цвета в определенных временных точках (например, 12 ч, 18 ч и 24 ч).

4. Идентификация производителей аминокислот

  1. Прививать 100 кл культуры мутантов в 5 мл среды LB (2% v/v) и инкубировать его в шейкере при 250 об/мин при 37 градусах По Цельсию до тех пор, пока значения OD600 не достигнут 0,4.
  2. Сделать мутантов в компетентные клетки17.
  3. Преобразуйте 50 зл из клеток-мутантов с 1 ql плазмидной (No 50 нг-Л-1),неся маркер отбора kan R-RC29 или скрининговые маркеры gfp-RC или ppg-RC. Добавьте 950 кЛ среды SOC и поверните образец в шейкере 37 градусов по Цельсию в течение 1 ч.
  4. Выберите аминокислотные перепроизводители.
    1. Центрифуги яточной культуры на 4000 х г в течение 5 мин, отбросить супернатант и добавить 5 мл 0,2x LB среды, содержащей 50 мкгмл-1 канамицин. Инкубировать образец в шейкере 37 градусов на ночь.
    2. Плита ночной культуры (например, 100 л, зависит от плотности клеток культуры) на 0,2x LB агар среды, содержащей 50 мкгл-1 канамицин и инкубировать при 37 градусов по Цельсию в течение 12 ч.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Колонии разработаны являются кандидатами целевых аминокислоты overproducers и, в данном случае, L-лейцин overproducers.
  5. Экран аминокислоты overproducers.
    1. Плита соответствующее количество клеток (например, 100 л) укрывательство маркера скрининга (как описано в шаге 4.3) на агар-среду LB, содержащую соответствующий антибиотик (25 мкгл-1 хлорамфеникол для скрининга с gfp-RC и 50 мкг-мл -1 канамицин для скрининга с ppg-RC) и инкубировать при 37 кв. м на 8 ч.
    2. Прививать среду LB, содержащую соответствующий антибиотик (см. шаг 4.5.1) с каждой отдельной колонией из пластины. Инкубировать образцы в шейкере при 250 об/мин при 37 градусах Цельсия.
    3. Измерьте OD600 и флуоресценцию и вычислите интенсивность флуоресценции, если используется gfp-RC. Измерьте развитие цвета культур клетки если ppg-RC использовано. Обратите внимание, что штаммы, демонстрирующие более высокую интенсивность флуоресценции или более глубокий цвет, чем у родительского штамма, являются аминокислотами-кандидатами и, в данном случае, L-лейцином overproducers.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Флуоресценция активированных клеток сортировки также подходит для выявления одноклеточных высокопроизводительных, когда редкие богатые кодон флуоресцентных белковых генов используются для скрининга.
  6. Проверить аминокислоты productivities штаммов кандидата.
    1. Прививать 5 мл среды LB с каждым из кандидатов штаммов и пусть клетки растут на ночь в шейкере при 250 об/мин при 37 градусах Цельсия.
    2. Урожай клетки от 1 мл клеточной культуры центрифугированием при 4000 х г в течение 2 мин. Отбросьте супернатант и отбросите гранулы с 1 мл стерильной воды.
    3. Прививать 20 мл среды M9, содержащей 4% глюкозы с 200 злицовой суспензии клетки и инкубировать в 250 мл шейкер при 250 об/мин при 37 КС в течение 24 ч.
    4. Центрифуга 1 мл культуры среды на 4000 х г в течение 5 мин. Передача 200 л супернатанта в чистую трубку 1,5 мл. Подготовка L-лейцинов (HPLC (высокопроизводительная жидкая хроматография) класса 0,01, 0,05, 0,1, 0,5 и 1 г L-1 в качестве стандартов.
    5. Добавьте 100 зЛ триэтиламина 1 мМ и 100 л 1 М фенил изотиоцианата в супернатант и стандарты, аккуратно перемешайте их и инкубировать при комнатной температуре 1 ч18.
      ВНИМАНИЕ: Триэтиламин и фенил изотиоцианат может вызвать сильные ожоги кожи и повреждения глаз и вредно при вдыхании. Носите перчатки и маску и, если возможно, выполнить этот шаг в дым капюшон.
    6. Добавьте 400 зЛ n-гексана в ту же трубку и вихрем его в течение 10 с. Фильтр нижней фазы, содержащей производные аминокислоты через 0,2 мкм политетрафтотроэтиленовой мембраны.
      ВНИМАНИЕ: n-гексан может вызвать раздражение кожи. Носите перчатки и защитную одежду. Если он соприкасается с кожей, промыть кожу большим количеством воды.
    7. Подготовка мобильной фазы А путем смешивания 0,1 М ацетата натрия (pH 6.5) и ацетонитрила в объемном соотношении 99,3:0,7. Подготовка ацетонитрила (80% v/v) в качестве мобильной фазы B. Фильтр всех мобильных фаз через 0,2 мкм политефторетиленовых мембран.
      ВНИМАНИЕ: Ацетонитрил вреден при вдыхании и может вызвать раздражение кожи и глаз. Носите перчатки и защитную одежду и выполнять этот шаг в дым капюшон.
    8. Запуск 1 зл и образца на ультра-HPLC оснащен колонкой C18 в соответствии с программой elution в таблице 1 с скоростью потока 0,42 мл-мин-1 и температурой столбца 40 градусов по Цельсию. Обнаружить целевые аминокислоты на уровне 254 нм с помощью детектора диодного массива и рассчитать их концентрации, отображая пиковые области до стандартной кривой.
Время (мин)Мобильная фаза A (%)Мобильная фаза B (%)
0.0098 лет2
3,570 лет30 год
7 (г.4357
7.10.00100
11 Год98 лет2

Таблица 1: Программа elution для количественной оценки аминокислот.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Для системы отбора, резкое снижение OD600 для штаммов укрывательство редких кодон-богатых антибиотиков устойчивость гена должны наблюдаться по сравнению с штаммом укрывательство дикого типа гена устойчивости к антибиотикам, когда культивируется в подходящих средний(рисунок 1a). В тех же условиях, уменьшение в клетке OD600 становится более очевидным, как число редких кодонов в гене устойчивости к антибиотикам увеличивается

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Количество редких кодонов в генах маркеров и среда отбора или скрининга имеют решающее значение для ингибирования белковых выражений из редко-кодон-модифицированных генов маркера. Если не может быть обнаружено существенное различие между протеиновыми экспрессиями генов дикого типа и их производными, увеличение числа редких кодонов или использование среды с ограниченным и питательными веществами может усилить различия. Однако, если эффект ингибирования слишком силен, протеиновые выражения не могут быть восстановлены даже ...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Работа была поддержана Национальным фондом естественных наук Китая (грант No 21676026), Национальной программой научных исследований и разработок Китая (грант No 2017YFD0201400) и Китайским фондом постдокторской науки (грант No 2017M620643). Работы в Институте развития UCLA (Сучжоу) были поддержаны внутренними грантами из провинции Цзянсу и индустриального парка Сучжоу.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
АцетонитрилThermo51101
EasyPure HiPure Plasmid MiniPrep Kit TransgenEM111-01
EasyPure Quick Gel Extraction KitTransgenEG101-01
Gibson assembly master mixNEBE2611S
Изопропил β-D-1-тиогалактопиранизидSolarbioI8070
L-лейцинSigmaL8000
Считыватель микропланшетовBiotekSynergy 2
n-гексанThermoH3061
ФенилизотиоцианатSigmaP1034
PrancerPurple CPB-37-441ATUMCPB-37-441
TransStar FastPfu Fly DNA полимеразаTransgenAP231-01
ТриэтиламинSigmaT0886
Сверхвысокоэффективная жидкостная хроматографияAgilent1290 Infinity II
Wild тип C. glutamicumATCC13032
XL10-Gold E. coli компетентная клеткаAgilent200314
ZORBAX RRHD Eclipse Plus C18 колонкаAgilent959759-902К

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Tatsumi, N., Inui, M. Corynebacterium glutamicum: biology and biotechnology. , Springer-Verlag. Berlin and Heidelberg. (2012).
  2. Tonouchi, N., Ito, H. Present global situation of amino acids in industry. Amino Acid Fermentation. Yokota, A., Ikeda, M. , Springer. 3-14 (2017).
  3. Gusyatiner, M., Lunts, M., Kozlov, Y., Ivanovskaya, L., Voroshilova, E. DNA coding for mutant isopropylmalate synthase, L-leucine-producing microorganism and method for producing L-leucine. , US6403342B1 (2005).
  4. Park, J. H., Lee, S. Y. Towards systems metabolic engineering of microorganisms for amino acid production. Current Opinion in Biotechnology. 19 (5), 454-460 (2008).
  5. Norris, R., Lea, P. The use of amino acid analogues in biological studies. Science Progress. , 65-85 (1976).
  6. Park, J. H., Lee, S. Y. Fermentative production of branched chain amino acids: a focus on metabolic engineering. Applied Microbiology and Biotechnology. 85 (3), 491-506 (2010).
  7. Bach, T. M., Takagi, H. Properties, metabolisms, and applications of L-proline analogues. Applied Microbiology and Biotechnology. 97 (15), 6623-6634 (2013).
  8. Crick, F. H. C. On the genetic code. Science. 139 (3554), 461-464 (1963).
  9. Plotkin, J. B., Kudla, G. Synonymous but not the same: the causes and consequences of codon bias. Nature Reviews Genetics. 12 (1), 32-42 (2011).
  10. Dittmar, K. A., Sørensen, M. A., Elf, J., Ehrenberg, M., Pan, T. Selective charging of tRNA isoacceptors induced by amino‐acid starvation. EMBO Reports. 6 (2), 151-157 (2005).
  11. Elf, J., Nilsson, D., Tenson, T., Ehrenberg, M. Selective charging of tRNA isoacceptors explains patterns of codon usage. Science. 300 (5626), 1718-1722 (2003).
  12. Sørensen, M. A. Charging levels of four tRNA species in Escherichia coli Rel+ and Rel− strains during amino acid starvation: a simple model for the effect of ppGpp on translational accuracy. Journal of Molecular Biology. 307 (3), 785-798 (2001).
  13. Zheng, B., et al. Utilization of rare codon-rich markers for screening amino acid overproducers. Nature Communications. 9 (1), 3616(2018).
  14. Richardson, S. M., Wheelan, S. J., Yarrington, R. M., Boeke, J. D. GeneDesign: rapid, automated design of multikilobase synthetic genes. Genome Research. 16 (4), 550-556 (2006).
  15. Xiong, A. -S., et al. PCR-based accurate synthesis of long DNA sequences. Nature Protocols. 1 (2), 791-797 (2006).
  16. Gibson, D. G., et al. Enzymatic assembly of DNA molecules up to several hundred kilobases. Nature Methods. 6 (5), 343-345 (2009).
  17. Green, M. R., Sambrook, J. Molecular cloning: a laboratory manual. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. (2012).
  18. Cohen, S. A., Bidlingmeyer, B. A., Tarvin, T. L. PITC derivatives in amino acid analysis. Nature. 320 (6064), 769-770 (1986).
  19. Zhou, J., Liu, W. J., Peng, S. W., Sun, X. Y., Frazer, I. Papillomavirus capsid protein expression level depends on the match between codon usage and tRNA availability. Journal of Virology. 73 (6), 4972-4982 (1999).
  20. Gregg, C. J., et al. Rational optimization of tolC as a powerful dual selectable marker for genome engineering. Nucleic Acids Research. 42 (7), 4779-4790 (2014).
  21. Pelicic, V., Reyrat, J. M., Gicquel, B. Expression of the Bacillus subtilis sacB gene confers sucrose sensitivity on mycobacteria. Journal of Bacteriology. 178 (4), 1197-1199 (1996).
  22. Avcilar-Kucukgoze, I., et al. Discharging tRNAs: a tug of war between translation and detoxification in Escherichia coli. Nucleic Acids Research. 44 (17), 8324-8334 (2016).
  23. Mundhada, H., Schneider, K., Christensen, H. B., Nielsen, A. T. Engineering of high yield production of L-serine in Escherichia coli. Biotechnology and Bioengineering. 113 (4), 807-816 (2016).
  24. Makosky, P. C., Dahlberg, A. E. Spectinomycin resistance at site 1192 in 16S ribosomal RNA of E. coli: an analysis of three mutants. Biochimie. 69 (8), 885-889 (1987).
  25. Feng, L., Tumbula-Hansen, D., Toogood, H., Söll, D. Expanding tRNA recognition of a tRNA synthetase by a single amino acid change. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100 (10), 5676-5681 (2003).
  26. Naganuma, M., et al. The selective tRNA aminoacylation mechanism based on a single G• U pair. Nature. 510 (7506), 507(2014).
  27. Hoesl, M. G., et al. Chemical evolution of a bacterial proteome. Angewandte Chemie International Edition. 54 (34), 10030-10034 (2015).
  28. Hershberg, R., Petrov, D. A. Selection on codon bias. Annual Review of Genetics. 42, 287-299 (2008).
  29. Huo, Y. -X., et al. Conversion of proteins into biofuels by engineering nitrogen flux. Nature Biotechnology. 29, 346(2011).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

OD600

Похожие статьи