Конвергентная стратегия для поколения практически секвенированных cDNA библиотека от неупомянутых тихоокеанских устриц

Summary

Мы описываем стратегию использования образцов РНК из неупомянутых образцов тихоокеанских устриц и оцениваем генетический материал по сравнению с общедоступными данными генома для создания практически секвенируемой библиотеки кДНК.

Abstract

Доступ к биологическому материалу эталонных видов, которые ранее использовались в ключевых экспериментах, таких как разработка новых клеточных линий или проектов секвенирования генома, часто трудно предусмотреть для дальнейших исследований или третьих сторон из-за расходный характер образцов. Хотя в настоящее время широко распространены на тихоокеанском побережье Азии, Австралии и Северной Америки, отдельные образцы тихоокеанских устриц генетически довольно разнообразны и поэтому не подходят непосредственно в качестве исходного материала для библиотек генов. В этой статье мы демонстрируем использование неупомянутых тихоокеанских устриц, полученных на региональных рынках морепродуктов для создания библиотек кДНК. Затем эти библиотеки были сравнены с общедоступным геномом устриц, и ближайшая соответствующая библиотека была выбрана с использованием митохондриальных эталонных генов Cytochrome C Oxidase subunit I (COX1) и NADH Dehydrogenase (ND). Пригодность генерируемой библиотеки кДНК также демонстрируется путем клонирования и экспрессии двух генов, кодирующих ферменты UDP-глюкуроновая кислота дегидрогеназы (UGD) и udP-xylose synthase (UXS), которые отвечают за биосинтез UDP-xylose от УДП-глюкоза.

Introduction

Приобретение живого эталонного биологического материала может быть сложным из-за длительного срока поставки, предпринимательских рассуждений или таможенных правил, касающихся конкретных стран. В качестве альтернативы необходимый биологический материал может быть также собран из фенотипически идентичных образцов. Однако эти образцы могут значительно различаться на уровне генотипа, и поэтому сравнения с цифровыми эталонными геномами одного и того же вида часто оказываются трудными или даже бесполезными из-за несовместимости вновь полученного материала с существующих методов усиления ДНК. Секвенирование высоко сохранимых генов отдельных образцов являетсяшироко используемым и мощным инструментом для идентификации видов 1, таких как сохраненные митохондриальные гены, которые часто используются в качестве эталонных генов для оценки качества библиотек кДНК^{2 ,}3,^4,5,6. Основное обоснование представленного метода заключается в том, что высокая сохранность последовательностей митохондриальных генов в отдельных анонимных образцах устриц по сравнению с соответствующими последовательностями эталонного генома указывает на то, что другие гены могут также показывать низкий уровень дивергенции, учитывая в целом более высокуюскорость эволюции митохондриальной ДНК по отношению к ядерной ДНК 7, что позволяет усиление и изоляцию широкого спектра научно и промышленно значимых генов, просто используя публично доступные данные последовательности в качестве эталона.

Общая цель описанного в настоящем методе состоит в том, чтобы представить оптимизированный рабочий процесс для создания практически секвенированной библиотеки кДНК устрицы, которая может быть использована в качестве шаблона ДНК для клонирования генов устриц. При виртуальном секвенировании секвенирования генома de novo обходится; вместо этого, известная, цифрово-сохраненная справочная последовательность используется непосредственно для использования или разработки праймеров для производства cDNA, которые в конечном итоге будут состоять из библиотеки (или будут добавлены к уже существующей последовательной). Цель состоит в том, чтобы создать конвергентную библиотеку кДНК, что означает, что сходство между сгенерированными последовательностями кДНК и эталонной последовательностью может ранжироваться от низкого к высокому расхождению. Ключевым преимуществом использования Cytochrome C Oxidase subunit 1 (COX1) и NADH Dehydrogenase (ND) в качестве эталонных генов является то, что даже высоко географически разъединяющие образцы устриц могут быть профилированы из-за высокой консервации этих митохондриальных генов. Доказав подход с этими устоявшимися маркерами, мы затем демонстрируем его применение к двум ферментнымкандидатам, которые участвуют в биосинтезе нуклеотида сахара и могут иметь промышленное значение 8,^{9, 10}. Биотехнологический потенциал тихоокеанской устрицы до сих пор не изучен. Таким образом, мы считаем, что этот сходящийся метод для подготовки практически секвенированных библиотеки кДНК также будет подходящим для неспециалистов исследователей, которые хотят генерировать кДНК из этого соответствующего биологического материала.

Protocol

ПРИМЕЧАНИЕ: Схематический обзор показан на рисунке 1.

1. Коллекция образцов

1. Получить образцы устриц. Держите устриц на льду в послеуборочной период, транспортировки и до лабораторного использования и обработки в течение 4-7 дней после покупки.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Для этого протокола, устрицы были приобретены из Чжун Цай оптовый рынок в Нанкине (происходящие из Нинде, Фуцзянь, Китай и Lianyungang, Цзянсу, Китай), Haijie водной продукции компании в Циндао (происходящие из Циндао, Шаньдун, Китай), Цзюйчэн Компания по водным продуктам в Яньтай (из Яньтай, Шаньдун, Китай) и компания Jinxiu Aquatic Product Company в Циндао (из Циндао, Шаньдун, Китай)).

2. Изоляция РНК путем извлечения гиоцианат-фенола

1. Приготовление образца ткани устрицы
   1. Вырежьте примерно 100 мг однородной мягкой ткани из приблизительного геометрического центра каждого образца устрицы со стерилизовав скальпелем и перенесите образцы в жидкий азот.
   2. Эвтанизировать оставшуюся часть устриц путем замораживания при -80 градусов по Цельсию в течение 1 ч и отбросить в качестве биологических отходов.
   3. Измельчите флэш-замороженную ткань устрицы в мелкий порошок в растворе (200 мл), наполненном 50 мл жидкого азота.
   4. Взвесьте 75 мг замороженной ткани каждого образца в стерильную 1,5 мл центрифуги трубки и смешайте с 1 мл биоциол гиоцинат-фенол экстракционного реагента. Центрифуги образца на 14000 х г при 4 кв кв в течение 15 мин.
2. Перенесите супернатант в новую центрифугу объемом 1,5 мл, добавьте 200 л хлороформа и тщательно перемешайте с помощью вихревого смесителя на 10-15 с, пока смесь не станет молочно-белой.
3. Центрифуга при частоте 14 000 х г при 4 кв с в течение 15 минут, и перенесите верхний ваквочный слой тщательно с помощью 200-й пипетки, не нарушая междоусобицу в новую 1,5 мл центрифуги трубки.
4. Добавьте 500 л изопропилового спирта и аккуратно перемешайте образцы путем инверсии, затем оставьте образцы на 20 мин на льду. Центрифуга при 14000 х г при 4 кв кв в течение 8 мин и удалить супернатант.
5. Приготовьте каждую из гранул в 1 мл 75% EtOH, и центрифуги на 14000 х г при 4 КК в течение 5 мин. Удалить все супернатанты.
6. Повторите шаг 2.5 один раз. Высушите гранулы в течение 6 минут при комнатной температуре. Не сушите дольше; в противном случае, это может быть трудно растворить РНК гранулы в следующем шаге.
7. Растворите сушеные гранулы РНК в 25 Зл DEPC (диэтилпирокарбонат) очищенной воды и держите трубку на льду. Используйте образцы РНК в течение 24 ч.

3. генерация библиотеки cDNA путем обратной транскрипции

1. Для каждого образца РНК подготовьте реакционную смесь с помощью коммерческой системы обратной транскрипции с помощью 10-й пипетки: Добавить 4 злитромы раствора MgCl_2, 2 зл и 10x реакционный буфер, 2 злитроду раствора dNTP, 0,5 л ингибитора RNase, 0,7 л раствора AMV Обратный Транскриптаза, 0,5 л Олиго (дТ) 15 грунтовки, 1 злицу извлеченного образца РНК и 9,3 Л H₂O в трубку ПЦР 300 л.
2. Инкубировать смесь в ПЦР Thermocycler в течение 60 мин при температуре 42 градусов по Цельсию, а затем увеличить температуру до 95 градусов по Цельсию в течение 5 мин.
3. Храните генерируемую библиотеку кДНК в течение 12 месяцев при -20 градусов по Цельсию.

4. Митохондриальная амплитация и очищение генов

1. Приготовьте смесь ПЦР с помощью пипетки с топой. Добавьте 0,25 л (1,25 У) полимераза ВЫСОКОй точности ДНК, 2 л раствора dNTP (2,5 мМ каждого dNTP), 0,5 л проецировать COX1 или ND forwardr (100 мкм), 0,5 л соответствующего ND-обратного грунтовки (100 мкм), 1 л библиотеки cDNA (100 мкм), 0,5 л соответствующей COX1 или ND обратной грунтовой версии (100 мкм), 1 л библиотеки cDNA , 5 л 5-х буферного раствора и 16 л дистиллированной H₂O в трубку ПЦР мощностью 300 л.
2. Выполните усиливание ПЦР с использованием следующих параметров: После первоначального шага денатурации при 95 градусах по Цельсию (длительность 5 мин), 35 циклов реакции ПЦР, состоящих из анны ногой при 55 кВ (30 с), шага удлинения при 72 КС (2 мин) и шага денатурации при 95 градусах по Цельсию (30 с) , выполнить один заключительный шаг удлинения в течение 5 мин при 72 градусах По Цельсию.
3. Используйте 5 ЗЛ продукта ПЦР для проверки с помощью электрофорозного геля агарозного геля качество полученного пЦР-продукта. Наблюдайте за усиленным геном COX1 или ND в качестве одной полосы на 759 или 748 базовых парах, соответственно.
4. Очистите остальную часть продукта ПЦР с помощью комплекта для очистки ПЦР.
   1. Добавьте в образец 100 кЛ раствора 'PCR-A' (связывающий буфер ДНК, содержащий высокие концентрации чаотропных солей^11). Vortex кратко смешать содержимое.
   2. Поместите столбочистку в центрифугу 2 мл. Пипетка реакционная смесь 4.4.1. в колонку. Центрифуга при температуре 14 000 х г в течение 1 мин при комнатной температуре.
   3. Откажитесь от фильтрата из центрифуги трубки. Верните колонку в центрифугу 2 мл, добавьте 700 л раствора 'W2' в колонку и центрифугу при температуре 1 000 х г в течение 1 мин при комнатной температуре ('W2' является стиральным раствором, который содержит высокие концентрации этанола для удаления остаточного паотропного соли из колонки очистки).
   4. Отбросьте фильтрат и верните колонну в центрифугу 2 мл. Добавьте 400 л раствора 'W2' в колонку и центрифугу при 14 000 х г в течение 1 мин при комнатной температуре.
   5. Предварительно разогрейте 1 мл деионированной воды до 65 градусов по Цельсию в металлическом обогревателе блока. Перенесите колонну в новую центрифугу мощностью 1,5 мл. Пипетка 25 л горячей разогретой деионизированной воды в центре мембраны белой колонны. Пусть мембрана замочить в течение 1 мин при комнатной температуре.
   6. Центрифуге при температуре 14 000 х г в течение 1 мин при комнатной температуре и отбросьте столбец.
5. Храните очищенный продукт ПЦР на срок до 12 месяцев при -20 градусов по Цельсию.

5. Секвенирование и сравнение митохондриальных генов

1. Отправить очищенные образцы ПЦР со ступени 4.5 для секвенирования Sanger, используя соответствующие грунтовки COX1 или ND в качестве секвенирующих грунтовок. Дополнительно, COX1 или ND обратные грунтовки также могут быть использованы для двунаправленного секвенирования.
2. После получения результатов секвенирования, сравнить последовательности с геномом последовательности Тихоокеанского штамма устрицы (NCBI Таксономия ID: 29159) с помощью NCBI Нуклеотид BLAST онлайн инструмент (blast.ncbi.nlm.nih.gov) (Рисунок 2 и Рисунок 3 ).

6. Применение библиотеки кДНК для клонирования генов MgUGD и MgUXS

1. Усиль и очистить гены MgUGD и MgUXS с помощью соответствующих передних и обратных грунтов mgUGD и MgUXS по PCR следующие шаги 4.1. до 4,4.
2. Передача 2 л буфера пищеварения (10 раз концентрированный) и 6 л деионизированной воды в центрифужную трубку 1,5 мл. Добавьте 10 qL очищенных продуктов MgUGD или MgUXS PCR вместе с ограничением эндонуклеазы Nde I и Xho I (1 Зл каждый, 20 U). Инкубировать при 37 градусах по Цельсию на 3 ч.
3. Подготовка предварительно переваренных вектора pET-30a: Передача 500 нг вектора pET-30a в новую 1,5 мл центрифуги трубки и пополнить объем до 16 л с использованием деионизированной воды. Добавьте 2 злицита буфера (10x концентрированный) вместе с ограничением эндонуклеазы Nde I и Xho I (1 Л каждый, 20 U).
   1. После инкубации смеси при 37 градусах по Цельсию в течение 3 ч добавьте 1 кЛ щелочной фосфатазы (1 У) и инкубировать при 37 градусах Цельсия в течение дополнительного часа. Инактивируйте щелочным фосфатазой при нагревании при температуре 75 градусов по Цельсию в течение 10 мин в предварительно нагретом металлическом обогревателе.
4. Перенесите 4 злиц переваренных продуктов ДНК MgUGD или MgUXS в свежие центрифугные трубки 1,5 мл и добавьте 4 л переваренных вектора pET-30a. Добавьте 1 кЛ ligation Buffer (10x), 1 Л лигазы T4 (3 U) и инкубировать реакционную смесь при 22 градусах по Цельсию в течение 3 ч.
5. Преобразуйте электрокомпетентные e. coli Mach1 Компетентные ячейки с помощью электропорации с помощью перевязочных продуктов. Распространение преобразованных клеток на LB агар пластин, содержащих 50 мкг /мл канамицин. Инкубировать клетки при 37 градусах по Цельсию на 16 ч.
6. Проверить колоний для желаемого вставки Сэнгер секвенирования с помощью плазмид-специфических T7 промоутер и терминатор грунтовки. Приготовьте плазмиды из проверенных бактериальных клонов.

7. Экспрессия и действия испытаний MgUGD и MgUXS

1. Преобразуйте E. coli BL21 (DE3) компетентные клетки с плазмидами, несущими гены MgUGD и MgUXS, и распространяйте преобразованные клетки на агарных пластинах LB, содержащих 50 мкг/мл канамицина. Инкубировать клетки при 37 градусах по Цельсию на 16 ч.
2. Культивировать одну колонию в 5 мл LB среды с 50 мкг /мл канамицин ночь. Перенесите культуру в 400 мл lb среды и непрерывно встряхнуть при температуре 37 градусов по Цельсию, пока оптическая плотность на длине волны 600 нм (OD₆₀₀) достигает поглощения примерно 0,5.
   1. Снизить температуру инкубации до 20 градусов по Цельсию и добавить 400 л изопропила-D-thiogalactopyranoside (концентрация 1 М). Побудить экспрессию рекомбинантных белков в течение 3 ч.
3. Урожайные клетки центрифугированием при 4500 х г в течение 15 мин при 4 градусах Цельсия. Приостановить гранулы в 10 мл лисис буфера (100 мм NaCl, 50 мм Tris/HCl, 1% Тритон X-100, 1 мм фенилметилсульфонил-фтор (PMSF), рН 8.0).
4. Нарушить клетки путем соникации в течение 20 мин (40 циклов в/выкл с амплитудой 20 мкм в течение 15 с при 4 градусах Цельсия). Центрифуга при 14 000 х г при 4 градусах по Цельсию в течение 20 минут и соберите супернатант для теста активности.
5. Выполните проверку активности MgUGD путем инкубации 2 злител клеточного лизата с 2 зл и УДП-глюкозы (10 мМ), 4 Зл NAD (10 мм), 4 Зл MgCl₂ (10 мМ), 2 л буфера Tris/HCl (500 мм, pH 7.5) и 6 л deionized₂в новом мЛ центрифуга трубки и инкубировать при 37 кв КС в течение 30 мин.
6. Выполните деятельность асссы MgUXS путем инкубации 2 злиса клеточного лизата с 2 Зл УДП-глюкуроновой кислоты (10 мМ), 2 qL tris/HCl буфера (500 мм, pH 7.5), и 14 л деионизированного H₂O в новой 1,5 мл центрифуги трубки и в
7. Утолить реакции в шаге 7,5 и 7,6, добавив 20 л метанола и 40 Л хлороформа к каждой смеси. После вихря образца смеси, центрифуга на 14000 х г в течение 6 мин при 4 градусах Цельсия и собирать верхний ваквоковый слой каждой трубки.
8. Проанализируйте реакционные продукты с помощью масс-спектрометрии MALDI-TOF в режиме отрицательной ионизации в диапазоне м/з от 500-700. Смешайте 1 кВл образца смеси с 1 зл 2,5-dihydroxybenzoic кислоты образца матрицы (1% w/V в 50% aqueous ацетонитрила). Обратите внимание на ожидаемые значения м/з на уровне 579 и 535 для уДП-глюкуроновой кислоты и UDP-ксилозы, соответственно(рисунок 4).

Results

На рисунке 1 показан ажематический обзор описанного метода подготовки конвергентной библиотеки кДНК, полученной от тихоокеанских устриц. На рисунке 2 показаны последовательности генов COX1 и ND удаленного образца устриц ы с высоким расхождением с генными последовательностями генов COX1 и ND эталонного материала. На рисунке 3 показаны последовательности генов COX1 и ND тесно связанного образца устрицы с низким расхождением с генными ...

Discussion

Представленный протокол позволяет генетическую идентификацию неупомянутых образцов устриц с аналогичным фенотипом региональных рынков морепродуктов путем сравнения генов COX1 и ND с общедоступной базой данных генома ДНК устриц. Значение этого метода заключается в его простоте, так как для оценки виртуальной библиотеки кДН необходима только одна реакция ПЦР. Два сохраненных митохондриальных гена COX1 и ND были усилены из библиотеки кДНК, которая была получена путем обратной транскрипции экстрактов РНК из каждой устрицы. М...

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
<сильно>Химикаты:
1% Triton X-100	Solarbio	9002-93-1	*Возможны альтернативные дистрибьюторы
2,5-дигидроксибензойная кислота	Alfa Aesar	490-79-9	*Возможны альтернативные дистрибьюторы
Ацетонитрил	Merck	75-05-8	*Возможны альтернативные дистрибьюторы
Agarose для молекулярная биология	Biowest Chemicals	111860	*Возможны альтернативные дистрибьюторы
Ampicilin	Solarbio	69-52-3	*Возможны альтернативные дистрибьюторы
Chloroform	Lingfeng, Shanghai	67-66-3	*Возможны альтернативные дистрибьюторы
DEPC вода	Thermo Scientific	R0601
Ethanol	Jinhuada, Гуанчжоу	64-17-5	*Возможны альтернативные дистрибьюторы
реагент Guanidinium тиоцианат-фенол	Invitrogen	15596018	реагент TRIzol
Imidazole	Energy Chemical	288-32-4	*Возможны альтернативные дистрибьюторы
: Изопропиловый спирт	Nanjing Chemical Reagent	67-63-0	*Возможны альтернативные дистрибьюторы
: Изопропил &бета;- D-тиогалактопиранозид	Solarbio	367-93-1	*Возможны альтернативные дистрибьюторы
Kanamycin	Solarbio	25389-94-0	*Возможны альтернативные дистрибьюторы
LB Agar	Thermo Fisher	22700025	*Возможны альтернативные дистрибьюторы
LB Broth	Thermo Fisher	10855021	*Возможны альтернативные дистрибьюторы
Methanol	Цзиньхуада, Гуанчжоу	67-56-1	*Возможны альтернативные дистрибьюторы
MgCl2 гексагидрат	Xilong Huagong	7791-18-6	*Возможны альтернативные дистрибьюторы
NaCl	Xilong Huagong	7647-14-5	*Возможны альтернативные дистрибьюторы
NAD+	Due Biotech	53-84-9	*Возможны альтернативные дистрибьюторы
Фенил-метилсульфонилфторид	Macklin	329-98-6	*Возможны альтернативные дистрибьюторы
Tris	Solarbio	77-86-1	*Возможны альтернативные дистрибьюторы
UDP-глюкоза	Wuhu Nuowei Chemicals	28053-08-9	*Возможны альтернативные дистрибьюторы
UDP-глюкуроновая кислота	SIGMA	63700-19-6	*Возможны
альтернативные дистрибьюторыИнструменты/Инструменты:
MALDI-TOF масс-спектрометр	Bruker	Autoflex	* Возможны альтернативные распределители
Нагреватель металлических блоков	Long Yang Scientific Instruments	Термошейкер HB20	* Возможны альтернативные распределители
ПЦР термоамплификатор	Hema	9600	* Возможны
альтернативные распределителиEnzyme and Kits:
10× Буфер для лигирования	Thermo Scientific	B69	*Возможны альтернативные распределители
5& раз; Буфер PrimeSTAR	Takara	9158A
Щелочная фосфатаза	ThermoFisher FastAP	EF0654	*Альтернативные распределители возможны
прямой праймер COX	Genscript	ATGTCAAAAATCATTTAGACATTG
COX обратный праймер	Genscript	ACTTGACCAAAAACATAAGACATG
Cutsmart Buffer	NEB	B7204S	*Альтернативный дистрибьюторы возможные
dNTP mix	Invitrogen	18427088
MgUGD форвард-праймер	Genscript	ACATATGACCCTGTCCAAGATCTTGT
MgUGD обратный праймер		Genscript ACTCGAGACTCTGAGGCGGGTGGAGAG
MgUXS форвард-праймер	Genscript	CCATATGGCAGAATCCTCACAATCAC
MgUXS обратный праймер	Genscript	ACTCGAGCACATTTTTGAATTGCAGACGT
ND прямой праймер	Genscript	ATGAGATGGCAATTTTTTTTTAAT
ND обратный праймер	Genscript	ATGTATTTTGGAAAAATCTCCAC
Набор для очистки PCR	AxyGen	AP-PCR-250	*Возможны альтернативные распределители
pET-30a(+) вектор	Merck Millipore	69909