Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Подготовка крио-секций мышиной подвздошной сыки для иммуногистохимии

29.7K просмотров

DOI:

10.3791/59683

1 июля 2019 г.

В этой статье

Краткое содержание

В настоящем докладе описаны комплексные методы подготовки замороженных секций сетчатки мыши для иммуногистохимии (IHC). Описанные методы включают вскрытие глазной задней чашки, параформальдегидная фиксация, встраивание в оптимальную температуру резки (OCT) носителей и ориентации тканей, секционирование и иммуностоирование.

Аннотация

Подготовка высококачественных секций глаз мыши для иммуногистохимии (IHC) имеет решающее значение для оценки структуры и функции сетчаточной системы и для определения механизмов, лежащих в основе заболеваний сетчаточной железы. Поддержание структурной целостности на протяжении всей подготовки ткани имеет жизненно важное значение для получения воспроизводимых данных IHC сетчатого, но может быть сложной задачей из-за хрупкости и сложности цитоархитектуры сетчаточной системы. Сильные фиксаторы, как 10% формалин или решение Буин оптимально сохранить структуру сетчатки, они часто препятствуют анализУ IHC путем повышения фоновой флуоресценции и / или уменьшение антител-эпитопов взаимодействий, процесс, известный как эпитоп маскировки. Мягкие фиксаторы, с другой стороны, как 4% параформальдегида, снижает фоновой флуоресценции и эпитоп-маскировки, тщательные методы вскрытия должны быть использованы для сохранения структуры сыворотки. В этой статье мы представляем комплексный метод подготовки мыши глазной задней чашки для IHC, что достаточно, чтобы сохранить большинство антител-эпитоп взаимодействия без потери структурной целостности сетчатых. Мы включаем представительный IHC с антителами к различным маркерам типа сетчаточных клеток, чтобы проиллюстрировать сохранение тканей и ориентацию в оптимальных и неоптимальных условиях. Наша цель заключается в оптимизации IHC исследований сетчатки путем предоставления полного протокола от глазной задней чашки вскрытия IHC.

Введение

Иммуногистохимия (IHC) является мощным методом для локализации конкретныхбелков и клеточных структур в тканях на месте 1,2,3. Неуместные методы фиксации и субоптимальное сечение сложных тканей могут нарушить структуру тканей, генерировать высокие фоновые окрашивания или уменьшать антитела-эпитопные взаимодействия, что приводит к окрашиванию артефактов и последующему неправильному толкованию Данные IHC4. Поскольку позвоночную сетчатку является сложным и высокоорганизованным нервным органом, состоящим из слоев взаимосвязанных фоторецепторов, интернейроно....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Все описанные здесь методы были выполнены в строгом соответствии с рекомендациями Национального руководства по охране здоровья по уходу и использованию лабораторных животных, предоставленными Институтом лабораторных ресурсов животных, и были одобрены Институциональный комитет по уходу за животными и использованию Университета Пенсильвании.

Все инструменты и оборудование для методов показаны на рисунке 1 и перечислены в таблицематериалов.

1 . Мышь глаз энуклеации, рассечение чашки глаз, и встраивание

  1. Эвтаназия мышей суглекислым газом (CO 2), а зат....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Чтобы проиллюстрировать, как эти протоколы, обеспечить оптимальное сохранение сетчатки для IHC, мы исследовали участки сетчатки от p28 WT мышей (C57BL/6N) с антителами к родопсину (маркер фоторецептора)8, глутаминовой кислотой decarboxylase 65 (Gad65, амакринная клетка маркер)9, глутамин синтезаза (GS, маркер клетки Мюллера)10, и calbindin (горизонтальный маркер клетки)11 (.......

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Рассечение сетчатки мыши является деликатным процессом из-за небольшого размера и формы мыжеток и хрупкости ткани сетчатки. Несмотря на то, что выполнение высококачественного вскрытия является вопросом практики, наличие детального протокола, предоставление эффективных методов и советов является необходимостью получения секций сетчатого и IHC. В дополнение к протоколам, описанным здесь, есть несколько советов, которые позволяют последовательно высокого качества сетточной секции, которые подходят для воспроизводимых IHC.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Никаких разоблачений.

Благодарности

Эта работа была поддержана средствами NIH (RO1-GMO97327) и Университетского исследовательского фонда (UPenn). Мы особенно благодарим Светлану Савину за помощь в разработке протокола иммуногистохимии, Гордона Рутеля (Университет Пенсильвании) и Ядро визуализации ветеринаров Пенна за помощь в микроскопии и Лесли Кинг, доктор философии, за критическое чтение этой рукописи .

....

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
6-литровый стакан из нержавеющей стали (185 x 218 мм)Gilson #MA-48Для жидкого азота (Рисунок 1E)
Алюминиевая фольга 
Прижигатель Бови#AA01Для обозначения ориентации глаз (Рисунок 1A)
Изогнутые щипцы, пинцет Dumont #5/45, согнутый под углом 45 градусов;Электронная микроскопияSciences#72703-DДля энуклеации и поддержания глаз мышей (Рисунок 1A)
Изогнутые ножницы, пружинные ножницы Vannas - режущая кромка 2,5 мм Инструменты для изобразительной науки #15002-08Для надреза роговицы по окружности (Рисунок 1B)
Стоматологическая препаративная чашкадля вскрытия наглазника (Рисунок 1C)
Препарирующий микроскоп Leica, Хьюстон, США MZ12.5 Высокопроизводительный микромикроскоп Микроножи
- Пластиковая ручка Инструменты для изобразительной науки #10315-12Сделать небольшой разрез на месте ожога (Рисунок 1А)
Розовый зубной воск Электронная микроскопия Наук #72660Тарелка для препарирования покрытий
Тед Пелла#36107Для сетчатки ИГХ (Рисунок 1G)
Стакан из нержавеющей стали (89 x 114мм)Gilson #MA-40Для изопентановой ванны (Рисунок 1E)
Пенополистирольная коробкаДля изолированного холодильника
Тонкие щипцы Dumont #5   Инструменты для изобразительной науки #11254-20Для удаления роговицы и извлечения хрусталика (Рисунок 1B)
Cryomold  (10 мм x 10 мм x 5 мм)Наука об электронной микроскопии #62534-10Форма для закладки
ОКТБуферы и реагентыCompanyКаталожный номер<strong>Комментарии
Блокирующий раствор2% Нормальная лошадиная сыворотка, 1,5% Желатин холодной рыбьей кожи (40-50% в H2O, кош. #G7765), 5% бычий сывороточный альбумин (кат. #AK1391-0100) в буфере для пермеабилизации.  
Гельватол (антивыцветающий монтажный материал)Под вытяжным шкафом растворите 0,337 г DABCO (Sigma cat #D2522-25G) в 10 мл Fluoromount G (Fisher cat #OB100-01).  Отрегулируйте pH до 8-8,5 с 12N HCl (~ 5 капель).  Хранить в флаконе с янтарными каплями при температуре 4° С  (8). 
Hoechst 33342 1000x StockThermo Scientific#622491 мг/мл в PBS (1000x). Аликвот и хранить в темноте, при температуре 4°С; C на срок до 1 года или при -20°С; C для длительного хранения. Готовим свежие  при 1 мкг/мл (1x) 
Изопентан, 99% GFS Chemicals#2961
жидкого азота
(PFA) в PBSElectronic Microscopy Sciences #15710Готовый свежий 4% PFA из 16% запаса PFA. Храните оставшиеся 16% PFA при температуре 4° C в темноте. 
для пермеабилизацииPBS + 0,25% Triton-X (AMRESCO cat #0694-1L) + 0,05% NaN3.  Готовьте свежие.
Фосфатно-солевой буфер (PBS)Bioworld #41620015-200,02 г/л KCl, 0,02 г/л KH2PO4, 0,8 г/л NaCl, 0,216 г/л Na2HPO4, pH 7,4.  Готовится из 10x бульона 
Растворы сахарозыFisher Scientific   #S-5-500Растворите соответствующее количество сахарозы в 37°°; C PBS (требуется ~15 минут для растворения). Может храниться в течение нескольких дней при температуре 4 
Ткань-Тек ОКТ-соединение Сакура&nbsp;#4583
Антитела<strong>CompanyНомер в каталоге>Комментарии
антикальбиндинSigma-AldrichC8666Для маркировки клеток горинзоталя 
anti-GAD65ChemiconAB5082Для маркировки ГАМКергических амакриновых клеток
anti-GSBD Transduction610517Для маркировки Mü Клетки
антиродопсинMilliporeMAB5316Для маркировки стержней
35мм с восковым покрытием Параформальдегид Раствор

Ссылки

  1. Coons, A. H. Labelled antigens and antibodies. Annual Review of Microbiology. 8, 333-352 (1954).
  2. Coons, A. H. Fluorescent antibodies as histochemical tools. Federation Proceedings. 10 (2), 558-559 (1951).
  3. Coons, A. H., Kaplan, M. H.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

OCT