Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Обнаружение гликозаминогликанов методом электрофореза полиакриламидного геля и окрашивания серебра

4.7K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/62319

⸱

25 февраля 2021 г.

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Medicine, University of Colorado Anschutz Medical Campus, 2Medical Scientist Training Program, University of Colorado Anschutz Medical Campus, 3Department of Chemistry and Chemical Biology, Rensselaer Polytechnic Institute, 4Department of Health Sciences, Curtin University, 5Department of Medicine, Denver Health Medical Center

В этой статье

Краткое содержание

В этом отчете описываются методы выделения и очистки сульфатированных гликозаминогликанов (ГАГ) из биологических образцов и подход электрофореза полиакриламидного геля для приближения их размера. ГАГ способствуют структуре тканей и влияют на сигнальные процессы посредством электростатического взаимодействия с белками. Длина полимера GAG способствует их сродству связыванию с родственными лигандами.

Аннотация

Сульфатированные гликозаминогликаны (GAGs), такие как гепарансульфат (HS) и хондроитин сульфат (CS), повсеместно распространены в живых организмах и играют решающую роль в различных основных биологических структурах и процессах. В качестве полимеров GAG существуют в виде полидисперсной смеси, содержащей полисахаридные цепи, которые могут варьироваться от 4000 Да до более 40 000 Да. Внутри этих цепей существуют домены сульфатации, приделяющие паттерн отрицательного заряда, который облегчает взаимодействие с положительно заряженными остатками родственных белковых лигандов. Сульфатированные домены ГАГ должны быть достаточной длины, чтобы обеспечить эти электростатические взаимодействия. Чтобы понять функцию ГАГ в биологических тканях, исследователь должен быть в состоянии изолировать, очистить и измерить размер ГАГ. В этом отчете описывается практический и универсальный метод электрофореза на основе полиакриламидного геля, который может быть использован для устранения относительно небольших различий в размерах между GAG, выделенными из различных типов биологических тканей.

Введение

Гликозаминогликаны (ГАГ) представляют собой разнообразное семейство линейных полисахаридов, которые являются повсеместным элементом в живых организмах и способствуют многим основным физиологическим процессам1. ГАГ, такие как гепарансульфат (HS) и хондроитин сульфат (CS), могут быть сульфатированы в различных положениях вдоль полисахаридной цепи, придав географическим доменам отрицательный заряд. Эти GAG, будучи привязанными к белкам клеточной поверхности, известным как протеогликаны, проецируются во внеклеточное пространство и связываются с родственными лигандами, что позволяет регуляцию как цис- (лиганд, прикрепленный к одной и той же клетке), так и транс- (лиганд, прикрепленный к соседней клетке) сигнальных процессов2. Кроме того, ГАГ также выполняют решающую роль в качестве структурных элементов в тканях, таких как клубочковая базальная мембрана3,сосудистый эндотелиальный гликокаликс4 и легочный эпителиальный гликокаликс5,а также в соединительных тканях, таких как хрящ6.

Длина полисахаридных цепей GAG существенно варьируется в зависимости от ее биологического контекста и может динамически удлигаться, расщепляться и модифицироваться очень сложной ферментативной регуляторной системой7. Важно отметить, что длина полимерных цепей GAG существенно способствует их сродству связывания к лигандам и, впоследствии, их биологической функции8,9. По этой причине определение функции эндогенной ГАГ требует оценки ее размера. К сожалению, в отличие от белков и нуклеиновых кислот, существует очень мало легкодоступных методов обнаружения и измерения ГАГ, что исторически привело к относительно ограниченному исследованию биологических ролей этого разнообразного семейства полисахаридов.

В этой статье описывается, как изолировать и очищать ГАГ из большинства биологических тканей, а также описывается, как использовать электрофорез полиакриламидного геля (PAGE) для оценки длины выделенных полимеров с достаточной степенью специфичности. В отличие от других, очень сложных (и часто основанных на масс-спектрометрии) гликомических подходов, этот метод может быть использован с использованием стандартного лабораторного оборудования и методов. Таким образом, этот практический подход может расширить возможности исследователей по определению биологической роли нативных ГАГ и их взаимодействия с контекстуально важными лигандами.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Все биологические образцы, проанализированные в этом протоколе, были получены от мышей в соответствии с протоколами, одобренными Комитетом по уходу и использованию животных Университета Колорадо.

1. Выделение сульфата гепарана

  1. Делипидация образцов тканей
    ПРИМЕЧАНИЕ: Делипидация является необязательным этапом для богатых жирами тканей.
    1. Сделайте смесь метанола и дихлорметана 1:1. Приготовить приблизительно 500 мкл на образец; более крупные куски ткани могут потребовать до 1 мл.
    2. Поместите каждый образец ткани в небольшой стеклянный контейнер с крышкой для делипидации.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Масса образца может варьироваться в зависимости от ткани, представляющих интерес, и экспериментальных потребностей. 50 мг или менее обычно достаточно для адекватного выхода GAG, но конечному пользователю может потребоваться некоторая оптимизация.
    3. Добавьте 500 мкл раствора метанола: дихлорметана в каждый стеклянный контейнер и перемешайте. Убедитесь, что все образцы твердых тканей полностью погружены в растворитель.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Используйте серологические пипетки или пластиковые конические трубки для смешивания и обработки раствора метанола/дихлорметана; другие пластмассы могут растворяться.
    4. Поместите образцы на шейкер (в защищенную стойку) в химический вытяжной капюшон и осторожно перемешивайте в течение 1 ч.
    5. Перемешивают образцы до смешивания и центрифуги при 17 000 х г в течение 5 мин при 4 °C.
    6. Осторожно вылейте фракцию органического растворителя (супернатанта). Это липидная фракция – она не содержит ГАГ и может быть выброшена.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Постарайтесь не беспокоить ткани, так как небольшие кусочки могут быть потеряны. Предпочтительно оставить часть органического слоя в контейнере для образцов, а не рисковать потерей образца.
    7. Оставьте крышку стеклянной емкости открытой и дайте ей испариться в течение ночи в вытяжке. Замените трубку для следующего этапа, так как эти трубки не выдержут дальнейшую обработку.
    8. Как только смесь растворителя полностью испарится, приступают к механическому распаду (если остаточный образец составляет >50 мг) или перевариванию актиназы Е (< 50 мг).
  2. Механический распад твердой ткани (опционально; для более крупных образцов тканей)
    ПРИМЕЧАНИЕ: Большинство небольших кусочков твердой ткани (примерно 50 мг или менее) должны полностью раствориться на этапе пищеварения. Однако более крупные образцы потребуют механического распада.
    1. Интересующие образцы мгновенной заморозки, помещая их в полипропиленовую трубку соответствующего размера и помещая закрытую трубку в жидкий азот. Дайте образцу замерзнуть до полного твердого вещества.
    2. Используя чистую ступку и пестик, измельчите замороженные образцы в порошкообразную консистенцию.
    3. Приступайте непосредственно к пищеварению актиназы Е (шаг 1.4).
  3. Обессоливание и концентрация проб
    ПРИМЕЧАНИЕ: Это необязательный этап, который требуется только для разбавления образцов жидких тканей (например, бронхо-альвеолярной промывной жидкости (BALF) или плазмы).
    1. Объединение жидких образцов в соответствующие экспериментальные группы (например, по биологической реплике или экспериментальной группе)
    2. Поместите общий объем образца в колонку центробежного фильтра объемом 500 мкл с отсечкой молекулярной массы (MWCO) 3000 Да.
    3. Отжимать в течение 30 мин при 14 000 х г при комнатной температуре. Повторите по мере необходимости, если требуемый объем образца превышает емкость колонки центробежного фильтра.
    4. Промывайте каждую колонку 3x 400 мкл деионизированной, фильтрованной воды. Отбросьте поток.
    5. Переверьте фильтр и открутите в течение 1 мин при 2 000 х г в свежих, соответствующим образом маркированных сборных тубах. Заморозьте при -80 °C или перейдите к следующему шагу.
  4. Переваривание актиназы Е
    ПРИМЕЧАНИЕ: Этот шаг необходим для переваривания и в конечном итоге удаления белковых загрязнителей из вашего образца.
    1. Смешайте образцы 1:1 с рекомбинантной актиназой Е до желаемой концентрации 10 мг/мл. Добавьте соответствующий объем 10-кратного буферного концентрата для пищеварения. Желаемая конечная концентрация: 0,005 М ацетата кальция и 0,01 М ацетата натрия, рН 7,5. Например: 190 мкл жидкого образца, 190 мкл 20 мг/мл актиназы Е, 20 мкл 0,05 М ацетата кальция, 0,1 М ацетата натрия.
    2. Образцы осторожно перемешивают, затем переваривают в течение 48-72 ч при 55 °C (до 7 дней для целой ткани).
    3. Нагревать до 80 °C в течение 15-20 мин для нагрева инактивировать актиназу Е.
    4. Заморозьте образец при -80 °C или продолжайте двигаться к шагу 1,5.
  5. Обессоливание и концентрация проб
    ПРИМЕЧАНИЕ: Если в биологическом образце ожидается низкая масса интересующего ГАГ или если желательно сохранение расходуемых реагентов (т.е. центробежных фильтрующих колонн), образцы могут быть объединены для получения одного концентрата на экспериментальную группу (например, биологической репликой или экспериментальной группой).
    1. Поместите общий объем образца в колонку центробежного фильтра объемом 500 мкл с MWCO 3000 Da.
    2. Отжимать в течение 30 мин при 14 000 х г при комнатной температуре. Повторите по мере необходимости, если требуемый объем образца превышает емкость центробежной фильтрующей колонны.
    3. Промывайте каждую колонку 3x 400 мкл деионизированной, фильтрованной воды. Отбросьте поток.
    4. Инвертировать фильтр и отжимать в течение 1 мин при 2 000 х г в свежих, соответствующим образом маркированных коллекторных трубках (обычно входят в комплект поставки центробежных фильтруемых колонн). Заморозьте при -80 °C или перейдите к следующему шагу.
  6. Высыхание
    1. Либо поместите растворенные образцы из этапа 1.5.5 во вращательную вакуумную концентратор на ночь, либо лиофилизируйте образцы, как описано ниже.
    2. Тщательно заморозьте образцы либо на ночь при -80 °C, либо путем погружения в жидкий азот.
    3. Проткните крышки образца иглой 18 Г и поместите в камеру лиофилизатора. Добавьте бумажные полотенца для упаковки по мере необходимости.
    4. Зафиксируйте камеру лиофилайзера на лиофилизаторе и высушите сублимационную в течение ночи (не менее -40 °C, 0,135 Torr)
  7. Катионообменная колонна
    1. Повторное суспендирование высушаемых образцов в объеме до 400 мкл 8 М мочевины, 2% раствора CHAPS (или, при объединении образцов, повторное суспендирование до максимума (400/n) мкл, где n = количество образцов в желаемом пуле. Используйте как можно меньше моющего раствора.
    2. Уравновешивают катионообменную колонну (IEX) 400 мкл 8 М мочевины, 2% раствор ЧАПС. Отжимать в течение 5 мин при 2 000 х г при комнатной температуре.
    3. Загрузите 400 мкл образцов/объединенных образцов в колонку IEX. Вращаться в течение 5 мин при 2 000 х г.
    4. Промыть 3x 400 мкл 8 М мочевины, 2% раствор ЧАПС. Вращайте в течение 5 минут при 2 000 х г каждый раз.
    5. Elute 3x с 400 мкл 0,2 М NaCl. Вращать в течение 5 мин при 2 000 х г каждый. Это фракция с низким сродством - при желании ее можно сохранить для целей контроля качества.
    6. Elute 3x с 400 мкл 2,7 М (16%) NaCl. Вращать в течение 5 мин при 2 000 х г каждый. Эта фракция будет содержать выделенные гликозаминогликаны, представляющие интерес - сохраните все это!
    7. Чтобы обессолить каждую элюированную фракцию, добавляют метанол до 80 об.% и инкубируют при 4 °C в течение ночи. Вращайте каждый образец в течение 5 минут при 2 000 х г. Рекуперирует твердый остаток, так как это высушенный обеззаленный гликозаминогликан.
      ПРИМЕЧАНИЕ: В качестве альтернативы пропустите этот этап и перейдите к этапу 1.8 для обезживливать элюат без метанола.
  8. Обессоливание и концентрация проб
    1. При необходимости объединяют элюированные фракции (из 1.7.6) в соответствующие экспериментальные группы (например, по биологической реплике или экспериментальной группе).
    2. Поместите общий объем образца в колонку центробежного фильтра объемом 500 мкл с MWCO 3000 Da.
    3. Отжимать в течение 30 мин при 14 000 х г при комнатной температуре. Повторите по мере необходимости, если требуемый объем образца превышает емкость центробежной фильтрующей колонны.
    4. Промывайте каждую колонку 3x 400 мкл деионизированной, фильтрованной воды. Выбрасываемые потоки. Перейдите непосредственно к шагу 1.9.
  9. Переваривание хондроитина
    ПРИМЕЧАНИЕ: Целью этого шага является удаление GAG, не представляющих интереса для конечного пользователя. В этом случае хондроитиназа используется для удаления хондроитина. В тканях, используемых для получения репрезентативных результатов (бронхо-альвеолярная лаважная жидкость и все легкое), переваривание хондроитина сульфата листьев гепарана сульфата в качестве первичного остаточного GAG. Конечным пользователям может потребоваться добавить дополнительные этапы пищеварения в зависимости от их экспериментальных целей.
    1. Загрузите 350 мкл буфера пищеварения (50 мМ ацетата аммония с 2 мМ хлорида кальция с поправкой на рН 7,0) в колонку центробежного фильтра, не касаясь мембраны.
    2. Добавляют 5 мкл рекомбинантной хондроитиназы ABC.
    3. Поместите пробирку для образцов в духовку с 37 °C и инкубировать в течение 1 ч.
    4. Переверните колонну и поместите в соответствующие наборные трубки. Отжим в течение 1 мин при 2000 х г.
    5. Нагревайте образцы до 80 °C в течение 15-20 мин для инактивации хондроитиназы ABC.
  10. Обессоливание и концентрация проб
    1. При необходимости пул хондроитина переваривал образцы со этапа 1.9.5 в соответствующие экспериментальные группы (например, по биологической реплике или экспериментальной группе)
    2. Поместите общий объем образца в колонку центробежного фильтра объемом 500 мкл с MWCO 3000 Да.
    3. Отжимать в течение 30 мин при 14 000 х г при комнатной температуре. Повторите по мере необходимости, если требуемый объем образца превышает емкость колонки центробежного фильтра.
    4. Промывайте каждую колонку 3x 400 мкл деионизированной, фильтрованной воды. Отбросьте поток.
    5. Инвертировать фильтр и отжимать в течение 1 мин при 2 000 х г в свежих, соответствующим образом маркированных сборных тубах. Заморозьте при -80 °C или перейдите к следующему шагу.
  11. Высыхание
    ПРИМЕЧАНИЕ: На этом этапе высыхание необходимо для того, чтобы образцы можно было повторно суспендовать в минимально возможном количестве воды и проточном буфере.
    1. Либо поместите переваренные образцы хондроитина со этапа 1.10.5 непосредственно во вращающийся вакуумный концентратор на ночь или лиофилизируйте следующим образом:
    2. Тщательно заморозьте образцы либо на ночь при -80 °C, либо путем погружения в жидкий азот.
    3. Проткните крышки образца иглой 18 Г и поместите в камеру лиофилизатора. Добавьте бумажные полотенца для упаковки по мере необходимости.
    4. Зафиксируйте камеру лиофилизатора к лиофилизатору и высушите лиофилизером в течение ночи (не менее 40 °C, 0,135 Торра)

2. Электрофорез полиакриламидного геля из выделенных и очищенных гликозаминогликанов

  1. Заранее готовят растворы, необходимые для электрофореза полиакриламидного геля (ПАЖ)(табл. 1).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Выберите процент акриламида раствора разрешающего геля в зависимости от размера гликозаминогликанов, которые, как ожидается, будут в образце. 15% рекомендуется для рассасывания более крупных фрагментов (более 30 дисахаридных субъединиц в длину); 22% для более мелких фрагментов (<20 дисахаридных субъединиц в длину).
  2. Поместите пустую кассету в резервуар PAGE. Отлить рассасывающий гель следующим образом: В пробирке объемом 15 мл смешать 10 мл раствора разрешающего геля, 60 мкл 10% персульфата аммония (должен быть свежеприготовленным) и 10 мкл TEMED (добавить TEMED последним). Осторожно переверяем трубку в 2-3 раза. Используйте пипетку, чтобы быстро добавить вышеуказанный раствор 10 мл в кассету. Наложить 2 мл деионизированной, фильтрованной воды и дать рассасывающейся гелю полимеризоваться в течение 30 мин.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Следующий протокол PAGE был оптимизирован для вертикальной системы PAGE с использованием литейных кассет толщиной 13,3 x 8,7 см (ширина x длина) толщиной 1,0 мм общим объемом около 12 мл. Другие кассетные системы могут быть использованы, но могут потребовать оптимизации конечным пользователем.
  3. После того, как разрешающий гель полностью полимеризуется, отбросьте наложенную воду и отлить укладочный гель следующим образом: в пробирке объемом 15 мл смешайте 3 мл раствора геля для укладки, 90 мкл 10% персульфата аммония (должен быть свежеприготовлен), 3 мкл TEMED (добавьте TEMED последним).
  4. Осторожно переверяем трубку в 2-3 раза. Используйте пипетку, чтобы быстро добавить укладывающий гель поверх затвердевания разрешающего геля; заполнить кассету до краев. Полностью вставьте гребень, входящий в комплект поставки. Дайте укладываемым гелю полимеризоваться в течение 30 мин.
  5. После полимеризации геля убедитесь, что ленточная лента удалена со дна кассеты, и поместите кассету обратно в сборку резервуара PAGE.
  6. Заполните верхнюю и нижнюю камеры буфером верхней и нижней камер соответственно.
  7. Растворите высушенные образцы со ступени 1.11.4 в минимально необходимом объеме деионизированной, фильтрованной воды (не более 50% от объема скважин в геле PAGE). Смешайте 1:1 с буфером загрузки образца. Загрузите образцы HS и олигосахаридные «лестницы» (см. таблицу 1)в гель.
  8. Предварительно запустите гель в течение 5 мин при 100 В. Затем запускают гель при 200 В в течение 20-25 мин (для 15% полиакриламидного разрешающего геля), 40-50 мин (для 18% полиакриламидного разрешающего геля), 90-100 мин (для 22% полиакриламидного разрешающего геля).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Может потребоваться некоторая оптимизация времени выполнения 200 В. Фенол красный мигрирует впереди олигосахаридов гепарина, которые имеют длину 2 полимерные субъединицы (т.е. степень полимеризации 2 или dp2); бромфенол синий мигрирует раньше dp10-dp14. Наилучшие результаты получаются при подаче такого напряжения, что фенольно-красная полоса мигрирует почти, но не совсем, на дно геля. Отрегулируйте время выполнения соответствующим образом.

3. Протокол окрашивания серебра

  1. Заранее подготовьте все растворы, необходимые для окрашивания серебра(таблица 2).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Не прикасайтесь непосредственно к гелю PAGE до тех пор, пока он не будет окрашен, разработан и помещен в стоп-раствор. Вместо этого манипулируйте гелем, используя чистые пластиковые или стеклянные инструменты. Непосредственное обращение с гелем приведет к искажениям отпечатков пальцев и другим видимым артефактам на геле после окрашивания.
  2. После завершения пробега разберите кассету и извлеките гель в чистый контейнер среднего размера, заполненный деионизированной, фильтрованной водой.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Чтобы избежать непосредственного обращения с гелем, используйте наконечник пипетки или другой пластиковый предмет, чтобы аккуратно отклеить гель от кассеты во время погружения в воду. Гель может быть хрупким – обращаться осторожно.
    1. Выбросьте воду. Окрашивание геля в раствор для окрашивания Alcian blue в течение 5 мин.
    2. Отбросьте алцианское синее пятно. Быстро промывайте/промывайте 2-3 раза деионизированной, фильтрованной водой до тех пор, пока большая часть раствора для окрашивания Alcian blue не будет удалена.
    3. Дайте обеззаражить деионизированную, фильтрованную воду в течение ночи на коромысле. Убедитесь, что имеется достаточный объем деионизированной, отфильтрованной воды, чтобы гарантировать, что любое остаточное пятно полностью смывается с геля в течение ночи.
    4. Промыть гель в 50% метаноле (всего 40 мин, заменить раствор 2-3х).
    5. Промыть гель в деионизированной, фильтрованной воде в течение 30 мин. Выбросьте воду и повторите еще 3 раза в течение 2 ч, каждый раз заменяя воду.
    6. В свежей, чистой емкости окрашивать гель в течение 30 мин раствором для окрашивания нитратом серебра.
    7. Быстро промойте/смойте 2-3 раза в деионизированной, фильтрованной воде, чтобы полностью удалить раствор для окрашивания серебра.
    8. Промывайте в течение 30 мин в деионизированной, фильтрованной воде. Отбросьте воду и повторите 2 раза в общей сложности 90 минут, каждый раз заменяя водяную баню.
    9. Отбросьте воду и добавьте развивающий раствор.
    10. После того, как развивающий раствор добавлен, внимательно наблюдайте за гелем и следите за появлением полос. В зависимости от качества пятна и массы загруженного образца, разработка может занять от нескольких секунд до нескольких минут.
    11. Как только видны нужные полосы, немедленно отбросьте развивающийся раствор и ненадолго промойте стоп-раствором.
    12. Откажитесь от стоп-раствора, промыть и заменить его свежим стоп-раствором. Дать впитаться в течение 1 ч на коромысле или шейкере.
    13. Промывайте в деионизированной, фильтрованной воде на ночь (однако гель можно визуализировать сразу после остановки промывки раствором).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Альциановый синий используется для окрашивания сульфатированных GAGs 10; этот сигнал усиливается с помощью последующего серебряного пятна 11. На рисунке 1 представлена наглядная демонстрация процесса развития окрашивания серебром. Как было показано, альцианианский синий сигнал, представляющий ГАГ, разделенные электрофорезом, усиливается по мере проникновения развивающего агента в полиакриламидный гель. Как правило, развивающийся процесс уменьша...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

ГАГ играют центральную роль во многих разнообразных биологических процессах. Одной из основных функций сульфатированных GAG (таких как HS и CS) является взаимодействие с лигандами и связывание с них, которые могут изменять последующие сигнальные функции. Важным фактором, определяющим сродство связывания GAG с родственными лигандами, является длина полимерной цепи GAG 8,9,14. По этой причине важно, чтобы исследователи могли с раз...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих финансовых интересов.

Благодарности

Эта работа финансировалась F31 HL143873-01 (WBL), R01 HL125371 (RJL и EPS)

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Accuspin Micro17 настольная микроцентрифугаthermoFisher Scientific13-100-675Любая настольная комбинация микроцентрифуг/ротор, способная выдерживать 14000 xG
, подходит Акриламид (твердый)thermoFisher ScientificBP170-100Электрофорез класса
Actinase ESigma AldrichP5147Смесь протеаз из S. griseus
Alcian Blue 8GX (твердый)thermoFisher ScientificAC400460100
ацетат аммония (твердый)thermoFisher ScientificA639-500Молекулярно-биологический класс
гидроксид аммония (жидкий)thermoFisher ScientificA669S-500сертифицированный ACS
персульфат аммония (твердый)thermoFisher ScientificBP179-25электрофорез класса
Barnstead GenPure Pro Water Система очисткиThermoFisher Scientific10-451-217PKGЛюбая система деионизации/очистки воды является приемлемой заменой
Борная кислота (твердая)thermoFisher ScientificA73-500Класс молекулярной биологии
Бромфенол синий (твердый)thermoFisher ScientificB392-5
Ацетат кальция (твердый)ThermoFisher Scientific18-609-432Молекулярная биология класс
Хлорид кальция (твердый)ThermoFisher ScientificAC349610250Молекулярная биология класс
CHAPS моющее средство (3-((3-холамидопропил) диметиламмонио)-1-пропансульфонат)ThermoFisher Scientific28299
Хондроитиназа ABCSigma AldrichC3667
Критерий пустая кассета для PAGE (толщина 1,0 мм, 12+2 лунки)Bio-Rad3459901Подойдет любая кассетная система литья PAGE толщиной 1,0 мм
Система ячеек Criterion PAGE (ячейка и источник питания)Bio-Rad1656019подойдет любая сопоставимая вертикальная гелевая система PAGE)
Дихлорметан (жидкий)thermoFisher ScientificAC610931000сертифицированный ACS
EDTA динатриевая соль (твердый)thermoFisher Scientific02-002-786Молекулярный биологический класс
Ледяная уксусная кислота (жидкая)thermoFisher ScientificA35-500Сертифицированный ACS
Глицин (твердый)thermoFisher ScientificG48-500Электрофорез
Степень гепараназы I/IIISigma AldrichH3917Из Flavobacterium heparinum
Гепарин производный декасахарид (dp10)гален ScientificHO10
Гексасахард гепарина (dp6)Галлен ScientificHO06
Олигосахарид гепарина (dp20)Гален научныйHO20
Соляная кислота (жидкость)thermoFisher ScientificA466-250
ЛиофилизаторLabconco7752020Подойдет любой лиофилизатор, который может достигать -40C и 0,135 торр; также может быть заменен на ротационный вакуумный концентратор
Метанол (жидкий)thermoFisher ScientificA412-500Сертифицированный ACS
Молекулярный имиджер Gel Doc XR SystemBio-Rad170-8170Любая сопоставимая система визуализации геля является приемлемой заменой
N,N'-метилен-бис-акриламид (твердый)thermoFisher ScientificBP171-25Электрофорез класса
Фенол красный (твердый)thermoFisher ScientificP74-10Свободная кислота
Q Mini H Ионообменная колонкаVivapureVS-IX01QH24Ионообменная колонка должна иметь минимальный объем загрузки 0,4 мл, рабочий pH 2-12 и селективность по ионным группам с pKa 11
Нитрат серебра (твердый)thermoFisherScientific S181-25сертифицированный ACS
ацетат натрия (твердый)ThermoFisher ScientificS210-500Класс молекулярной биологии
Хлорид натрия (твердый)thermoFisher ScientificS271-500Молекулярная биология класса
Гидроксид натрия (твердый)thermoFisher ScientificS392-212
Сахароза (твердый)thermoFisher ScientificBP220-1Молекулярная биология класса
TEMED (N,N,N',N'-тетраметилендиамин)thermoFisher ScientificBP150-20Электрофорез класса
Tris base (твердое)thermoFisher ScientificBP152-500класса молекулярной биологии
, 0,5 мл, 3000 Да отсечки молекулярной массыAmiconUFC500324Могут использоваться фильтрующие блоки большего объема, в зависимости от размера образца.
Мочевина (твердая)ThermoFisher Scientific29700
Vacufuge PlusEppendorf22820001Подойдет любой вращающийся вакуумный концентратор; может быть заменен на лиофилизатор
Вакуумный фильтрующий блок, одноразовый, 0,22 мкМ пор PES, объем 500 млthermoFisher Scientific569-0020Альтернативные объемы и фильтрующие материалы приемлемы
Ультрацентробежные фильтры

Ссылки

  1. LaRivière, W. B., Schmidt, E. P. The pulmonary endothelial glycocalyx in ARDS: A critical role for heparan sulfate. Current Topics in Membrane. 82, 33-52 (2018).
  2. Haeger, S. M., Yang, Y., Schmidt, E. P. Heparan sulfate in the developing, healthy, and injured lung. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 55 (1), 5-11 (2016).
  3. Morita, H., Yoshimura, A., Kimata, K. The role of heparan sulfate in the glomerular basement membrane. Kidney International. 73 (3), 247-248 (2008).
  4. Schmidt, E. P., et al. The pulmonary endothelial glycocalyx regulates neutrophil adhesion and lung injury during experimental sepsis. Nature Medicine. 18 (8), 1217-1223 (2012).
  5. Haeger, S. M., et al. Epithelial heparan sulfate contributes to alveolar barrier function and is shed during lung injury. American Journal of Respiratry Cell and Molecular Biology. 59 (3), 363-374 (2018).
  6. Mankin, H. J., Lippiello, L. The glycosaminoglycans of normal and arthritic cartilage. Journal of Clinical Investigation. 50 (8), 1712-1719 (1971).
  7. Annaval, T., et al. Heparan sulfate proteoglycans biosynthesis and post synthesis mechanisms combine few enzymes and few core proteins to generate extensive structural and functional diversity. Molecules. 25 (18), (2020).
  8. Zhang, F., et al. Comparison of the interactions of different growth factors and glycosaminoglycans. Molecules. 24 (18), (2019).
  9. Pempe, E. H., Xu, Y., Gopalakrishnan, S., Liu, J., Harris, E. N. Probing structural selectivity of synthetic heparin binding to Stabilin protein receptors. Journal of Biological Chemistry. 287 (25), 20774-20783 (2012).
  10. Cowman, M. K., et al. Polyacrylamide-gel electrophoresis and Alcian Blue staining of sulphated glycosaminoglycan oligosaccharides. Biochemical Journal. 221 (3), 707-716 (1984).
  11. Møller, H. J., Poulsen, J. H. Improved method for silver staining of glycoproteins in thin sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gels. Analytical Biochemistry. 226 (2), 371-374 (1995).
  12. Min, H., Cowman, M. K. Combined alcian blue and silver staining of glycosaminoglycans in polyacrylamide gels: Application to electrophoretic analysis of molecular weight distribution. Analytical Biochemistry. 155 (2), 275-285 (1986).
  13. Jay, G. D., Culp, D. J., Jahnke, M. R. Silver staining of extensively glycosylated proteins on sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gels: Enhancement by carbohydrate-binding dyes. Analytical Biochemistry. 185 (2), 324-330 (1990).
  14. Abraham, E., et al. Liposomal prostaglandin E1 (TLC C-53) in acute respiratory distress syndrome: a controlled, randomized, double-blind, multicenter clinical trial. TLC C-53 ARDS Study Group. Critical Care Medicine. 27 (8), 1478-1485 (1999).
  15. Pervin, A., al-Hakim, A., Linhardt, R. J. Separation of glycosaminoglycan-derived oligosaccharides by capillary electrophoresis using reverse polarity. Analytical Biochemistry. 221 (1), 182-188 (1994).
  16. Wang, Z., Zhang, F., Dordick, J. S., Linhardt, R. J. Molecular mass characterization of glycosaminoglycans with different degrees of sulfation in bioengineered heparin process by size exclusion chromatography. Current Analytical Chemistry. 8 (4), 506-511 (2012).
  17. Pepi, L. E., Sanderson, P., Stickney, M., Amster, I. J. Developments in mass spectrometry for glycosaminoglycan analysis: A review. Molecular and Cellular Proteomics. , 100025(2021).
  18. Whiteman, P. The quantitative measurement of Alcian Blue-glycosaminoglycan complexes. Biochemical Journal. 131 (2), 343-350 (1973).
  19. Yuan, H., et al. Molecular mass dependence of hyaluronan detection by sandwich ELISA-like assay and membrane blotting using biotinylated hyaluronan binding protein. Glycobiology. 23 (11), 1270-1280 (2013).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Обнаружение гликозаминогликанов методом электрофореза полиакриламидного геля и окрашивания серебра
Связаться с нами
Порекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия использования

Политики

© 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.