Протокол описывает методологию внеклеточной регистрации в моторной коре (МК) для выявления внеклеточных электрофизиологических свойств у свободно движущихся мышей, находящихся в сознании, а также анализ данных потенциалов локального поля (LFP) и спайков, что полезно для оценки нейронной активности сети, лежащей в основе интересующего поведения.
Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.
Методическая статья
Многоканальная внеклеточная запись у свободно движущихся мышей
* These authors contributed equally
В этой статье
Краткое содержание
Аннотация
Протокол направлен на раскрытие свойств возбуждения нейронов и сетевых локальных полевых потенциалов (LFP) у мышей, выполняющих специфические задачи, путем корреляции электрофизиологических сигналов со спонтанным и/или специфическим поведением. Этот метод представляет собой ценный инструмент в изучении активности нейронной сети, лежащей в основе этого поведения. В статье подробно описана и полная процедура имплантации электродов и последующей внеклеточной регистрации у мышей со свободноподвижным сознанием. Исследование включает в себя детальный метод имплантации микроэлектродных решеток, захвата сигналов LFP и нейрональных спайков в моторной коре (МК) с использованием многоканальной системы и последующего автономного анализа данных. Преимущество многоканальной регистрации у животных, находящихся в сознании, заключается в том, что можно получить и сравнить большее количество спайковых нейронов и подтипов нейронов, что позволяет оценить взаимосвязь между конкретным поведением и связанными с ним электрофизиологическими сигналами. Примечательно, что методика многоканальной внеклеточной регистрации и процедура анализа данных, описанная в настоящем исследовании, могут быть применены и к другим областям мозга при проведении экспериментов на мышах.
Введение
Потенциал локального поля (LFP), важный компонент внеклеточных сигналов, отражает синаптическую активность больших популяций нейронов, которые формируют нейронный код длямножественного поведения. Считается, что спайки, генерируемые нейронной активностью, вносят свой вклад в LFP и важны для нейронного кодирования2. Было доказано, что изменения в спайках и LFP опосредуют некоторые заболевания мозга, такие как болезнь Альцгеймера, а также эмоции, такие как страх и т. д. Стоит отметить, что во многих исследованиях было подчеркнуто, что активность спайков значительно различается между бодрствующим и наркозным состояниями у животных5. Несмотря на то, что записи у животных, находящихся под наркозом, дают возможность оценить LFP с минимальными артефактами в строго определенных состояниях синхронизации коры головного мозга, результаты в некоторой степени отличаются от тех, которые можно найти у бодрствующих субъектов 6,7,8. Таким образом, более значимо обнаруживать нейронную активность в длительных временных масштабах и больших пространственных масштабах при различных заболеваниях в бодрствующем состоянии мозга с помощью электродов, имплантированных в мозг. Эта рукопись содержит информацию для начинающих о том, как создать систему микропривода и установить параметры с помощью общего программного обеспечения для быстрого и простого вычисления сигналов спайков и LFP, чтобы начать запись и анализ.
Несмотря на то, что неинвазивная регистрация функций мозга, например, с помощью электроэнцефалограммы (ЭЭГ) и потенциалов, связанных с событиями (ERP), регистрируемых с кожи головы, широко используется в исследованиях на людях и грызунах, данные ЭЭГ и ERP имеют низкие пространственные и временные свойства и, таким образом, не могут обнаружить точные сигналы, производимые близлежащей дендритной синаптической активностью вопределенной области мозга. В настоящее время, используя преимущества многоканальной записи у животных, находящихся в сознании, нейронная активность в более глубоких слоях мозга может регистрироваться хронически и прогрессивно путем имплантации системы микродрайвов в мозг приматов или грызунов во время многочисленных поведенческих тестов 1,2,3,4,5,6,7,8,9 . Короче говоря, исследователи могут сконструировать систему микроприводов, которая может быть использована для независимого позиционирования электродов или тетродов для воздействия на различныечасти мозга. Например, Chang et al. описали методы регистрации спайков и LFP у мышей путем сборки легкого и компактного микропривода12. Кроме того, коммерчески доступны микромеханические кремниевые зонды с изготовленными по индивидуальному заказу вспомогательными компонентами для регистрации нескольких одиночных нейронов и LFP у грызунов во время выполнения поведенческих задач13. Несмотря на то, что для сборки систем микроприводов использовались различные конструкции, они по-прежнему имеют ограниченный успех с точки зрения сложности и веса всей системы микроприводов. Например, Lansink et al. показали многоканальную микроприводную систему со сложной структурой для записи из одной области мозга14. Sato et al. сообщили о многоканальной системе микропривода, демонстрирующей функцию автоматического гидравлического позиционирования15. Основные недостатки этих микроприводных систем заключаются в том, что они слишком тяжелые, чтобы мыши могли свободно двигаться, и их сложно собрать новичкам. Несмотря на то, что многоканальная внеклеточная запись показала себя подходящей и эффективной технологией для измерения нейронной активности во время поведенческих тестов, новичкам нелегко записывать и анализировать сигналы, полученные сложной системой микропривода. Учитывая, что у свободно движущихся мышей сложно запустить весь процесс работы многоканальной внеклеточной регистрации и анализа данных16,17, в настоящей статье представлены упрощенные рекомендации по ознакомлению с подробным процессом создания микроприводной системы с использованием общедоступных компонентов и настроек; Кроме того, в общем программном обеспечении предусмотрены параметры для быстрого и простого вычисления сигналов спайка и LFP. Кроме того, в этом протоколе мышь может свободно перемещаться за счет использования гелиевого баллона, что способствует компенсации веса головной сцены и системы микропривода. В целом, в настоящем исследовании мы описываем, как легко построить систему микроприводов и оптимизировать процессы записи и анализа данных.
Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.
Протокол
Все мыши были получены коммерческим путем и содержались в цикле 12 ч свет/12 ч темнота (свет включается в 08:00 утра по местному времени) при комнатной температуре 22-25 °C и относительной влажности 50%-60%. Мыши имели доступ к постоянному снабжению пищей и водой. Все эксперименты проводились в соответствии с Руководством по уходу и использованию лабораторных животных Южно-Китайского педагогического университета и были одобрены Институциональным комитетом по этике животных. Для экспериментов использовались самцы мышей C57BL/6J в возрасте 3-5 месяцев.
1. Сборка системы микропривода
- Соедините две платы, разработанные компьютером, с помощью двух столбиков и винта, который удерживает подвижный микропривод, и прикрепите разъем к одной плате (рис. 1A, Bi-iii). Приводите в движение микропривод, закручивая винт (0,5 мм/круг).
- Убедитесь, что микропривод может нести два набора из восьми направляющих трубок (длина ~3 см, внутренний диаметр ~50 мкм, внешний диаметр ~125 мкм) для каждой стороны области MC, а затем обрежьте его до одинаковой длины (не менее 15 мм; Рисунок 1Biv, v).
- Отрежьте 16 нихромовых проволок (длиной ~5 см) диаметром 35 мкм, а затем последовательно загрузите их в направляющие трубки с последующим нанесением клея для их фиксации (рис. 1Bi, vi, vii).
- Снимите изоляцию провода, последовательно прикрепите каждый открытый провод к каждому контакту разъема в соответствии с картой каналов, а также к опорному электроду и заземляющему электроду, а затем медленно нанесите токопроводящую краску на каждый контакт (рис. 1Bviii-x).
- Покройте штифты эпоксидной смолой (рис. 1Axi, xii), а затем выполните золотое покрытие с помощью тестера импеданса, чтобы уменьшить импеданс концов электродов до ~350 кОм (рис. 1Bxiii, xiv). Установите параметры импедансометра следующим образом: −10,08 мкА постоянного тока в течение 1 с раствором для золочения, включая 5 мМ PtCl4.
- Наконец, переместите микропривод наверх, закрутив винт. Проверьте габаритные размеры модифицированной системы микроприводов, как показано на рисунке 1A (примерно 15 мм в длину, 10 мм в ширину, 20 мм в высоту, вес ~1 г). Ознакомьтесь с подробными техническими характеристиками спроектированной компьютером платы и подвижного компонента на рисунке 1Ai, ii.
2. Имплантация электродных решеток
- Перед началом операции простерилизуйте операционные наборы, наденьте стерильные перчатки и наденьте стерильный белый халат врача.
- Чтобы купировать боль, используйте подкожную инъекцию мелоксикама (5 мг/кг) для мыши в индукционной камере. Затем обезболивают мышь внутрибрюшинной (в/в) инъекцией пентобарбитала (80 мг/кг) в индукционную камеру18,19. Применяют дополнительную дозу пентобарбитала (20 мг/кг/ч), если щипковый рефлекс пальца ноги все еще присутствует.
- Зафиксируйте мышь в стереотаксическом аппарате и поддерживайте ее ректальную температуру на уровне 37 °C с помощью регулятора температуры.
- Нанесите тетрациклиновую глазную мазь на оба глаза мыши и снова смените стерильные перчатки перед операцией.
- Сбрейте шерсть мыши и продезинфицируйте место операции тремя чередующимися циклами бетадинового скраба и спирта с помощью стерильного аппликатора с ватным наконечником концентрическими кругами, начиная с центра и двигаясь наружу (рис. 2i, ii). Сделайте небольшой разрез по средней линии (~15 мм), чтобы обнажить череп. Немедленно нанесите 1% лидокаин локально на мышцы шеи для облегчения боли. Затем удалите остатки ткани ножницами и очистите череп ватными палочками, покрытыми физиологическим раствором (рис. 2iii).
- С помощью стеклянного микроэлектрода, заполненного чернилами, отмечают желаемые места двустороннего МЦ для имплантации (рис. 2iv, v). Согласно предыдущему исследованию 20, расположение двусторонней МЦ выглядит следующим образом: 0,74 мм кпереди от брегмы и1,25 мм латеральнее средней линии.
- Вставьте четыре винта из нержавеющей стали (диаметром 0,8 мм) для защиты системы микропривода, а затем соедините все винты вместе с опорным и заземляющим электродами, а затем покрыте смешанным стоматологическим цементом для формирования стенок (Рисунок 2vi-xi).
- Осторожно просверлите два небольших отверстия (~1,5мм2) с левой и правой стороны скоординированного черепа в области MC (Рисунок 2xii). Используйте стереотаксические координаты двусторонней МС: 0,74 мм кпереди от брегмы, 1,25 мм латеральнее средней линии и 0,5 мм вентрально от твердой мозговой оболочки.
- Осторожно извлеките твердую мозговую оболочку из отверстий тонкими щипцами (Рисунок 2xiii).
- Вставьте систему микропривода в центр отверстий с помощью микроманипулятора со скоростью 10 мкм/с (рис. 2xiv-xvii).
- Залейте вазелин в стенки стоматологического цемента после завершения установки системы микропривода (Рисунок 2xviii).
- Соедините нижнюю пластину системы микропривода и стенки стоматологического цемента со смешанным стоматологическим цементом (Рисунок 2xix)
- Промыть разрез физиологическим раствором с последующей местной обработкой гелем, содержащим линкомицина гидрохлорид и лидокаина гидрохлорид, для облегчения послеоперационной боли.
- Намотайте токопроводящую ленту из медной фольги на имплантированную систему микропривода (рис. 2xx).
- Переместите мышь в клетку с температурой 31-33 °C и наблюдайте за ее восстановлением после анестезии.
- Дайте мышам восстановиться в течение 1 недели при раздельном кормлении. Проверьте и обработайте разрез 3 днями непрерывного нанесения геля, содержащего линкомицина гидрохлорид и лидокаина гидрохлорид.
3. Многоканальная запись в билатеральной МЦ у свободно движущихся мышей
- Держите голову бодрствующей мыши легко и осторожно. Переместите электродные решетки вниз (глубина ~0,1 мм), закрутив винт на подвижной части системы микропривода (Рисунок 1Aii) не менее чем за 1 день.
- Держите голову бодрствующей мыши легко и осторожно. Соедините центр потолка и гелиевый баллон (заполненный примерно 0,02 л гелия) резьбой, чтобы компенсировать вес головного столика и системы микропривода (рис. 3A, B).
- Захват необработанных сигналов с помощью регистрирующих электродов и многоканальных систем путем дискретизации на частоте 30 кГц в программном обеспечении для записи, а затем оцифровка с помощью цифро-аналогового (ЦАП) преобразователя из многоканальных систем.
- Извлеките сигналы LFP из необработанных данных путем передискретизации на частоте 10 кГц в программном обеспечении для записи, а затем используйте режекторный фильтр из программного обеспечения для записи, чтобы удалить линейный шум 50 Гц.
- Записывайте необработанные данные в стабильном состоянии со свободно движущейся мыши в течение не менее 60 секунд. После завершения записи медленно отсоедините соединение между насадкой и системой микропривода и верните мышь обратно в домашнюю клетку.
- Сохраните записанные данные в компьютере и проанализируйте их в автономном режиме (рис. 4 и рис. 5).
- После завершения эксперимента выполните эвтаназию в соответствии с рекомендациями института, а затем подтвердите расположение электродов с помощью источника питания на выходе 3 В, чтобы выполнить электролитическое поражение в течение 1 минуты с последующим гистологическим анализом. Разрежьте мозг мыши на кусочки размером 30 мкм с помощью замораживающего микротома, соберите срезы MC, а затем сделайте снимки с помощью микроскопа (рис. 3C, D).
4. Сортировка и анализ шипов
- Нажмите File > Open > Nev files в программном обеспечении для сортировки пиков, чтобы открыть данные о пиках, отобранные на частоте 30 кГц (рис. 4Ai).
- Нажмите кнопку «Информация», чтобы выбрать несортированный канал, а затем выберите «Сортировать» > « Изменить метод сортировки» > «Использовать K-средние». Нажмите кнопку Valley-Seeking Sort > K-Secondary Sorting , чтобы получить отсортированные единицы (рис. 4Aii, iii).
- Нажмите «Файл» > « Сохранить как», сохраните отсортированные данные о пиках с расширением .nev и выберите «Файл > экспорт данных для каждой осциллограммы », чтобы экспортировать результаты PCA с расширением файла .txt (рисунок 4Aiv).
- Нажмите на File > Import Data > Blackrock File в программном обеспечении для анализа нейрофизиологических данных, чтобы открыть отсортированный файл спайков (Рисунок 4Bi).
- Щелкните Анализ > Автокоррелограммы, чтобы получить автокоррелограмму для выбранной единицы, а затем установите параметры следующим образом: минимальное значение X на −0,05 с, максимальное значение X на 0,05 с и значение Бин на 0,001 (рис. 4Bii, iii).
- Загрузите отсортированные данные о спайках, нажмите Анализ > Гистограммы межспайковых интервалов, чтобы получить гистограмму межспайкового интервала, а затем установите следующие параметры: Минимальное значение интервала 0 с, Максимальное значение интервала 0,1 с и Значение ячейки 0,001 (рис. 4Biv, v).
- Щелкните Анализ > Кросскоррелограммы, чтобы получить перекрестную коррелограмму между двумя отсортированными единичными событиями, а затем установите эталонные события и параметры следующим образом: минимальное значение X на −0,1 с, максимальное значение X на 0,1 с и значение Bin на 0,001 (рис. 4Bvi, vii).
- Нажмите « Результаты» > «Численные результаты», чтобы сохранить результаты автокоррелограммы, гистограммы межспайкового интервала и кросс-коррелограммы с .xls расширениями имен файлов (рисунок 4Bviii, ix). Проанализируйте данные и нарисуйте график.
5. Анализ LFP
- Нажмите на File Import Data > Blackrock File в программном обеспечении для анализа нейрофизиологических данных, чтобы открыть данные непрерывного сигнала, дискретизированные на частоте 10 кГц (рис. 5Ai).
- Нажмите на Analysis > Spectrum for Continuous (Анализ спектр для непрерывного ), чтобы проанализировать спектр мощности для LFP из выбранного канала. Установите параметры следующим образом: Число значений частоты на 8,192, Значение множественных конусов на 3-5, Нормализация процента от общей спектральной плотности мощности (PSD) и Диапазон частот от 1 Гц до 100 Гц (рис. 5Aii, iii).
- Нажмите на Analysis > Coherence for Continuous (Анализ когерентность для непрерывного), чтобы проанализировать когерентность для двух LFP с левой и правой сторон MC. Задайте опорный канал и параметры следующим образом: Рассчитайте значения когерентности, число значений частоты — 8 192, значение Multiple Tapers — 3–5 и диапазон частот от 1 Гц до 100 Гц (рис. 5, v).
- Нажмите на Analysis > Corr. with Cont. Variables , чтобы проанализировать корреляцию между двумя LFP с левой и правой сторон MC. Установите опорный канал (данные LFP) и параметры следующим образом: минимальное значение X на −0,1 с, максимальное значение X на 0,1 с и значение Bin на 0,001 (рис. 5Avi, vii).
- Нажмите на Results > Numerical Results , чтобы сохранить результаты PSD, когерентности и корреляции с расширением имени файла .xls (рисунок 5Aviii, ix).
- Выберите канал, для которого необходимо извлечь репрезентативные трассы для каждой полосы частот, нажмите кнопку Edit > Digital Filtering of Continuous Variables (Редактировать цифровую фильтрацию непрерывных переменных), чтобы получить каждую полосу частот, а затем установите параметры следующим образом: Filter Freq. Response as Bandpass, Filter Implementation at Infinite impulse response (IIR) Butterworth) и Filter Order (Порядок фильтрации) на 2. Наконец, установите интересующий диапазон частот (рис. 5Bi-iv).
ПРИМЕЧАНИЕ: Здесь использовались следующие диапазоны частот: дельта (δ, 1-4 Гц), тета (θ, 5-12 Гц), бета (β, 13-30 Гц), низкая гамма (низкая γ, 30-70 Гц) и высокая гамма (высокая γ, 70-100 Гц) осцилляции. - Проанализируйте данные и нарисуйте график.
6. Корреляции между спайком и LFP
- Нажмите «Файл» > «Импортировать данные» > Blackrock File в программном обеспечении для анализа нейрофизиологических данных, чтобы открыть данные непрерывного сигнала и данные о спайках.
- Нажмите « Анализ» > «Анализ когерентности», чтобы проанализировать когерентность между пиками и LFP из выбранного канала. Задайте эталонную переменную (время пика) и параметры следующим образом: Расчет при значениях когерентности, Число значений частоты 512, Значение множественных конусов на 3-5 и диапазон частот от 1 Гц до 100 Гц (Рисунок 5Ci, ii).
- Нажмите на Results > Numerical Results , чтобы сохранить результат согласованности поля spike с расширением файла .xls (рис. 5Ciii, iv).
- Проанализируйте данные и нарисуйте график.
Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.
Результаты
Фильтр высоких частот (250 Гц) был применен для извлечения многозначных пиков из необработанных сигналов (рис. 6A). Кроме того, были верифицированы записанные единицы измерения из МС обычной мыши, отсортированные по PCA (рис. 7A-D), а также были записаны ширина долины и длительность сигнала единиц в МС мыши. Результаты показали, что как ширина долины, так и длительность формы волны предполагаемых пирамидных нейронов MC (Pyn) у м...
Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.
Обсуждение
Многоканальная запись на свободно движущихся мышах считается полезной технологией в исследованиях нейробиологии, но новичкам все еще довольно сложно записывать и анализировать сигналы. В настоящем исследовании мы предоставляем упрощенные рекомендации по созданию микроприводных систем и выполнению имплантации электродов, а также упрощенные процедуры захвата и анализа электрических сигналов с помощью программного обеспечения для сортировки спайков и программного обеспечения для анализа нейрофизиологических данных....
Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.
Раскрытие информации
Авторам нечего раскрывать.
Благодарности
Эта работа была поддержана грантами Национального фонда естественных наук Китая (31871170, 32170950 и 31970915), Фонда естественных наук провинции Гуандун (2021A1515010804 и 2023A1515010899), Гуандунского фонда естественных наук для крупного проекта по выращиванию (2018B030336001) и Гранта Гуандуна: ключевые технологии для лечения заболеваний головного мозга (2018B030332001).
Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.
Материалы
| Имя | Компания | Каталожный номер | Комментарии |
|---|---|---|---|
| Контактный разъем 2,54 мм | YOUXIN Electronic Co., Ltd. | 1 x 5 | Подача заявки на подвижный микропривод, который может скользить по своим подкладкам. |
| Adobe Illustrator CC 2017 | Adobe | N/A | Для оптимизации изображений из GraphPad. |
| BlackRock Microsystems | Blackrock Neurotech | Cerebus | Эта система включает в себя headsatge, DA convert, усилитель и компьютер. |
| Латунная гайка | Dongguan Gaosi Technology Co., Ltd. | M0.8 латунная гайка | Гайка фиксирует положение винта. |
| Латунный винт | Dongguan Gaosi Technology Co., Ltd. | M0,8 x 11 мм латунный винт | Винт, который удерживает подвижный микропривод. |
| C57BL/6J | Гуандун Чжиюань Биомедицинские технологии Ко., ЛТД. | Н/Д | 12 недель. |
| Пробирка центрифуга | Biosharp | 15 мл; БС-150-М | Для хранения мозга мышей с сахарозой. |
| Проводящая краску | Structure Probe, Inc. | 7440-22-4 | Для улучшения качества соединения проводов между контактами разъема и никель-кабелем. |
| Лента из медной фольги токопроводящая | 3М | 1181 | Для снижения помех. |
| Коннектор | YOUXIN Electronic Co., Ltd. | 2 x 10P | Для подключения головки к системе микропривода. |
| Источник питания постоянного тока | Maisheng | MS-305D | Силовое устройство для электролитического поражения. |
| Стоматологический цемент | Shanghai New Century Dental Materials Co., Ltd. | Н/Д | Для фиксации электродных решеток на черепе мыши после завершения имплантации. |
| Цифровой аналоговый преобразователь | Blackrock | 128-Channel | Устройство, преобразующее цифровые данные в аналоговые сигналы. |
| Эпоксидная смола | Alteco | N/A | Для покрытия штифтов. |
| Excel | Microsoft | N/A | Для суммирования данных после анализа. |
| Глазные ножницы | JiangXi YuYuan Medical Equipment Co., Ltd. | Н/Д | Для хирургии или перерезания никель-хромовой проволоки. |
| Тонкие щипцы | JiangXi YuYuan Medical Equipment Co., Ltd. | Н/Д | Для хирургии. |
| Щипцы | JiangXi YuYuan Medical Equipment Co., Ltd. | Н/Д | Для хирургии или сборки системы микропривода. |
| Замораживающий микротом | Leica | CM3050 S | Режь мышь» s мозга на срезы |
| Капиллярная трубка из плавленого кремнезема | Zhengzhou INNOSEP Scientific Co., Ltd. | TSP050125 | To служат в качестве направляющих трубок для никель-хромовых проводов. |
| Стеклянный микроэлектрод | Sutter Instrument фирмы | BF100-50-10 | Для разметки нужных мест для имплантации с помощью заправленных чернил. |
| GraphPad Prism 7 | Программное обеспечение GraphPad | Н/Д | Для анализа и визуализации результатов. |
| Направляющая трубка | Polymicro технологии | 1068150020 | Для загрузки никель-хромовых проводов. |
| Headstage | Blackrock | N/A | Инструмент передачи сигналов. |
| Гелиевый шар | Yili Festive products Co., Ltd. | 24 дюйма | Для компенсации веса оголовка и системы микропривода. |
| Чернила | Сейлор Пен Ко., ЛТД. | 13-2001 | Отметить желаемые места для имплантации. |
| Йодная настойка | Guangdong Hengjian Pharmaceutical Co., Ltd. | Н/Д | Для дезинфекции кожи головы мыши. |
| Линкомицин в гидрохлориде и лидокаине гидрохлоридный гель | Hubei kangzheng pharmaceutical co., ltd. | 10 г | Препарат, используемый для уменьшения воспаления. |
| Мелоксикам | Вики Биотехнология Ко., Лтд. | 71125-38-7 | Для уменьшения послеоперационной боли у мышей. |
| Микроманипуляторы | Scientifica | Scientifica IVM Triple | для имплантации электродных матриц. |
| Микроскоп | Nikon | ECLIPSE Ni-E | Захват изображений участков мозга |
| nanoZ Impedance Tester Plexon | nanoZ | Для измерения импеданса или выполнения электродной импедансной спектроскопии (EIS) для многоканальных микроэлектродных матриц. | |
| NeuroExplorer | Plexon | NeuroExplorer | Инструмент для анализа электрофизиологических данных. |
| НейроЭксплорер | Plexon, США | Н/Д | Программное обеспечение. |
| Никель-хромовая проволока | California Fine Wire Co. | M472490 | 35 μ m Ni-хромовая проволока. |
| Offline Sorter | Plexon | Offline Sorter | Инструмент для сортировки записанных мультиединиц |
| Печатная плата | Hangzhou Jiepei Information Technology Co., Ltd. | Н/Д | Плата, разработанная компьютером. |
| Пентобарбитал | Sigma | P3761 | Для обезболивания мышей. |
| Пентобарбитал натрия | Сигма | 57-33-0 | Для обезболивания мыши. |
| Перистальтический насос | Longer | BT100-1F | Аппарат для перфузии |
| Полиформальдегид | Sangon Biotech | A500684-0500 | Основной компонент фиксирующего раствора для фиксации мозга мышей |
| PtCl4 | Tianjin Jinbolan Fine Chemical Co., Ltd. | 13454-96-1 | Препарат для золотого покрытия жидкостью. |
| Салин | Гуандун Хэнцзянь Фармасьютикал Ко., Лтд. | Н/Д | Для очистки черепа мыши. |
| Серебряная проволока | Сучжоу Xinye Electronics Co., Ltd. | Диаметр 2 мм | Применение для заземляющих электродов и электродов сравнения. |
| Сверло для черепа | RWD Life Science | 78001 | Чтобы тщательно просверлить два маленьких отверстия на черепе мыши. |
| Винты из нержавеющей стали | YOUXIN Electronic Co., Ltd. | M0,8 x 2 | Для защиты системы микропривода и соединения заземляющих электродов и электродов сравнения. |
| Стереотаксический аппарат | RWD Life Science | 68513 | Для выполнения стереотаксических координат двусторонней моторной коры. |
| Сахароза | Дамао | 57-50-1 | Для обезвоживания мозга мышей после перфузии. |
| Суперклей | Henkel AG & Co. | PSK5C | Для фиксации направляющей трубки и никель-хромовой проволоки. |
| Регулятор температуры | Гарвардский аппарат | TCAT-2 | Для поддержания ректальной температуры мыши на уровне 37°С; C |
| Тетрациклиновая глазная мазь | Guangdong Hengjian Pharmaceutical Co., Ltd. | Н/Д | Для защиты глаз мыши во время операции. |
| Нить | Rapala | N/A | Для соединения баллона и головного офиса. |
| Вазелин | Unilever plc | N/A | Для покрытия зазора между электродными решетками и черепом мыши. |
Ссылки
- Buzsáki, G., Anastassiou, C. A., Koch, C. The origin of extracellular fields and currents--EEG, ECoG, LFP and spikes. Nature Reviews Neuroscience. 13 (6), 407-420 (2012).
- Singer, W. Synchronization of cortical activity and its putative role in information processing and learning. Annual Review of Physiology. 55, 349-374 (1993).
- Arroyo-García, L. E., et al. Impaired spike-gamma coupling of area CA3 fast-spiking interneurons as the earliest functional impairment in the App(NL-G-F) mouse model of Alzheimer's disease. Molecular Psychiatry. 26 (10), 5557-5567 (2021).
- Ozawa, M., et al. Experience-dependent resonance in amygdalo-cortical circuits supports fear memory retrieval following extinction. Nature Communications. 11 (1), 4358(2020).
- Vinck, M., Batista-Brito, R., Knoblich, U., Cardin, J. A. Arousal and locomotion make distinct contributions to cortical activity patterns and visual encoding. Neuron. 86 (3), 740-754 (2015).
- Beck, M. H., et al. long-term dopamine depletion causes enhanced beta oscillations in the cortico-basal ganglia loop of parkinsonian rats. Experimental Neurology. 286, 124-136 (2016).
- Magill, P. J., Bolam, J. P., Bevan, M. D. Relationship of activity in the subthalamic nucleus-globus pallidus network to cortical electroencephalogram. Journal of Neuroscience. 20 (2), 820-833 (2000).
- Magill, P. J., et al. Changes in functional connectivity within the rat striatopallidal axis during global brain activation in vivo. Journal of Neuroscience. 26 (23), 6318-6329 (2006).
- Rapeaux, A. B., Constandinou, T. G. Implantable brain machine interfaces: First-in-human studies, technology challenges and trends. Current Opinion in Biotechnology. 72, 102-111 (2021).
- Tort, A. B., et al. Dynamic cross-frequency couplings of local field potential oscillations in rat striatum and hippocampus during performance of a T-maze task. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (51), 20517-20522 (2008).
- Yamamoto, J., Wilson, M. A. Large-scale chronically implantable precision motorized microdrive array for freely behaving animals. Journal of Neurophysiology. 100 (4), 2430-2440 (2008).
- Chang, E. H., Frattini, S. A., Robbiati, S., Huerta, P. T. Construction of microdrive arrays for chronic neural recordings in awake behaving mice. Journal of Visualized Experiments. (77), e50470(2013).
- Vandecasteele, M., et al. Large-scale recording of neurons by movable silicon probes in behaving rodents. Journal of Visualized Experiments. (61), e3568(2012).
- Lansink, C. S., et al. A split microdrive for simultaneous multi-electrode recordings from two brain areas in awake small animals. Journal of Neuroscience Methods. 162 (1-2), 129-138 (2007).
- Sato, T., Suzuki, T., Mabuchi, K. A new multi-electrode array design for chronic neural recording, with independent and automatic hydraulic positioning. Journal of Neuroscience Methods. 160 (1), 45-51 (2007).
- van Daal, R. J. J., et al. Implantation of Neuropixels probes for chronic recording of neuronal activity in freely behaving mice and rats. Nature Protocols. 16 (7), 3322-3347 (2021).
- Unakafova, V. A., Gail, A. Comparing open-source toolboxes for processing and analysis of spike and local field potentials data. Frontiers in Neuroinformatics. 13, 57(2019).
- Mao, L., Wang, H., Qiao, L., Wang, X. Disruption of Nrf2 enhances the upregulation of nuclear factor-kappaB activity, tumor necrosis factor-alpha, and matrix metalloproteinase-9 after spinal cord injury in mice. Mediators of Inflammation. 2010, 238321(2010).
- Jin, Z., Zhang, Z., Ke, J., Wang, Y., Wu, H. Exercise-linked irisin prevents mortality and enhances cognition in a mice model of cerebral ischemia by regulating Klotho expression. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2021, 1697070(2021).
- Ding, X., et al. Spreading of TDP-43 pathology via pyramidal tract induces ALS-like phenotypes in TDP-43 transgenic mice. Acta Neuropathologica Communications. 9 (1), 15(2021).
- Cao, W., et al. Gamma oscillation dysfunction in mPFC leads to social deficits in neuroligin 3 R451C knockin mice. Neuron. 97 (6), 1253-1260 (2018).
Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.
Перепечатки и разрешения
Теги
