Методическая статья

Анализ электрокардиограмм и поведения мышей от беременности до периода лактации

1.4K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/66498

⸱

5 апреля 2024 г.

 ,  ,  , 
1Department of Animal Science and Biotechnology, Azabu University

В этой статье

Краткое содержание

Одновременная регистрация вегетативной активности и детализация материнского поведения мышей-матерей от беременности до лактации были достигнуты с помощью телеметрической системы. Этот метод помогает понять динамику физиологических и поведенческих особенностей у матерей от беременности до отлучения от груди.

Аннотация

Изменения в отношениях матери и потомства, по-видимому, сопровождаются динамическими изменениями в вегетативной нервной системе. Несмотря на то, что временные измерения вегетативной активности были проведены у матерей и младенцев человека, анализ долгосрочных изменений остается неизученным. Матери мышей могут формировать социальные связи со своими детенышами и иметь короткий период беременности и лактации, что делает их полезными для изучения физиологических изменений от беременности до выращивания щенков. Поэтому в течение нескольких недель использовалась телеметрическая система для измерения изменений в вегетативной нервной системе и поведении матерей мышей. Полученные результаты показали, что электрокардиограмма (ЭКГ) может быть стабильно зарегистрирована независимо от движений матерей и родов. Анализ ЭКГ показал, что частота сердечных сокращений постепенно снижалась от беременности до лактации, а симпатическая активность резко возрастала по мере развития детенышей. Кроме того, одновременная запись поведения и ЭКГ в домашней клетке позволила нам понять зависящие от поведения влияния на ЭКГ, тем самым выявив характеристики вегетативной нервной деятельности во время каждого поведения. Таким образом, настоящий экспериментальный метод помогает понять, как физиологические характеристики матерей изменяются от беременности до выращивания щенков, поддерживая здоровое развитие щенков.

Введение

Отношения между матерью и потомством уникальны среди отношений, устанавливаемых различными видами животных, благодаря их огромному влиянию набудущее потомства. У людей развитие и внутреннее/внешнее поведение детей зависят от стиля воспитания, а также от степени жестокого обращения и пренебрежения 2,3. Точно так же у грызунов качество материнского поведения оказывает существенное влияние на развитие и поведение детенышей 4,5,6. Таким образом, детальное отслеживание и изучение воспитательного поведения матерей может дать представление о механизмах индивидуальных различий в развитии и здоровой поддержке их потомства.

Поведенческие и физиологические исследования показали, что матери млекопитающих претерпевают динамические поведенческие и физиологические изменения от беременности до лактации. Когда самки млекопитающих беременеют, секреция эстрогена и других гормонов влияетна поведение матери. По мере роста потомства и уменьшения частоты лактации секреция гормонов динамически изменяется в сторону предбеременного состояния, что прекращает проявление материнского поведения 8,9,10. Эти данные свидетельствуют о том, что взаимодействие между эндокринной системой, материнским поведением и развитием потомства играет важную роль в изменениях, которые матери млекопитающих испытывают во время беременности и лактации.

Поведенческие и физиологические изменения у матерей млекопитающих от беременности до лактации тесно связаны не только с эндокринной системой, но и с вегетативной нервной системой11,12. Исследования на людях показывают, что контакт матери и ребенка вызывает изменения в вегетативной нервной системе как матерей, так и младенцев13. В нескольких исследованиях измеряли электрокардиограмму (ЭКГ) и вариабельность сердечного ритма у матерей и младенцев, показывая, что каждое поведение изменяет частоту сердечных сокращений и интервал RR других 14,15,16. Однако неясно, как три фактора — вегетативная нервная система, поведение матери и развитие потомства — взаимодействуют друг с другом от беременности до лактации. Более того, трудно отслеживать эти взаимодействия у людей в течение длительного периода времени, потому что период лактации у человека составляет примерно два года.

В таких исследованиях вместо человека часто используются грызуны. Вегетативная нервная система грызунов измерялась под наркозом или при изоляции от щенков для предотвращения нестабильной записи и повреждения измерительного прибора; Следовательно, измерение является временным в поведенчески ограниченных ситуациях 17,18,19. Важно наблюдать за вегетативной нервной системой в среде, где грызуны могут свободно передвигаться и общаться с другими людьми, потому что взаимодействие матери и детеныша может изменить поведение и физиологию матерей 8,9,10,15.

Этот экспериментальный метод был разработан для того, чтобы обеспечить свободное передвижение матери. При этом методе телеметр ЭКГ подкожно прикладывался к беременной матери, чтобы предотвратить повреждение устройства и обеспечить стабильную длительную регистрацию ЭКГ от беременности до лактации. Мышиные матери могут демонстрировать общее поведение (самоухаживание, прием пищи и т. д.) и обычное материнское поведение в домашней клетке; следовательно, каждое поведение и ЭКГ можно легко наблюдать и сравнивать на одной и той же мыши. Регистратор записывал поведение мыши в течение 24 часов в течение четырех недель. Этот экспериментальный протокол позволил нам отследить динамические изменения вегетативной активности и поведения от беременности до материнского периода.

Протокол

Все процедуры были одобрены Этическим комитетом Университета Азабу (#210319-30). В настоящем исследовании использовались мыши C57B/6J на гестационные сутки (GD) 14 с массой тела более 22 г. Животные были получены из коммерческого источника (см. Таблицу материалов). Реактивы и оборудование, необходимые для проведения исследования, перечислены в Таблице материалов.

1. Подготовка к эксперименту

  1. Включите панельный обогреватель и накройте его алюминиевой фольгой. Протрите все поверхности 70% этанолом.
  2. Все хирургические инструменты (ножницы, щипцы, тонкий пинцет и пинцет) были заранее автоклавированы.
  3. Подготовьте стерильные швы нужной длины и держите ее наготове.
  4. Накрывайте маски для анестезии резиновыми масками, чтобы обеспечить стерильность и комфорт пациента.
  5. Проверьте телеметр биопотенциала мыши (рис. 1A) на наличие аномалий или повреждений с помощью приложений tBase и LabChart (программное обеспечение для анализа физиологических данных), установленных на компьютере с возможностью записи.

2. Имплантация телеметром

  1. Поместите мышь в коробку для индукционной анестезии с 4% изофлураном.
  2. После достижения хирургической плоскости анестезии поместите мышь в положение лежа на панельный обогреватель. Расположите маску для анестезии на мыши, поддерживая уровень изофлурана 1%-2,0% и поток кислорода на уровне 0,5-2 л/мин.
    Примечание: В этом протоколе не использовались анальгетики, учитывая их влияние на плод и поведенческие наблюдения.
  3. С помощью машинки для стрижки удалите шерсть между ушами и трижды продезинфицируйте кожу чередующимися дезинфицирующими средствами на основе йода и 70% спиртом.
  4. Чтобы подтвердить операционную плоскость анестезии, защемите пинцетом пальцы задних лап мыши. Сделайте надрез (2-3 см) на коже между ушами с помощью ножниц. Вставьте щипцы в разрез, чтобы отделить кожу и мышцы вокруг шеи и вентральной стороны, создавая пространство на вентральной стороне специально для размещения телеметрии.
  5. Вставьте телеметр через разрез между ушами и поместите его в вентральное боковое пространство.
  6. Используйте щипцы, чтобы свернуть и связать положительные и отрицательные провода. Поместите выводы в пространство для грифа (рисунок 1B).
  7. Сшить разрез с помощью иглы 13 мм и шва 20 см, стараясь не повредить отведения.
  8. Поместите мышь в лежачее положение и ощипните шерсть вокруг ключицы машинкой для стрижки. Продезинфицируйте кожу три раза чередующимися дезинфицирующими средствами на основе йода и 70% спиртом.
  9. Сделайте небольшой надрез вокруг кожи ключицы ножницами и отделите мышцы от кожи шеи. Извлеките положительные и отрицательные отведения с задней части шеи с помощью щипцов.
  10. Используйте щипцы для разделения слюнных желез и обнажения «V-образного» вида грудино-ключично-сосцевидной мышцы (SCM), которая берет начало от ключицы и проходит косо по каждой стороне шеи (рис. 1C,D).
  11. Отрегулируйте длину отрицательного провода так, чтобы он достигал СКМ возле ключицы. Осторожно снимите свинцовую трубку с отрицательного провода, следя за тем, чтобы спиральный электрод из нержавеющей стали внутри был растянут с помощью тонкого пинцета.
  12. Проденьте швейную иглу (7 мм) со швом 10 см через V-образный изгиб SCM, чтобы создать петлю. Пропустите электрод из нержавеющей стали от отрицательного провода через эту петлю и расположите его под SCM рядом с ключицей.
    1. Слегка завяжите петлю, чтобы не повредить SCM, и повторите три раза, чтобы закрепить электрод из нержавеющей стали. Закрепите отрицательный провод дальше, расположив второй шов на краниальной стороне SCM и завязав его вокруг трубки отрицательного провода (Рисунок 1E).
  13. Выполните секцию вокруг мечевидного отростка и аккуратно отделите кожу от мышцы от мечевидного отростка к ключице.
  14. Удлините положительный отросток, чтобы достичь мечевидного отростка. Как и в случае с отрицательным проводом, удалите свинцовую трубку из положительного провода, убедившись, что спиральный электрод из нержавеющей стали внутри растянут с помощью тонкого пинцета.
  15. С помощью иглы 18 G создайте туннель под мышцей вокруг мечевидного отростка, затем поместите электрод из нержавеющей стали в иглу и пропустите его через мышцу вокруг мечевидного отростка.
  16. После извлечения иглы слегка пришить спиральный электрод из нержавеющей стали к мышце вокруг мечевидного отростка с помощью швейной иглы (7 мм) со швом 10 см (рисунок 1D). Чтобы еще больше закрепить положительный отросток, расположите второй шов на краниальной стороне мечевидного отростка и завяжите его вокруг трубки положительного отведения.
  17. Закройте все разрезы с помощью иглы для швов (13 мм) с длиной шва 20 см (рис. 1E, F).
  18. После имплантации поместите мышь в чистую клетку и расположите ее на tBase, который действует как приемник для телеметрии мыши (рис. 1G). Включите записываемый компьютер и используйте установленное программное приложение для анализа данных для сбора данных ЭКГ. Убедитесь, что данные ЭКГ отображают нормальные формы волн (Рисунок 2A, B).
    ПРИМЕЧАНИЕ: В случае аномальных форм волны или шума (как показано на рисунке 2C) снова присоедините отрицательный и положительный отведения под анестезией.
  19. В течение двухдневного периода восстановления убедитесь, что с мышью обращаются должным образом, положив водяной гель и корм на дно клетки. Записывайте только поведение домашней клетки с помощью регистратора дисков в течение этого периода восстановления.

3. Запись ЭКГ и поведения в домашних клетках от беременности до отлучения от груди

  1. Включайте красные индикаторы в темную фазу, потому что регистратор не может работать без света. Расположите регистратор дисковода рядом с домашней клеткой, чтобы записать поведение. Запишите ЭКГ с помощью приложения LabChart на записываемом ПК. Перед сбором данных ЭКГ проверьте частоту дискретизации ЭКГ в LabChart.
    ПРИМЕЧАНИЕ: В этом протоколе регистратор привода был выбран потому, что его можно разместить где угодно. Кроме того, по сравнению с видеокамерой, регистраторы могут записывать под широким углом и использовать меньшую емкость хранилища данных (например, запись в течение 24 часов с помощью регистратора занимает около 70 ГБ). В этой демонстрации частота дискретизации ЭКГ в программном обеспечении для анализа данных установлена на уровне 1 к/с.
  2. После включения регистратора привода запустите на компьютере программу LabChart для записи поведения и ЭКГ.
    ПРИМЕЧАНИЕ: В этой демонстрации использовался макрос для непрерывной записи ЭКГ и автоматического сохранения файлов каждые 2 часа. Этот повторяющийся процесс выполнялся на протяжении всего эксперимента. Кроме того, для записи была выбрана SD-карта емкостью 256 ГБ, что позволяет собирать данные примерно 24 часа в день.
  3. Проверьте мышь на наличие родов и аномалий тела и возьмите образцы данных с регистратора и записываемого компьютера. День, когда мышь родила своих детенышей, считается постнатальным днем (ПД) 0. Измеряйте вес щенков каждый день после рождения.
    ПРИМЕЧАНИЕ: В этом исследовании записывающее видео с регистратора и файл данных ЭКГ с записываемого ПК собирались каждое утро с 7:30 до 8:30. Кроме того, чтобы предотвратить шум ЭКГ от вибраций, вызванных прикосновением нескольких детенышей к матери, помет был выбракован до четырех щенков (половина из них были самцами, а другая половина — самками).
  4. После проверки мышки и сбора данных верните все в исходное положение. Включите регистратор и записываемый компьютер. Запустите приложение LabChart.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Если для записи ЭКГ используется макрос, нажмите на кнопку макроса и инициализируйте макрос, выбрав кнопку «Запустить » в опции управления .
  5. Раз в неделю заменяйте клетку на новую. Во время этого процесса включайте подстилку, половина которой ранее использовалась, а другая половина – новая.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Этот процесс, включая отбор проб данных и проверку на мышах, повторяли с GD 17 до постнатального дня (PD) 21.

4. Анализ ЭКГ

  1. Для анализа данных ЭКГ используйте программное обеспечение для анализа данных. Запустите LabChart и откройте файл данных за период записи. Чтобы проанализировать вариабельность сердечного ритма (ВСР), нажмите на кнопку « ВСР » и отрегулируйте параметры определения ритма.
    ПРИМЕЧАНИЕ: В этой демонстрации выберите пользовательскую настройку и измените минимальную высоту пика на 1,2 для регулировки обнаружения.
  2. После настройки проверьте все удары и удалите все данные о шуме (как показано на рисунке 2C).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Если зубец R не обнаружен, добавьте или измените его с помощью кнопки ВСР .
  3. Нажмите на кнопку ВСР и выберите вид классификатора битов. Выберите все ритмы в представлении классификатора ритмов, затем выберите представление отчета с помощью кнопки ВСР . Скопируйте данные из представления отчета и вставьте их в Excel.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Результаты ВСР, как показано в таблице 1, отображают как временную, так и спектральную области с помощью программного обеспечения для анализа данных, что позволяет проводить наблюдения.

5. Категоризация этограммы поведения в домашних клетках

  1. Просмотрите все записанные видео, чтобы проверить наличие отклонений, таких как красный индикатор, не загорающийся в темное время суток, и неработающий регистратор диска.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Видео записывается таким же образом, как и ЭКГ, с видеоклипами, снятыми каждые 2 часа.
  2. Классифицируйте этограмму на основе таких параметров, как поза матери во время поведения, время, затраченное на поведение, и место, где произошло поведение (таблица 2), а затем наблюдайте за видео с регистратора.

Результаты

После имплантации телеметра беременной мышке мы записывали ЭКГ от беременности до лактации в домашней клетке. Частота дискретизации была установлена на уровне 1 к/с. Для сравнения ЭКГ каждого физиологического состояния мыши-матери без учета влияния циркадного ритма были проанализированы данные за 10 минут с 23:32 по ГД 17, родам, ФД 0 и ФД 21 из файла данных за 2 часа (рис. 3, табл. 1). Время с 23:32 до 23:42 было выбрано потому, что оно представляет собой 10 минут до рождения первого щенка во время родов. Этот конкретный период времени был выбран для демонстрации возможности проведения анализа данных во время родов при наличии мышечных сокращений. На всех этапах анализа мышь демонстрировала как общее поведение (питье, рытье, еда, самовылизывание), так и материнское поведение (строительство гнезда, вылизывание/груминг), что наблюдалось на 6 из 16 этограмм, перечисленных в таблице 2.

ЭКГ матери были записаны без помех на GD17, когда плод находился внутри тела (Рисунок 3A), и во время родов, когда происходили физические изменения, такие как мышечные сокращения (Рисунок 3B). Кроме того, ЭКГ регистрировались стабильно с момента рождения щенка (PD 0) до PD 21 (рисунок 3C, D), несмотря на различное поведение при кормлении. Анализ ЭКГ показал, что частота сердечных сокращений уменьшалась постепенно, в то время как интервал RR постепенно увеличивался от GD 17 до PD 21 (табл. 1). Анализ ВСР показал, что соотношение НЧ/СН резко возросло с ФД 0 до ПД 21 (табл. 1).

Этограммы материнского и общего поведения, записанные вместе с ЭКГ, были разделены, как показано в таблице 2. Мы также подтвердили, что ЭКГ может быть измерена без искажений формы волны, когда матери проявляют какое-либо поведение, определенное в таблице 2, например, кормление (рисунок 4A, C) и приседание (рисунок 4B, D).

figure-results-1
Рисунок 1: Телеметрия, имплантированная мышам на 14-й день беременности. (А) Два провода были подключены к телеметру. Черный цвет представляет отрицательный свинец, а белый — положительный свинец. (Б) Отрицательный и положительный провода были объединены в пучок и помещены в горловину. Телеметр был размещен на подфюзеляжной стороне. (C) Провод был удален из горловины, и SCM обнажился. (D) Телеметрия располагалась на подфюзеляжной стороне. SCM представлен в розовом цвете. Ключица и мечевидный отросток представлены серым цветом. Черная линия указывает на отрицательное отведение. Оранжевая линия указывает на положительный лид. Синяя линия обозначает положение шва. (E) Отрицательный провод был подключен к SCM. Положительный отведение было связано вокруг мечевидной мышцы. (F) Все разрезы (обозначенные красным кругом) были закрыты с помощью 20-сантиметрового шва. (G) Настройка захвата видео с помощью регистратора. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

figure-results-2
Рисунок 2: ЭКГ, записанная с помощью программного обеспечения для анализа данных. (А) ЭКГ записывалась в течение 3 с. (Б) ЭКГ для каждого удара сердца. (В) Красными пунктирными линиями обозначены участки, где ЭКГ не была записана. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

figure-results-3
Рисунок 3: ЭКГ во время беременности, родов и лактации. Результаты ЭКГ на одной и той же мыши в одно и то же время. (А) ЭКГ на ГД 17. (Б) ЭКГ во время родов. (В) ЭКГ при ПД 0. (D) ЭКГ на PD 21. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

figure-results-4
Рисунок 4: Запись ЭКГ во время поведенческого наблюдения. ЭКГ регистрировались во время построения этограммы той же мыши при ПД 6. (А) Изображение матери, которая ест твердую пищу. (Б) Изображение матери, склонившейся над своими детенышами. (В) ЭКГ матери во время приема пищи. (D) ЭКГ матери, когда она сидит на корточках над своими детенышами. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

Таблица 1: Анализ вариабельности сердечного ритма на основе ЭКГ от беременности до лактации. Анализ вариабельности сердечного ритма (ВСР) проводили на основе данных ЭКГ, показанных на рисунке 3. Все анализы были показаны для одной и той же мыши и в одно и то же время (23:32-23:42). Average RR, среднее значение интервалов ударов; Average Rate — средний темп такта; SDSD — стандартное отклонение разницы между последовательными интервалами ударов; RMSSD — среднеквадратичный размер последовательных разностей интервалов RR; pRR50 — процент разницы интервалов между тактами, превышающий фиксированную длительность; Общая, мощность, содержащаяся во всем частотном диапазоне; ОНЧ, очень низкая частота; НЧ, низкая частота; КВ, высокочастотные; SD1; стандартное отклонение по малой оси распределения Пуанкаре; SD2, стандартное отклонение вдоль большой оси распределения Пуанкаре. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать эту таблицу.

Таблица 2: Определенные этограммы. Все этограммы были определены на основе таких параметров, как поза, проведенное время и место, которое они посетили. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать эту таблицу.

Обсуждение

В этом методе, при котором телеметр имплантировался беременным мышам, можно было непрерывно отслеживать ЭКГ у одной и той же мыши от беременности до лактации. У мыши были представлены этограммы, которые включали движение, указывая на бодрствование в течение всех периодов анализа (23:32-23:42) от GD 17 до PD 21. Кроме того, представленные результаты показали, что частота сердечных сокращений постепенно снижалась от беременности до лактации. Считается, что такое снижение связано с нормализацией частоты сердечных сокращений, так как несколько исследований показали, что частота сердечных сокращений увеличивается у беременных женщин из-за увеличения кровотока11,12.

Кроме того, симпатическая активность увеличилась с PD 0 до PD 21 у той же мыши. Тем не менее, не было никаких изменений в симпатической или парасимпатической активности от ГД 17 до ПД 0. Подобно данным о симпатии во время беременности, в предыдущих исследованиях не сообщалось о каких-либо изменениях симпатической и парасимпатической активности у крыс с 4 по 18 день беременности по сравнению с таковыми у девственных крыс20 дней. У мышей материнская вегетативная активность может модулироваться развитием детенышей. Тем не менее, необходимы дальнейшие исследования, чтобы определить, являются ли эти характеристики вегетативной активности общими для матерей мышей или на них влияет состояние бодрствования.

В некоторых предыдущих исследованиях на мышах измеряли ЭКГ во время беременности и лактации с ограничениями движений и естественного поведения, потому что мать была изолирована от детенышей или находилась под анестезией 17,18,19. Напротив, метод, использованный в этом исследовании, позволил матери свободно двигаться во время записи ЭКГ, поскольку телеметрия и электрод, подключенные к мышце, имплантировались подкожно. В частности, ЭКГ регистрировалась, когда мать ела и поворачивала голову вверх, несмотря на то, что отрицательные отведения были прикреплены к СКМ.

Кроме того, имплантация устройства in vivo позволила обеспечить стабильную запись даже при контакте с сожительствующими детенышами или вибрациях, вызванных действиями матери. Например, ЭКГ измерялась даже тогда, когда мать проявляла самовылизывание (данные не показаны) и приседала над детенышами в домашней клетке. Основываясь на этих результатах, этот метод эффективен для отслеживания ЭКГ матерей, которые проводят свою повседневную жизнь со своими щенками без каких-либо ограничений в их поведении. Однако ЭКГ не регистрировалась, когда телеметрия, используемая в этом исследовании, находилась на определенном расстоянии от tBase; Например, когда матери двигались к держателю для еды или взбирались по клетке. Поэтому необходимы улучшения в условиях домашней клетки.

Этот метод также позволяет записывать ЭКГ во время выполнения таких действий, как материнское и общее поведение. Для одновременной записи поведения и ЭКГ в домашней клетке в течение длительных периодов времени вместо видеокамеры использовался регистраторпривода 5 . Кроме того, для детального анализа записанного поведения этограммы были разделены на основе таких параметров, как осанка, затраченное время и другие условия как для материнского, так и для общего поведения. ЭКГ матерей для каждого поведения могут быть разделены и сравнены в один и тот же день. Это сравнение показывает, как вегетативная активность матери различается между материнским и общим поведением в зависимости от периода беременности и лактации.

В заключение, этот протокол отслеживает взаимодействие между тремя факторами: вегетативной активностью, поведением матери и развитием детеныша, и может дать представление о характеристиках и механизмах изменений, происходящих у матерей от беременности до отлучения от груди.

Раскрытие информации

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Благодарности

Это исследование было поддержано JSPS KAKENHI (номера грантов JP 21H04981 и 30974521) и Центром разнообразия, справедливости и инклюзивности Университета Азабу.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
24-часовой повторяющийся таймерPanasonicWH3311BP
5-0 Нейлоновый шовNatsume SeisakushoCo-23s-N2
Бокс для анестезииNatsume Seisakusho CoKN-1010W110× D110× H110mm
Маска для анестезииNatsume Seisakusho CoKN-1019-1
Анестезиологический аппаратNatsume Seisakusho CoKN-1071-E
C57BL6/J мышиClea Japan, IncМышь для беременных на 14 день
Clip lightYazawaCLX60X02WH
Конфигуратор системыAdinstumentsTR190
регистратор приводаTranscendTS-DP250A-32G Держатель
для едыClea Japan, IncCL-2802
ИзофлуранFujiFilM099-06571
LabChart Pro V8ПриборыMLU260/8
LabChart8ПриборыMLS060/8
Телеметр биопотенциала мышиMT10B
Игла 18 G 1 1/2TerumoNN-1838R
Панельный обогревательSANKO4976285145407
PowerLab 4/26АксессуарыPL2604
Записываемый компьютерМышь компьютернаямышь K7-H
красная лампочкаELPALDG1R-G-GWP254
Резиновая маскаNatsume Seisakusho CoSD-карта KN-1019-M
(256 ГБ)TranscendTS256GUSD350VОн может записывать примерно 24 часа
Игла для швов 13 ммNatsume Seisakusho CoC-24-540-NO.0
Игла для швов 7 ммNatsume Seisakusho CoC-24-540-NO.0000
tBaseAdinstumentsMT110
корпорация

Ссылки

  1. Bowlby, J. Attachment and loss. Vol. 1. 1, Basic Books. New York. (1969).
  2. Teicher, M. H., Samson, J. A. Childhood maltreatment and psychopathology: A case for ecophenotypic variants as clinically and neurobiologically distinct subtypes. Am J Psychiatry. 170 (10), 1114-1133 (2013).
  3. Hoskins, D. H. Consequences of parenting on adolescent outcomes. Societies. 4 (3), 506-531 (2014).
  4. Caldji, C., et al. Maternal care during infancy regulates the development of neural systems mediating the expression of fearfulness in the rat. Proc Natl Acad Sci U S A. 95 (9), 5335-5340 (1998).
  5. Sakamoto, T., Ishio, Y., Ishida, Y., Mogi, K., Kikusui, T. Low maternal licking/grooming stimulation increases pain sensitivity in male offspring. Exp Anim. 70 (1), 13-21 (2021).
  6. Champagne, F., Meaney, M. J. Like mother, like daughter: Evidence for non-genomic transmission of parental behavior and stress responsivity. Prog Brain Res. 133, 287-302 (2001).
  7. Terkel, J., Rosenblatt, J. S. Maternal behavior induced by maternal blood plasma injected into virgin rats. J Comp Physiol Psychol. 65 (3), 479-482 (1968).
  8. Amenomori, Y., Chen, C. L., Meites, J. Serum prolactin levels in rats during different reproductive states. Endocrinology. 86 (3), 506-510 (1970).
  9. Yaguchi, K., et al. Dynamic modulation of pulsatile activities of oxytocin neurons in lactating wild-type mice. PloS One. 18 (5), e0285589(2023).
  10. Kikusui, T., Isaka, Y., Mori, Y. Early weaning deprives mouse pups of maternal care and decreases their maternal behavior in adulthood. Behav Brain Res. 162 (2), 200-206 (2005).
  11. Kodogo, V., Azibani, F., Sliwa, K. Role of pregnancy hormones and hormonal interaction on the maternal cardiovascular system: a literature review. Clin Res Cardiol. 108 (8), 831-846 (2019).
  12. Burke, S. D., et al. Circulatory and renal consequences of pregnancy in diabetic NOD mice. Placenta. 32 (12), 949-955 (2011).
  13. Feldman, R., Magori-Cohen, R., Galili, G., Singer, M., Louzoun, Y. Mother and infant coordinate heart rhythms through episodes of interaction synchrony. Infant Behav Dev. 34 (4), 569-577 (2011).
  14. Yoshida, S., et al. Infants show physiological responses specific to parental hugs. iScience. 23 (4), 100996(2020).
  15. Wass, S. V., et al. Parents mimic and influence their infant's autonomic state through dynamic affective state matching. Curr Biol. 29 (14), 2415-2422 (2019).
  16. Esposito, G., et al. Infant calming responses during maternal carrying in humans and mice. Curr Biol. 23 (9), 739-745 (2013).
  17. Khandoker, A. H., et al. Investigating the effect of cholinergic and adrenergic blocking agents on maternal-fetal heart rates and their interactions in mice fetuses. Biol Open. 11 (4), (2022).
  18. Widatalla, N., et al. Correlation between maternal and fetal heart rate increases with fetal mouse age in typical development and is disturbed in autism mouse model treated with valproic acid. Front Psychiatry. 13, 998695(2022).
  19. Mezzacappa, E. S., Tu, A. Y., Myers, M. M. Lactation and weaning effects on physiological and behavioral responses to stressors. Physiol Behav. 78 (1), 1-9 (2003).
  20. Slangen, B. F., Out, I. C., Janssen, B. J., Peeters, L. L. Blood pressure and heart rate variability in early pregnancy in rats. Am J Physiol. 273 (4), 1794-1799 (1997).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи