Методическая статья

Индукция миниатюрных колоний у Candida glabrate с помощью фотодинамической терапии, опосредованной Rose Bengal

1.5K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/66549

⸱

29 марта 2024 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Microbiology and Immunology, College of Medicine, National Cheng Kung University, 2Department of Dermatology, National Cheng Kung University Hospital, College of Medicine, National Cheng Kung University, 3Department of Ophthalmology, National Cheng Kung University Hospital, College of Medicine, National Cheng Kung University, 4National Institute of Infectious Diseases and Vaccinology, National Health Research Institutes, 5Department of Internal Medicine, National Cheng Kung University Hospital, College of Medicine, National Cheng Kung University, 6Insititute of Basic Medical Sciences, College of Medicine, National Cheng Kung University, 7Department of Biochemistry and Molecular Biology, College of Medicine, National Cheng Kung University, 8Center of Applied Nanomedicine, National Cheng Kung University

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

Значение миниатюрных колоний в лекарственной устойчивости Candida spp. до конца не изучено. Антимикробная фотодинамическая терапия (аФДТ) предлагает многообещающую стратегию против лекарственно-устойчивых грибковых инфекций. Это исследование демонстрирует, что аФДТ, опосредованная бенгальской розой, эффективно деактивирует Candida glabrata и индуцирует миниатюрные колонии, представляя собой уникальную процедуру.

Аннотация

Сталкиваясь с 40% смертностью у пациентов с кандидемией, лекарственно-устойчивые Candida и их миниатюрные мутанты остаются серьезной проблемой лечения. Антимикробная фотодинамическая терапия (аФДТ) нацелена на несколько грибковых структур, в отличие от антибиотиков/противогрибковых препаратов, потенциально препятствуя резистентности. Традиционные методы индуцирования миниатюрных колоний основаны на бромиде этидия или флуконазоле, которые могут влиять на чувствительность к лекарствам и реакцию на стресс. В этом исследовании изучалось применение зеленого света (пик 520 нм) и фотосенсибилизатора розовой бенгалии (RB) для борьбы с лекарственно-устойчивым изолятом Candida glabrata . Результаты показали, что лечение аФДТ значительно ингибировало рост клеток (снижение на ≥99,9%) и эффективно индуцировало образование миниатюрных колоний, о чем свидетельствует уменьшение размера и потеря окрашивания митохондриальных окислительно-восстановительных индикаторов. Это исследование предоставляет первоначальные доказательства того, что аФДТ может индуцировать миниатюрные колонии в штамме C. glabrata с множественной лекарственной устойчивостью in vitro, предлагая потенциально трансформационный подход к борьбе с устойчивыми грибковыми инфекциями.

Введение

Грибковые инфекции, особенно вызванные Candida albicans и все более устойчивой к лекарствам Candida glabrata, представляют серьезную глобальную угрозу1. Эти инфекции могут быть смертельными, особенно для госпитализированных пациентов и людей с ослабленной иммунной системой. Растущая устойчивость к противогрибковым препаратам угрожает борьбе с инвазивным кандидозом, тяжелой грибковой инфекцией с высокой смертностью, особенно от Candida albicans2. Резистентные штаммы препятствуют эффективному лечению, потенциально увеличивая как сложность, так и смертность. В округе Аламеда, штат Калифорния, США, C. glabrata стал наиболее распространенным инвазивным видом3. На этот сдвиг в распространенности и распространении видов Candida могут влиять местные методы здравоохранения, демографические данные пациентов, использование противогрибковых препаратов и распространенность факторов риска инфекций Candida.

Миниатюрные мутанты у Candida, лишенные функциональных митохондрий, показывают, как эта органелла влияет на реакцию на лекарства, вирулентность и стрессоустойчивость 4,5. C. glabrata легко образует эти колонии, приобретая чувствительность к полиенам, но теряя ее к азолам6. Чувствительность к азолам и дыхательная функция тесно связаны, при этом снижение дыхания приводит к резистентности из-за потери митохондриальной ДНК7. Миниатюрные колонии C. glabrata с резистентностью к азолам были выделены из образцов стула человека от реципиента трансплантата костного мозга, проходящего лечение флуконазолом8, и из флаконов для посева крови пациентов с инфекциями кровотока9. Их потенциальное влияние на лекарственную устойчивость, вирулентность и реакцию на стресс подчеркивает их клиническую значимость. Кроме того, их отличительные свойства делают их ценными инструментами для исследования фундаментальных вопросов митохондриальной биологии5. По мере продолжения исследований миниатюрных мутантов их применение как в клинических, так и в фундаментальных исследованиях, вероятно, будет расширяться.

Это исследование показало, что фотодинамическая терапия (ФДТ) может индуцировать миниатюрные колонии у C. glabrata, расширяя диапазон методов за пределы традиционных методов воздействия на C. glabrata бромида этидия или флуконазола.

Протокол

1. Культивирование C. glabrata

Примечание: Для экспериментов используется C. glabrata с множественной лекарственной устойчивостью (C2-1000907), устойчивый к большинству противогрибковых агентов, включая флуконазол. Экспериментальные условия, возможно, придется адаптировать к конкретному штамму, так как между различными штаммами могут существовать вариации. Во всех экспериментах использовалась логарифмическая фаза Candida, выращенная при 25 °C (имитирующая естественную инфекцию) для консистенции. Отсутствие гиф у C. glabrata упрощает количественное определение по сравнению с C. albicans, который образует гифы при 37 °C10.

  1. Чтобы приготовить логарифмическую культуру C. glabrata, выберите одну колонию из агарового планшета и перенесите ее в стеклянную пробирку с 3 мл стерильной среды пептон-декстрозы дрожжей (YPD) (см. Таблицу материалов). Инкубировать в течение 14-16 ч при 25 °C с встряхиванием (155 об/мин, угол 45° для увеличения пропускания воздуха в среду).
  2. После инкубации разбавьте культуру свежим YPD до наружного диаметра600 0,1 стерильным методом. Инкубировать при 25 °C в течение 6 ч с встряхиванием при 155 об/мин. Проверьте логарифмическую фазу C. glabrata, измерив наружный диаметр600. Стремитесь к 0,65-1,00, что соответствует 1 × 10 7-1,5 × 107 клеток/мл.

2. Индукция миниатюрных колоний бромидом этидия, флуконазолом и фотодинамической терапией

  1. Индукция миниатюрной колонии бромида этидия
    1. Доведите дрожжевую суспензию до наружного диаметра600 0,1 (5 × 106 клеток/мл) с YPD до конечного объема 3 мл, затем добавьте 30 мкл запаса бромида этидия (10 мг/мл) (см. Таблицу материалов) для получения конечной концентрации 100 мкг/мл.
    2. Дрожжевую суспензию инкубировать в течение ночи (16-18 ч) при температуре 25 °С, 155 об/мин, угле 45°. Отрегулируйте внешний диаметр600 0,65 (1 × 107 клеток/мл). Выполните серию 10-кратного разбавления в 96-луночном планшете, добавив 20 мкл отрегулированной суспензии дрожжей к 180 мкл PBS на лунку. Это создает шесть разведений в диапазоне от 10-1 до 10-5.
    3. Выберите 4 коэффициента разведения (например, 100, 101, 102 и 103) и поместите 3 капли (20 μл) на 4 квадрантах агаровых планшетов YPD (в три раза).
    4. Инкубируйте планшеты в течение ночи при 37 °C. Выберите квадранты с 5-80 колониями из ранее выбранных разведений для окрашивания трифенилтетразолия хлорида (ТТС)11 (см. шаг 3). Сканируйте пластины с разрешением 1200 точек на дюйм с помощью 48-битного полноцветного оптического сканера.
  2. Индукция колонии флуконазола петит
    ПРИМЕЧАНИЕ: Чтобы ускорить процесс, используйте Т3-клетки (смесь нормальных и миниатюрных клеток, полученную после 3 обработок RB-PDT; см. шаг 2.3) для образования миниатюрных колоний, индуцированных флуконазолом. Это связано с тем, что стандартная обработка обычно приводит к более медленному образованию.
    1. Приготовьте и отрегулируйте суспензию дрожжевых клеток, как описано в шаге 2.1.1.
    2. Инкубировать в течение ночи (16-18 ч) при 25 °C. Снова отрегулируйте внешний диаметр600 на 0,1.
    3. Переложите 1 мл отрегулированной суспензии в стерильную 5 мл пробирку.
    4. Окуните стерильный ватный тампон (длиной 15 см, с наконечником 0,9 см х 2,6 см, см. Таблицу материалов) в дрожжевую суспензию, обеспечивая контакт со дном трубки и скручивая, чтобы удалить лишнюю жидкость со стенки трубки.
    5. Подготовьте пластины в вытяжке с помощью агара Мюллера-Хинтона (см. Таблицу материалов).
    6. Проведите ватой вперед и назад по агару, дважды поверните на 60°, затем проведите тампоном по периметру для равномерного покрытия.
    7. Стерилизуйте щипцы над пламенем в течение 1-2 с, давая им немного остыть, затем используйте их, чтобы собрать чистые диски.
    8. Разделите пластину на три равных сектора с помощью маркера. Поместите по одному пустому диску в центр каждого сектора.
    9. Добавьте 12,5 мкл флуконазола (2 мг/мл, см. Таблицу материалов) в каждый диск (25 мкг/диск), тщательно перемешайте, чтобы избежать образования пузырьков, и инкубируйте при 37 °C в течение 20-24 ч.
    10. Выполните окрашивание TTC (см. шаг 3). Сканируйте пластины с разрешением 1200 точек на дюйм с помощью 48-битного полноцветного оптического сканера.
  3. Индукция малой колонии ФДТ
    ПРИМЕЧАНИЕ: Разные грибы могут производить разное количество миниатюрных колоний после ФДТ. Некоторые штаммы могут вообще их не производить.
    1. Подготовьте систему aPDT.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Процедура настройки устройства системы aPDT соответствует методу, описанному Hung et al12. Вкратце, система aPDT состоит из зеленого светодиодного массива с пиком на 520 нм (см. Таблицу материалов), излучающего свет снизу с хорошим выравниванием с каждой лункой 96-луночного планшета.
    2. Отрегулируйте суспензию дрожжевых клеток в среде YPD до наружного диаметра600 0,65 (около 1 × 107 клеток/мл).
    3. Смешайте 1 мл дрожжевой суспензии со 111 мкл 2% розовой бенгальской (RB, рис. 1) (см. таблицу материалов) в пробирке с круглым колпачком, чтобы получить конечную концентрацию RB 0,2%. Инкубируйте смесь при температуре 25 °C в течение 15 минут, вращая ее под углом 45° при 155 об/мин.
    4. Переложите смесь в микроцентрифужную пробирку объемом 1,5 мл и центрифугируйте при давлении 16 100 x g в течение 2,5 мин (при комнатной температуре).
    5. Выбросьте надосадочную жидкость и аккуратно соскребите трубку пять раз по полу вытяжки, чтобы снова суспендировать гранулу.
    6. Промойте суспензию 1x PBS четыре раза, чтобы удалить весь RB. После каждой промывки происходит ресуспендирование гранулы с коротким вихревым или пипетированием для тщательной ресуспендирования.
      1. После окончательной промывки добавьте 1000 μл PBS. Раствор светло-розового цвета. Перенесите по 200 мкл промытой дрожжевой суспензии, загруженной RB, в каждую из трех лунок в 96-луночном планшете (в трех экземплярах).
    7. Расположите 96-луночный планшет на фотодинамической световой системе со светодиодными лампами, светящими зеленым светом снизу. Выключите свет в комнате, чтобы обеспечить равномерное освещение и предотвратить помехи. Активируйте систему светодиодного освещения для подачи дозы ФДТ 4,38 Дж/см2 в течение 2 мин; Убедитесь, что система правильно выровнена по скважинам.
    8. После облучения разбавьте дрожжевую суспензию в 96-луночном планшете. Добавьте 20 мкл дрожжевой суспензии в лунку, содержащую 180 мкл PBS, создавая 10-кратное разбавление. Повторите для остальных разведений, чтобы достичь диапазона от 10-1 до 10-5.
    9. Выберите четыре фактора разбавления (например, от 10-2 до 10-5) на основе корректировки концентрации дрожжевых клеток.
    10. Для каждого фактора разбавления пластина 3 капли (по 20 мкл каждая) на квадрант на агаровых пластинах YPD.
    11. После того, как дрожжевая суспензия полностью впитается, около 10 минут агаровыми планшетами, переверните и инкубируйте в течение ночи при 37 °C.
    12. Определите T0 как контрольный родительский C. glabrata без лечения ФДТ. Подготовьте грибы Т0 в фазе роста бревна, как описано выше, и подвергните их воздействию зеленого света 4,38 Дж/см2 в присутствии 0,2% RB. Это состояние ФДТ последовательно подавляет от 3 до 3,5 логарифмов роста грибка.
      1. Обозначьте выжившие грибы как T1 и снова подвергните их той же дозе ФДТ после того, как они будут расширены in vitro до фазы логарифмического роста. Выжившие грибы после второй ФДТ обозначаются как Т2 и так далее.
    13. На следующий день выберите квадранты с числом колоний от 5 до 80. Подсчитайте количество колоний в каждом квадранте и рассчитайте титр по следующей формуле: Колониеобразующая единица (КОЕ)/мл = Количество колоний (среднее из тройных) × Коэффициент разведения × 50.
    14. Выполните окрашивание TTC (см. шаг 3). Отсканируйте пластину, как описано ранее (шаг 2.2).

3. Анализ митохондриальной функции (тест на окрашивание TCC)

ПРИМЕЧАНИЕ: TTC является окислительно-восстановительным индикатором и акцептором электронов. Он становится красным, когда белые соединения разрушаются электронами11. Обратите внимание, что не все клетки обязательно образуют видимые колонии в течение 24 ч после культивирования на агаровой пластине. Колонии с функциональными митохондриями становятся красными, в то время как колонии с нефункциональными митохондриями остаются белыми. Это позволяет дифференцировать колонии с разной митохондриальной функциональностью.

  1. После обработки разбавьте суспензии Candida на агаровых планшетах YPD в соответствии с желаемой плотностью клеток, чтобы получить отдельные колонии для легкой визуализации и окрашивания.
  2. После 24 ч роста при 37 °C из одной клетки образуются видимые колонии. Пипетка 20 мкл 20% TTC непосредственно в центр каждой колонии.
  3. После полного поглощения, около 10 мин TTC колониями, инкубировать при 37 °C в течение 30-40 мин.

4. Кинетика роста нормального и миниатюрного C. glabrata

Примечание: Сравнивались три штамма дрожжей: C. glabrata C2-1000907 T0 (клинический изолят без лечения ФДТ), T3n (C. glabrata C2-1000907 после 3 последовательных RB-PDT, демонстрирующих колонии со средним диаметром 1,5 ± 0,8 мм, похожие на родительские клетки) и T3p (миниатюрные колонии C. glabrata C2-1000907 после 3 последовательных RB-PDT).

  1. Отрегулируйте суспензию дрожжевых клеток в среде YPD до наружного диаметра600 0,1 (5 × 106 клеток/мл) в пробирке объемом 3 мл.
  2. Автоматически измеряйте внешний диаметр600 статической культуры каждые 20 мин с помощью многорежимного считывателя микропланшетов (см. Таблицу материалов) в течение 24 часов.

Результаты

Данные представлены в виде среднего значения со стандартной погрешностью ± и были получены из трех независимых экспериментов, по крайней мере, с тройками в каждой группе. Экспериментальные данные, включая количество колоний, измерения OD600 и результаты окрашивания TTC, были построены на графиках и статистически проанализированы с использованием графического и статистического программного обеспечения (см. Таблицу материалов). Для анализа данных использовали однофакторный ANOVA или t-критерий , и p-значение <0,05 считалось значимым. Сканирование выполнялось 48-битным полноцветным оптическим сканером с разрешением 1200 dpi, а последующие измерения диаметров колоний проводились с помощью программного обеспечения ImageJ.

Как показано на кривых роста на рисунке 2, миниатюрные мутанты C. glabrata C2-1000907 (T3p) демонстрировали более медленный рост по сравнению с необработанными родительскими грибами обычного размера (T0). Когда C. glabrata смешивали с 0,2% RB в течение 15 мин и подвергали воздействию зеленого света 4,38 Дж/см2 (обработка ФДТ), титр грибов снижался с 107,5 КОЕ/мл до 104,5 КОЕ/мл (по крайней мере, 3 логарифма, рис. 3) по сравнению с контрольной группой (только RB), у которой плотность клеток составляла около 10,7 КОЕ/мл. Кроме того, после аФДТ наблюдались миниатюрные колонии. Эти миниатюрные колонии имели средний размер от 0,4 мм ± 0,25 мм вместо обычного размера 1,5 мм ± 0,8 мм (рис. 4A). Небольшие по размеру колонии с митохондриальной дисфункцией можно определить по размеру и цвету после окрашивания 20% ТТС. Миниатюрные колонии, которые сохраняли белый цвет (Рисунок 3B, белые стрелки), демонстрировали митохондриальную дисфункцию, в то время как некоторые меньшие колонии красного цвета и колонии нормального размера сохраняли нормальную функцию митохондрий (Рисунок 4B). Традиционный агент интеркалирования ДНК бромид этидия (рисунок 4C) и флуконазол (рисунок 4D) могут эффективно индуцировать миниатюрные мутанты Candida. Дисковая диффузия — это простой метод определения лекарственной чувствительности грибов. На рисунке 4D четкая круглая зона без роста окружала диск флуконазола, содержащий 25 мкг флуконазола в культуре Т0 (без ФДТ), что указывает на меньшую лекарственную устойчивость у этого родительского гриба. Тем не менее, C. glabrata C2-1000907 по-прежнему определяется как резистентный штамм по минимальной концентрации ингибирования по отношению к флуконазолу (данные не показаны) и диаметру прозрачной зоны. В культуре Т3 рядом с диском образовалось много миниатюрных колоний (стрелка, нижняя панель), что свидетельствует о лекарственной устойчивости после трех повторных обработок ФДТ.

figure-results-1
Рисунок 1: Молекулярная структура бенгальской розы (RB). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

figure-results-2
Рисунок 2: Кривые роста C. glabrata C2-1000907 через 24 ч после повторного RB-PDT. Кривые роста сравнивали для трех штаммов: C. glabrata C2-1000907 T0 (наивные родительские клетки), T3n (колонии с нормальным размером после 3 повторных обработок) и T3p (миниатюрные колонии после 3 повторных обработок). По сравнению с T0 и T3n, колонии T3p показали значительно более медленную скорость роста (n = 3, p < 0,05). Все клетки выращены в среде YPD. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

figure-results-3
Рисунок 3: Ингибирование роста C. glabrata C2-1000907 после аФДТ. Однократное лечение аФДТ световой дозой 4,38 Дж/см² и 0,2% RB значительно ингибировало рост C. glabrata C2-1000907 на 3 log по сравнению с наивным контролем (p < 0,0001, непарный t-критерий). Полосы погрешностей представляют среднее значение ± SEM, данные объединены из 3 независимых экспериментов. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

figure-results-4
(A) C. glabrata C2-1000907, через 24 ч после лечения аФДТ (0,2% RB, 4,38 Дж/см² зеленый свет), показал бимодальное распределение колоний по размерам с большими (1,5 мм ± 0,8 мм) и малыми (миниатюрными) колониями (0,4 мм ± 0,25 мм). (B) Окрашивание TCC показало, что большие колонии были функциональными, поскольку они стали красными, в то время как миниатюрные колонии были нефункциональными, поскольку они оставались белыми. (C) Миниатюрные колонии также индуцировали обработкой бромидом этидия (100 мкг/мл в течение 30-40 мин) и (D) флуконазолом (25 мкг/мл). Четкая круглая зона без роста окружала диск флуконазола, содержащий 25 мкг флуконазола в культуре Т0 (без ФДТ), что указывает на чувствительность. В культуре Т3 рядом с диском образовалось много миниатюрных колоний (стрелка, нижняя панель), что свидетельствует о лекарственной устойчивости после трех повторных обработок ФДТ. Масштабные линейки: 1 мм. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Обсуждение

Это исследование раскрывает ФДТ как первый зарегистрированный метод индуцирования образования миниатюрных колоний у Candida, превосходящий установленные эффекты бромида этидия и флуконазола. Это новое наблюдение требует дальнейших исследований, чтобы разгадать его последствия как для искоренения грибков за счет снижения вирулентности, так и для появления механизмов резистентности.

RB-опосредованная ФДТ эффективно ингибирует рост C. glabrata, что предполагает потенциальный альтернативный подход к лечению инфекций Candida. Как фотосенсибилизатор, активируемый светом, RB производит синглетный кислород и активные формы кислорода (АФК) при воздействии определенной длины волны. Этот окислительный стресс вызывает повреждение основных клеточных компонентов, таких как липиды, белки и нуклеиновыекислоты, что приводит к митохондриальной дисфункции, как показано в настоящем исследовании. Это затрудняет развитие резистентности Candida с помощью обычных механизмов, наблюдаемых при использовании стандартных противогрибковых препаратов.

Три штамма дрожжей, используемые в этом исследовании, T0, T3n и T3p, демонстрируют различные модели роста. T0 остается нелеченным, в то время как T3n и T3p подвергаются RB-PDT три раза. T3n демонстрирует колонии нормального размера, тогда как T3p демонстрирует миниатюрные колонии. Более медленный рост миниатюрных колоний может указывать на изменения в клеточной энергии и метаболизме. Миниатюрный фенотип, часто связанный с митохондриальной дисфункцией4, может привести к нарушению аэробного дыхания, что влияет на общую кинетику роста. Нарушение аэробного дыхания в миниатюрных колониях может повлиять на их вирулентность, чувствительность к лекарствам или способность сохраняться в различных средах. Эта связь имеет потенциальные клинические последствия и открывает возможности для будущих направлений исследований.

Бромид этидия, агент, интеркалирующий ДНК, ингибирует синтез митохондриальной ДНК и разрушает существующую митохондриальную ДНК, превращая Candida в миниатюрные колонии с митохондриальной дисфункцией14. Флуконазол, обычно используемый для лечения инфекций Candida, может вызывать лекарственную устойчивость и развитие миниатюрной колонии у C. glabrata6. Миниатюрные мутанты могут проявлять устойчивость к азольным препаратам через активацию транскрипционного фактора PDR1 и его регуляцию генов CDR1 и CDR215. Более того, из-за частичной или полной потери митохондриальной ДНК функция митохондрий нарушается16.

ФДТ продемонстрировала эффективность в снижении вирулентности бактерий17, индуцировании чувствительности к антибиотикам18 и уменьшении образования биопленки19 у бактерий. Исследования ФДТ против грибковых инфекций ограничены20. Это открытие поднимает интригующие вопросы о том, как RB-PDT влияет на митохондрии C. glabrata. Чтобы полностью понять, как RB-PDT влияет на дрожжевые клетки, понимание молекулярных механизмов, вызывающих изменения роста, имеет решающее значение. Тем не менее, миниатюрные мутанты, индуцированные ФДТ, в настоящее время недостаточно изучены, и их детальная механистическая основа остается неясной. Необходимы дальнейшие исследования, чтобы определить, есть ли какие-либо различия между небольшими колониями, созданными различными методами. Понимание того, как образуются миниатюрные виды Candida, важно для изучения взаимосвязи между функцией митохондрий и патогенностью. Кроме того, миниатюрные мутанты могут служить моделью для изучения механизмов устойчивости к противогрибковым препаратам.

Текущее исследование, хотя и дает ценную информацию о влиянии RB-опосредованной ФДТ на C. glabrata и появление миниатюрных колоний, имеет определенные ограничения, которые следует учитывать. Во-первых, исследование в основном было сосредоточено на экспериментах in vitro, и перенос этих результатов в клинические условия требует дальнейшего изучения. Кроме того, конкретные молекулярные механизмы, лежащие в основе образования миниатюрных колоний после RB-PDT, и их потенциальное влияние на устойчивость к противогрибковым препаратам требуют более глубокого изучения. Кроме того, в то время как в исследовании сравнивались модели роста различных штаммов дрожжей, дополнительный молекулярный и генетический анализ может обеспечить более глубокое понимание метаболических и генетических изменений, связанных с образованием миниатюрных колоний.

Кроме того, потенциальная вариабельность ответа на RB-PDT среди различных клинических изолятов C. glabrata не рассматривалась в этом исследовании, что подчеркивает необходимость более широких исследований, специфичных для штамма. Будущие исследования, направленные на устранение этих ограничений, будут иметь решающее значение для более полного понимания последствий RB-опосредованной ФДТ и появления миниатюрных колоний в контексте стратегий противогрибкового лечения.

Таким образом, это исследование показывает, что аФДТ индуцирует миниатюрных мутантов C. glabrata (C2-1000907) с нарушением функции митохондрий. Этот уникальный механизм может предложить новый метод противогрибковых исследований. Точный механизм действия, лежащий в основе ФДТ-индуцированных миниатюрных колоний, еще предстоит выяснить, и изучение потенциальных отличий от других методов будет иметь решающее значение для оптимизации терапевтических стратегий.

Раскрытие информации

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Благодарности

Эта работа получила финансирование от Министерства науки и технологий Тайваня [MOST 110-2314-B-006-086-MY3], Национального университета Ченг Кун [K111-B094], [K111-B095], Национальной больницы Университета Чэн Кун, Тайвань [NCKUH-11204031], [NCKUMCS2022057].

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
0,22 μ m фильтрMerck, Тайбэй, ТайваньMillex, SLGVR33RS
1,5 мл микрофуге пробиркаNeptune, Сан-Диего, США#3745
20% трифенилтетразолия хлорид (TTC)Sigma-Aldrich, MO, СШАT8877
мл полипропиленовая трубка с круглым дномCorning, AZ, США 352059
5 мл круглодонная трубка с крышкой клеточного фильтраCorning, AZ, СШАFalcon, #352235
96-луночная пластинаAlpha plus, Taoyuan Hsien, Тайвань#16196
AgarBRS, Тайнань, ТайваньAG012
Blank diskAdvantec, Токио, Япония49005040
центрифугаEppendorf, UK5415R
Раствор бромида этидииSigma-Aldrich, MO, СШАE1510
Флуконазол, 2 мг/млPfizer, Нью-Йорк, СШАBC18790248
GraphPad PrismПрограммное обеспечение GraphPadверсии 7.0
Зеленая светоизлучающая диодная лента (LED)Nanyi electronics Co., Ltd, Тайнань, Тайвань5050Волна возбуждения: 500~550 нм
Низкая температура. Встряхивайте ИнкубаторыYihder, Тайбэй, ТайваньLM-570D (R)
Ватные палочкидля ухода за полостью ртаGood Verita Enterprise, Тайбэй, Тайвань161357
Muller Hinton II agarBD biosciences, Калифорния, США211438
Многорежимный микропланшетный ридерMolecular DevicesSpectraMax i3x
OD600 спектрофотометрBiochrom, Лондон, ВеликобританияUltrospec 10
Rose BengalSigma-Aldrich, США330000исходная концентрация 40 мг/мл = 4%, готовят в PBS, хранят при температуре 4°°; C
Стерилизованная стеклянная трубкаSunmei, Тайнань, ТайваньAK45048-16100
Дрожжевой экстракт пептона декстроза MediumHIMEDIA, ИндияM1363
5

Ссылки

  1. Soriano, A., et al. Invasive candidiasis: current clinical challenges and unmet needs in adult populations. J Antimicrob Chemother. 78 (7), 1569-1585 (2023).
  2. Pappas, P. G., Lionakis, M. S., Arendrup, M. C., Ostrosky-Zeichner, L., Kullberg, B. J. Invasive candidiasis. Nat Rev Dis Primers. 4, 18026(2018).
  3. Meyahnwi, D., Siraw, B. B., Reingold, A. Epidemiologic features, clinical characteristics, and predictors of mortality in patients with candidemia in Alameda County, California; a 2017-2020 retrospective analysis. BMC Infect Dis. 22 (1), 843(2022).
  4. Whittaker, P. A. The petite mutation in yeast. Subcell Biochem. 6, 175-232 (1979).
  5. Hatab, M. A., Whittaker, P. A. Isolation and characterization of respiration-deficient mutants from the pathogenic yeast Candida albicans. Antonie Van Leeuwenhoek. 61 (3), 207-219 (1992).
  6. Defontaine, A., et al. In-vitro resistance to azoles associated with mitochondrial DNA deficiency in Candida glabrata. J Med Microbiol. 48 (7), 663-670 (1999).
  7. Brun, S., et al. Relationships between respiration and susceptibility to azole antifungals in Candida glabrata. Antimicrob Agents Chemother. 47 (3), 847-853 (2003).
  8. Bouchara, J. P., et al. In-vivo selection of an azole-resistant petite mutant of Candida glabrata. J Med Microbiol. 49 (11), 977-984 (2000).
  9. Badrane, H., et al. Genotypic diversity and unrecognized antifungal resistance among populations of Candida glabrata from positive blood cultures. Nat Commun. 14 (1), 5918(2023).
  10. Shantal, C. -J. N., Juan, C. -C., Lizbeth, B. -U. S., Carlos, H. -G. J., Estela, G. -P. B. Candida glabrata is a successful pathogen: An artist manipulating the immune response. Microbiol Res. 260, 127038(2022).
  11. Gamarra, S., Mancilla, E., Dudiuk, C., Garcia-Effron, G. Candida dubliniensis and Candida albicans differentiation by colony morphotype in Sabouraud-triphenyltetrazolium agar. Rev Iberoam Micol. 32 (2), 126-128 (2015).
  12. Hung, J. H., et al. Rose bengal-mediated photodynamic therapy to inhibit Candida albicans. J Vis Exp. (181), e63558(2022).
  13. Cardoso, D. R., Franco, D. W., Olsen, K., Andersen, M. L., Skibsted, L. H. Reactivity of bovine whey proteins, peptides, and amino acids toward triplet riboflavin as studied by laser flash photolysis. J Agric Food Chem. 52 (21), 6602-6606 (2004).
  14. Hall, R. M., Trembath, M. K., Linnane, A. W., Wheelis, L., Criddle, R. S. Factors affecting petite induction and the recovery of respiratory competence in yeast cells exposed to ethidium bromide. Mol Gen Genet. 144 (3), 253-262 (1976).
  15. Chen, X. J., Clark-Walker, G. D. The petite mutation in yeasts: 50 years on. Int Rev Cytol. 194, 197-238 (2000).
  16. Piskur, J. Inheritance of the yeast mitochondrial genome. Plasmid. 31 (3), 229-241 (1994).
  17. Wong, T. W., Wang, Y. Y., Sheu, H. M., Chuang, Y. C. Bactericidal effects of toluidine blue-mediated photodynamic action on Vibrio vulnificus. Antimicrob Agents Chemother. 49 (3), 895-902 (2005).
  18. Wong, T. W., et al. Indocyanine green-mediated photodynamic therapy reduces methicillin-resistant Staphylococcus aureus drug resistance. J Clin Med. 8 (3), 411(2019).
  19. Warrier, A., Mazumder, N., Prabhu, S., Satyamoorthy, K., Murali, T. S. Photodynamic therapy to control microbial biofilms. Photodiagnosis Photodyn Ther. 33, 102090(2021).
  20. Hung, J. H., et al. Recent advances in photodynamic therapy against fungal keratitis. Pharmaceutics. 13 (12), 2011(2021).

Перепечатки и разрешения

Теги

Candida glabrataантимикробная фотодинамическая терапиялекарственно-устойчивые Candidaтерапия зеленым светоммитохондриальный индикатор окислительно-восстановительного потенциалалечение грибковых инфекцийгрибы с множественной лекарственной устойчивостью
Индукция миниатюрных колоний у Candida glabrate с помощью фотодинамической терапии, опосредованной Rose Bengal
Связаться с нами
Порекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия использования

Политики

© 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.