Методы обеспечения пространственной транскриптомики костных тканей

Summary

В этой статье мы опишем метод, который позволяет провести декальцификацию свежеполученных костных тканей и сохранить высококачественную РНК. Также проиллюстрирован метод среза образцов недеминерализованной кости с фиксированным парафином формалином (FFPE) для получения результатов хорошего качества, если свежие ткани недоступны или не могут быть собраны.

Abstract

Понимание взаимосвязи между клетками и их расположения в каждой ткани имеет решающее значение для раскрытия биологических процессов, связанных с нормальным развитием и патологией заболевания. Пространственная транскриптомика является мощным методом, который позволяет анализировать весь транскриптом в образцах тканей, тем самым предоставляя информацию об экспрессии клеточных генов и гистологическом контексте, в котором находятся клетки. В то время как этот метод широко используется для многих мягких тканей, его применение для анализа твердых тканей, таких как кости, было сложной задачей. Основная проблема заключается в невозможности сохранить РНК и морфологию тканей хорошего качества при обработке образцов твердых тканей для среза. Таким образом, здесь описан метод обработки свежеполученных образцов костной ткани для эффективного получения пространственных транскриптомных данных. Этот метод позволяет проводить декальцификацию образцов, обеспечивая успешные срезы тканей с сохраненными морфологическими деталями, избегая при этом деградации РНК. Кроме того, приведены подробные рекомендации для образцов, которые ранее были залиты парафином, без деминерализации, таких как образцы, собранные из банков тканей. С использованием этих рекомендаций представлены высококачественные данные пространственной транскриптомики, полученные из образцов банка тканей первичной опухоли и метастазирования в легкие остеосаркомы костей.

Introduction

Кость – это специализированная соединительная ткань, состоящая в основном из волокон коллагена 1 типа и неорганических солей¹. В результате кость получается невероятно прочной и жесткой, в то же время легкой и травмостойкой. Большая прочность кости обусловлена содержанием в ней минералов. Фактически, при любом заданном увеличении процентного содержания минералов жесткость увеличивается в пять^раз2. Следовательно, исследователи сталкиваются со значительными проблемами при анализе биологии костного образца с помощью гистологического среза.

Гистология недекальцинированной кости возможна, а иногда и необходима, в зависимости от типа исследования (например, для изучения микроархитектуры кости); Тем не менее, это очень сложная задача, особенно если экземпляры крупные. В этих случаях обработка тканей в гистологических целях требует нескольких модификаций стандартных протоколов и методик³. Как правило, для проведения общих гистологических оценок костные ткани декальцифицируются сразу после фиксации, что может занять от нескольких дней до нескольких недель, в зависимости от размера ткани и используемого декальцифицирующего агента^. Декальцинированные срезы часто используются для обследования костного мозга, диагностики опухолей и т.д. Существует три основных типа декальцинирующих агентов: сильные кислоты (например, азотная кислота, соляная кислота), слабые кислоты (например, муравьиная кислота) и хелатирующие агенты (например, этилендиаминэтрицензиновая кислота или ЭДТА)⁵. Сильные кислоты могут очень быстро декальцинировать кость, но они могут повредить ткани; слабые кислоты очень распространены и подходят для диагностических процедур; Хелатирующие агенты на сегодняшний день являются наиболее используемыми и подходящими для исследовательского применения, поскольку в этом случае процесс деминерализации является медленным и щадящим, что позволяет сохранить высококачественную морфологию и сохранить информацию о генах и белках, как того требуют многие процедуры (например, гибридизация in situ , иммуноокрашивание). Однако, когда необходимо сохранить весь транскриптом, например, для анализа экспрессии генов, даже медленная и щадящая деминерализация может быть вредной. Следовательно, необходимы более совершенные подходы и методы, когда морфологический анализ тканей должен сочетаться с анализом экспрессии генов клеток.

Благодаря недавним усовершенствованиям в секвенировании РНК одиночных клеток (scRNA-seq) и пространственной транскриптомике, теперь стало возможным изучать экспрессию генов образца ткани даже в тех случаях, когда для хранения образцов тканей использовалось парафиновложение фиксации формалина (FFPE) ^6,7,8. Эта возможность открыла доступ к большему количеству образцов, например, хранящихся в банках тканей по всему миру. Если необходимо использовать scRNA-seq, наиболее важным требованием является целостность РНК; однако в случае пространственной транскриптомики образцов FFPE для визуализации экспрессии гена в гистологическом контексте каждого среза ткани необходимы как высококачественные срезы ткани, так и высококачественные РНК. В то время как это было легко достигнуто с помощью мягких тканей, этого нельзя сказать о твердых тканях, таких как кости. На самом деле, насколько нам известно, ни одно исследование с использованием пространственной транскриптомики никогда не проводилось на образцах костей FFPE. Это связано с отсутствием протоколов, которые могли бы эффективно обрабатывать костные ткани FFPE с сохранением содержания в них РНК. В этом случае сначала предлагается метод обработки и декальцинации свежеполученных образцов костной ткани, избегая деградации РНК. Затем, признавая необходимость транскриптомного анализа образцов FFPE, собранных в банках тканей по всему миру, также представлены разработанные рекомендации по надлежащему обращению с образцами FFPE недеминерализованных костей.

Protocol

Все описанные ниже процедуры на животных были одобрены в соответствии с Руководством по уходу за лабораторными животными и их использованию в Школе стоматологической медицины Университета Питтсбурга.

1. Способ получения блоков FFPE образцов костной ткани, требующих деминерализации

1. Подготовка реагентов и материалов
   1. Приготовьте ЭДТА 20% pH 8,0. Для 1 л растворите 200 г ЭДТА в 800 мл сверхчистой воды, отрегулируйте pH до 8,0 с помощью гидроксида натрия 10 N и, наконец, доведите объем до 1 л с помощью сверхчистой воды. Хранить при комнатной температуре.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Всегда используйте свежеприготовленный EDTA 20% pH 8,0. Гидроксид натрия (NaOH) 10 N получают путем растворения 400 г NaOH в 1 л сверхчистой воды.
   2. Приготовьте параформальдегид (PFA) 4% в вытяжном шкафу, используя 1x PBS без кальция и магния.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Обозначьте область в вытяжном шкафу для работы с концентрированными растворами параформальдегида или твердыми веществами параформальдегида и обозначьте ее соответствующим образом. Чтобы избежать воздействия, держите контейнеры как можно более закрытыми. Используйте в наименьших практических количествах, необходимых для проведения проводимого эксперимента. Если в вытяжном шкафу нельзя использовать порошок параформальдегида для взвешивания и весы, сначала возьмите контейнер, затем добавьте порошок PFA в колпак и крышку, прежде чем вернуться к весам для взвешивания порошка. Всегда используйте свежеприготовленный 4% PFA.
   3. Используйте подходящую емкость для каждого экземпляра.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Например, для 1 мг костной ткани используйте контейнер, который позволяет контактировать с костью не менее 1 мл любого раствора.
   4. Простерилизуйте все хирургическое оборудование, необходимое для вскрытия.
   5. Очистите все участки обеззараживающим раствором для удаления РНКазы.
   6. Соберите оставшиеся экспериментальные материалы, включая контейнеры со льдом, 70% этанол в аэрозоле, и получите доступ к орбитальному шейкеру.
2. Выделение образцов костной ткани у мышей
   1. Усыпьте мышь путем воздействия CO₂ , затем выполните шейный вывих и положите ее на спину. Сбрызните кожу мыши 70% этанолом.
   2. С помощью стерильных ножниц для рассечения вскройте кожу и обнажите мышцу ноги. Разрежьте мышцу вдоль ноги, чтобы получить четкое представление о положении кости, и аккуратно расчлените кость, чтобы удалить ее без повреждений.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Нет необходимости полностью удалять всю мышцу, прикрепленную к кости. Старайтесь действовать как можно быстрее, чтобы ограничить деградацию РНК.
   3. Немедленно поместите образец кости в пробирку, содержащую 4% ПФА, и положите пробирку на лед.
   4. Повторите процедуру, чтобы собрать другие образцы кости по желанию.
   5. Поместите образцы с 4% PFA в перемешанном состоянии на орбитальный шейкер при 140 об/мин при 4 °C не менее чем на 24 часа, чтобы обеспечить надлежащую фиксацию.
3. Декальцинация образцов костной ткани
   1. Извлеките костную ткань из орбитального шейкера после фиксации.
   2. Промойте костную ткань 2 раза с помощью 1x PBS в течение 3 минут на орбитальном шейкере при 140 об/мин, чтобы удалить остатки PFA.
   3. С помощью стерильных ножниц для препарирования удалите все оставшиеся мышцы, все еще прикрепленные к кости.
   4. Промойте костную ткань еще раз 1x PBS в течение 3 минут.
   5. Поместите костную ткань в новый контейнер с 20% ЭДТА pH 8,0. Затем поместите контейнер на орбитальный шейкер со скоростью 140 об/мин на 30 минут при комнатной температуре (RT).
   6. Выбросьте раствор, добавьте свежий 20% EDTA pH 8,0 в контейнер и поместите его на орбитальный шейкер при 140 об/мин на 30 минут при RT.
   7. Повторите шаг 1.3.6 10 раз.
   8. Выбросьте раствор, добавьте свежий 20% ЭДТА pH 8,0 в контейнер и поместите его при температуре 4 °C в холодное помещение на орбитальный шейкер при 140 об/мин на ночь.
4. Обезвоживание образцов костной ткани
   1. Извлеките образец костной ткани из контейнера.
   2. Осмотрите ткань и убедитесь в эффективности декальциноза, аккуратно поворачивая и скручивая кость. В качестве альтернативы можно провести рентгенографию кости с помощью рентгеновского аппарата.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Если образец легко изгибается, то достигается хорошая степень декальцинации. Если нет, то следует увеличить параметры декальцинации (время, скорость перемешивания, используемый объем 20% ЭДТА pH 8,0 и т.д.).
   3. Промойте костную ткань 2 раза 1x PBS в течение 3 минут, чтобы удалить остатки ЭДТА.
   4. Поместите костную ткань в новый контейнер и инициируйте обезвоживание с помощью 70% этанола. Инкубировать в течение 15 минут при 140 об/мин.
   5. Выбросьте 70% раствор этанола, поместите образец в 90% раствор этанола и инкубируйте в течение 15 минут при 140 оборотах в минуту.
   6. Выбросьте 90% раствор этанола, поместите образец в 100% этанол и инкубируйте в течение 15 минут при 140 оборотах в минуту.
   7. Выбросьте 100% этанол, поместите образец в новый 100% этанол и инкубируйте в течение 15 минут при 140 оборотах в минуту.
   8. Выбросьте 100% этанол, поместите образец в новый 100% этанол и инкубируйте в течение 15 минут при 140 оборотах в минуту.
   9. Выбросьте 100% этанол, поместите образец в новый 100% этанол и инкубируйте в течение 30 минут при 140 оборотах в минуту.
   10. Выбросьте 100% этанол, поместите образец в новый 100% этанол и инкубируйте в течение 45 минут при 140 об/мин.
       ПРИМЕЧАНИЕ: Обезвоживание также может быть выполнено с помощью автоматического процессора. В этом случае настройте программу с теми же условиями, которые сообщаются для ручного обезвоживания. Заявленные условия относятся к образцам толщиной не более 4 мм (т.е. образцам костной ткани, полученным от мышей). Для образцов толщиной более 4 мм время обезвоживания должно быть определено экспериментально.
5. Очистка образцов костной ткани
   1. Поместите образец костной ткани в новый контейнер и начните процесс очищения с помощью ксилола. Инкубировать в течение 20 минут при 140 об/мин.
   2. Выбросьте использованный ксилол, добавьте новый ксилол и инкубируйте еще 20 минут при 140 об/мин.
   3. Выбросьте использованный ксилол, добавьте новый ксилол и инкубируйте в течение 45 минут при 140 оборотах в минуту.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Очистка также может быть выполнена с помощью автоматического процессора. В этом случае настройте программу с теми же условиями, которые сообщаются для ручной очистки. Заявленные условия относятся к образцам толщиной не более 4 мм (т.е. образцам костной ткани, полученным от мышей). Для образцов толще 4 мм сроки необходимо определять экспериментально.
6. Инфильтрация и внедрение образцов костной ткани
   1. После очистки возьмите образец костной ткани из орбитального шейкера/автоматического процессора.
   2. Поместите образец костной ткани в закладную кассету и начните инфильтрацию воском (см. Таблицу материалов). Выдерживать в течение 30 минут при температуре 60 °C.
   3. Выбросьте использованный воск, добавьте новый воск и выдерживайте в течение 30 минут при температуре 60 °C.
   4. Выбросьте использованный воск, добавьте новый воск и выдерживайте в течение 45 минут при температуре 60 °C.
   5. Аккуратно поместите образец костной ткани в форму с нужной ориентацией.
   6. Дайте блоку застыть на холодной поверхности.
   7. Полученный FFPE хранить при температуре 4 °C до тех пор, пока не будет готов к началу секционирования.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Блок FFPE может храниться в течение многих лет до проведения секционирования.

2. Методические рекомендации по секционированию недеминерализованных проб FFPE

ПРИМЕЧАНИЕ: Следующие рекомендации содержат ценные советы и инструкции, полезные для значительного улучшения качества участков ткани при одновременном предотвращении деградации РНК, особенно в случаях небольших образцов кости без декальцинации. Эти рекомендации также могут быть применены к образцам декальцинированной кости, если таковые имеются. Для более крупных образцов костной ткани следует проводить деминерализацию для получения срезов лучшего качества; В таких случаях следует следовать описанному выше методу, а параметры (сроки, объемы растворов и т.д.) должны быть соответствующим образом скорректированы. Следующие рекомендации подходят либо в том случае, если костные ткани FFPE уже были обработаны (например, блок FFPE, собранный в банках тканей или других лабораториях), либо когда собранные срезы будут использоваться для выполнения любого типа анализа, требующего хорошего качества РНК, высококачественных срезов тканей или того и другого.

1. Подготовка оборудования
   1. Опрыскайте все рабочие поверхности и инструменты обеззараживающими растворами для удаления РНКазы.
   2. Приготовьте водяную баню с двойной дистиллированной водой и установите температуру 42 °C.
   3. Возьмите лезвие микротома, распылите на него 70% этанола для удаления остатков масла, затем распылите на него обеззараживающие растворы для удаления РНКазы.
   4. Закрепите лезвие на микротоме. Убедитесь, что угол зазора установлен на 10°.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Всегда используйте новые лезвия для резки.
   5. Приготовьте два ведра льда.
   6. Возьмите пинцет, щетки и зонды, распылите на них обеззараживающие растворы для удаления РНКаз и поместите их в одно из двух ведер со льдом.
   7. Приготовьте ледяную баню, добавив в другое ведро со льдом двойную дистиллированную воду.
      ПРИМЕЧАНИЕ: блок FFPE не должен плавать в добавляемой воде; Поэтому количество добавленной воды в ведро со льдом должно быть достаточным для того, чтобы образец был влажным, не всплывая.
2. Секционирование
   1. Извлеките блок FFPE из хранилища при температуре 4 °C и поместите его на микротом. Установите команду на Обрезать или на 14 μм толщины прокрутки и начните обрезать образец до тех пор, пока ткань не обнажится.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Если блок FFPE уже был обрезан и ткань уже обнажена, пропустите шаг 2.2.1. Убедитесь, что в блоке нет отверстий и трещин. Если это так, переходите непосредственно к шагу 2.2.2. Если нет, разрежьте несколько участков, чтобы выровнять поверхность и избежать отверстий и трещин, а затем перейдите к шагу 2.2.2.
   2. Поместите блок FFPE на ледяную баню, чтобы увлажнить образец. Время гидратации необходимо определить опытным путем.
      1. Начните с 2 минут и увеличьте время, если гидратации недостаточно. Не превышайте 10 минут. Увлажнение расширит ткани и уменьшит образование «венецианских жалюзи» и линий. Более длительное время гидратации может привести к появлению трещин в парафиновом блоке и, возможно, отслоению тканей.
      2. Если 10 минут недостаточно для гидратации образца, то выполните циклы гидратации не дольше 10 минут и повторите попытку срезов.
      3. Если поверхность блока не является гладкой и чистой из-за трещин или порезов, рассмотрите возможность повторного встраивания образца. Процесс повторного встраивания не повлияет на качество РНК.
   3. Поместите образец в зажим для образцов микротома, совместите его с лезвием и начните секционирование. Установите толщину шнека на 5 мкм.
   4. Соберите срез и поместите его на водяную баню при температуре 42 °C с помощью холодного пинцета и щеток.
      ПРИМЕЧАНИЕ: В качестве альтернативы, если будет выполняться выделение РНК срезов тканей, соберите срезы в центрифужную пробирку и следуйте производственным спецификациям для получения РНК (см. Таблицу материалов).
   5. Инкубируйте участок на водяной бане, чтобы растянуть ткани и устранить любые остаточные морщины и складки.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Время плавания в водяной бане для каждой секции должно быть определено экспериментально. Подумайте о том, чтобы оставить участки кости на дополнительную минуту, если возникают проблемы с отслоением тканей. Не оставляйте участок плавающим слишком долго, так как длительное время плавания может повредить ткань.
   6. Поместите секцию на предметное стекло, затем инкубируйте ее в течение 3 часов при температуре 42 °C.
   7. Поместите предметное стекло в эксикатор или духовку на ночь при RT для правильной сушки.
   8. Храните предметное стекло с прикрепленной секцией в RT в коробке для слайдов.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Слайды могут храниться в RT в течение многих лет. Если будет проводиться пространственная транскриптомия, вместо предметного стекла поместите участок на предметное стекло для пространственной экспрессии генов, предоставленное производителем, и следуйте приведенным рекомендациям (см. Таблицу материалов).

Results

Представленный здесь метод описывает, как обрабатывать свежевыделенные кости для получения деминерализованных образцов FFPE, которые можно легко разрезать с помощью микротома с сохранением целостности РНК (рис. 1). Этот метод был успешно применен на бедренных костях мышей, но может быть применен и к другим образцам костной ткани аналогичных размеров, или он может быть адаптирован для более крупных образцов кости (например, человеческих образцов) путем увеличения всех параметров (время, объемы растворов и т. д.).

Рисунок 1: Схематическое изображение протокола. Принципиальная схема метода получения FFPE-блоков декальцинированных костных тканей с сохраненной целостностью РНК (точки 1 и 2). Принципиальная схема методических указаний по разделу блоков FFPE (пункт 3). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

Чтобы проверить правильное время декальцинации, был проведен временной курс, в котором сравнивались недекальцинированные бедренные кости, бедренные кости, декальцинированные в течение 3 ч (для которых ЭДТА менялась каждые 30 мин в общей сложности 6 раз) и бедренные кости, декальцинированные в течение 24 ч (для которых ЭДТА менялась каждые 30 мин в общей сложности 10 раз, а затем оставлялись в ЭДТА на ночь) (Рисунок 2). Затем полученные блоки FFPE были срезаны в соответствии с вышеуказанными рекомендациями, а также проверено гистологическое качество и целостность РНК полученных срезов. Для этого структурную целостность и морфологию участков ткани оценивали с помощью окрашивания гематоксилином и эозином (H&E) с последующим микроскопическим контролем (рис. 2A,C,E), в то время как качество РНК оценивали путем оценки значения распределения фрагментов РНК с размером более 200 нуклеотидов (200 нт) (известное как оценка DV200)⁴ (рис. 2B, D,F). Снимки H&E показали, что недекальцинированные и декальцинированные участки бедренной кости через 3 часа имели несколько переломов, отверстий и повреждений (Рисунок 2A, C), в то время как участки бедренных костей, декальцинированные в течение 24 часов, показали хорошее гистологическое качество (Рисунок 2E). Все образцы показали баллы DV200 выше 50%, что считается минимальным значением для проведения scRNA-seq или пространственного транскриптомного анализа⁴. Более длительное время инкубации с ежедневными изменениями ЭДТА при 4 °C и более мягким перемешиванием в меньших контейнерах также было протестировано и не рекомендуется, поскольку при использовании этих условий целостность РНК образцов резко снижается (рис. 2H). Таким образом, время инкубации было уменьшено до 24 часов, а частота, перемешивание и объемы декальцинации были увеличены для усиления декальцинации.

Рисунок 2. Контроль качества (КК) срезов и целостности РНК бедренных костей 8-недельных мышей после декальциноза. Бедренные кости 8-недельных мышей были только что препарированы, зафиксированы и декальцинированы с 20% ЭДТА pH 8,0. в разные моменты времени, погружаются в парафин описанным методом и секционируются в соответствии с приведенными рекомендациями. Затем гистологический контроль качества полученных срезов проводили с помощью H&E окрашивания, а целостность РНК оценивали путем оценки значения распределения фрагментов РНК с размером более 200 нуклеотидов (200 нт) (DV200). (A) Окрашивание H&E, показывающее участки бедренной кости мыши 8-недельной давности после отсутствия декальцинации. На правом изображении показано большее увеличение прямоугольной области. (B) РНК QC участков бедренной кости мыши 8-недельного возраста после отсутствия декальцинации. (C) Окрашивание H&E, показывающее срезы бедренной кости мыши 8-недельной давности через 3 ч после декальцинации. На правом изображении показано большее увеличение прямоугольной области. (D) Контроль качества РНК участков бедренной кости мыши 8-недельного возраста через 3 ч после декальциноза. (E) Окрашивание H&E, показывающее срезы бедренной кости мыши 8-недельной давности через 24 ч после декальцинации. На правом изображении показано большее увеличение прямоугольной области. (F) Контроль качества РНК участков бедренной кости мыши 8-недельного возраста после 24 ч декальцинации. (G) Окрашивание H&E, показывающее срезы бедренной кости мыши 8-недельной давности после 72 ч декальцинации. На правом изображении показано большее увеличение прямоугольной области. (H) РНК QC участков бедренной кости мыши 8-недельного возраста после 72 ч декальцинации. Сокращения: H&E = гематоксилин и эозин; DV200 (%) = % от значения распределения фрагментов > 200 нт; nt = нуклеотиды. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

Чтобы проверить эффективность представленных рекомендаций по работе с недеминерализованными образцами FFPE, были собраны блоки FFPE недеминерализованной первичной остеосаркомы человека и метастазов остеосаркомы легких, полученные из нашего Реестра опухолей онкологии опорно-двигательного аппарата и банка тканей (MOTOR), а также проведен пространственный транскриптомный анализ (Рисунок 3). Прежде чем приступить к пространственному транскриптомному анализу, блоки FFPE были повторно погружены в парафин для получения гладкой исходной поверхности. Затем оценивали РНК и гистологическое качество срезов (данные не приводились). Этапы гидратации были решающими, поскольку первичные образцы остеосаркомы не могли быть разделены без надлежащей гидратации. Напротив, метастазы в легких не требовали каких-либо этапов гидратации. После среза ткани помещали на предметное стекло с пространственной транскриптомией (рис. 3A), окрашивали H&E (рис. 3D) и проводили пространственный транскриптомный анализ в соответствии со спецификациями производителя (см. таблицу материалов). Полученные библиотеки кДНК секвенировали, а обработанные данные визуализировали с помощью Space Ranger для контроля качества⁵ (рис. 3B). Результаты Space Ranger показали очень высокие баллы (почти 100%) по действительным штрих-кодам, действительным уникальным молекулярным идентификаторам (UMI), основаниям Q30 и медиане обнаруженных генов на пятно (от 1700 до 5000), демонстрируя надежность и надежность полученных данных (рис. 3B). С помощью несмещенного кластерного анализа на основе графов было выделено 12 основных кластеров, включая кластеры остеогенных, иммунных, эпителиальных и эндотелиальных клеток, а также адипоцитов (рис. 3E). Следует отметить, что границы кластеров перекрывались с краями гистологических областей, идентифицированных патологоанатомом (рис. 3D). Дополнительные срезы тех же образцов также были окрашены трихромом Гольднера для визуализации минерализованных областей (рис. 3C).

Рисунок 3. Пространственный транскриптомный анализ двух пар недекальцинированной первичной остеосаркомы (ОВ) и метастазов в легкие. Блоки FFPE двух подходящих пар недеминерализованной первичной остеосаркомы человека и метастазов в легкие были собраны из нашего банка тканей MOTOR. Образцы были разделены в соответствии с представленными рекомендациями и помещены на предметное стекло Visium Spatial Gene Expression для образцов FFPE для проведения пространственного транскриптомного анализа. (A) Слайд Visium Spatial Gene Expression для образцов FFPE с прилагаемыми разделами. (B) Выходные данные Space Ranger с указанием общих параметров, используемых для оценки качества полученных данных по всем образцам. (В) Трихромное окрашивание по Гольднеру, показывающее локализацию минерализованных костных тканей и остеоида. (D) Пятно H&E с аннотацией патологоанатома. (E) Кластерный анализ, показывающий локализацию популяций клеток, проживающих в тканях. Сокращения: FFPE = формалин-фиксированный и парафин-инфильтрованный; MOC = злокачественные остеогенные клетки. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

Discussion

В данном случае подробно описан способ получения блоков FFPE из декальцинированных костей и сохранения целостности РНК для секвенирования (т.е. секвенирования нового поколения (NGS)) или для других методов, связанных с РНК (т.е. гибридизация in situ , количественная полимеразная цепная реакция с обратной транскрипцией (qRT-PCR) и т.д.).

Метод использует ЭДТА для декальцификации образцов костной ткани; Инкубация ЭДТА позволяет проводить медленную, но тонкую деминерализацию образцов, тем самым сохраняя гистологические особенности ткани в лучшем состоянии. Обычно декальцинация костей проводится с использованием 10% ЭДТА pH 7,0 в течение не менее 2 недель путем освежения раствора через день⁴. Длительное время декальцинации, однако, в значительной степени способствует деградации РНК ^6,7,8. Чтобы преодолеть эту проблему, концентрацию ЭДТА увеличили до 20%, рН повысили до 8,0, а частоту замены раствора увеличили до каждые 30 минут. Эти условия, в сочетании с большим количеством раствора, воздействию которого подвергается ткань, энергичным перемешиванием и высоким соотношением объема контейнера к ткани, максимизируют декальцификацию и сокращают время лечения, что позволяет проводить щадящую, но быструю деминерализацию. Следует отметить, что при использовании образцов костной ткани для секвенирования транскриптома может не потребоваться их полная декальцинация. В этом случае следует найти оптимальную пропорцию между достаточной деминерализацией и хорошей сохранностью РНК. Еще одна важная вещь, о которой следует упомянуть, заключается в том, что независимо от того, как обрабатываются образцы, если они были зафиксированы, их РНК будет фрагментирована. Описанный здесь метод позволяет удерживать фрагменты РНК с размером более 200 нуклеотидов (%DV200) (рис. 2F), что указывает на высокое качество РНК ^9,11.

Этот метод имеет определенные ограничения. Во-первых, поскольку мыши были единственным источником образцов костной ткани, метод был валидирован только на мышиных костях, которые относительно невелики. Более того, неизвестно, можно ли использовать этот метод для мышей старше или младше 8 недель, поскольку он был протестирован только на 8-недельных мышах. Мы выбрали 8-недельных мышей, потому что они скелетно зрелые. Поскольку старение изменяет содержание минералов в костях, может потребоваться внести изменения в этот подход.

Кроме того, сообщается, что рекомендации помогают улучшить качество срезов тканей при использовании образцов FFPE небольших образцов недекальцинированной кости, например, когда они собираются непосредственно из банков тканей. В таких ситуациях ничего нельзя сделать, если РНК деградирует, но качество среза можно улучшить. С другой стороны, для образцов с хорошим содержанием РНК, таких как показанные здесь, пространственный транскриптомный анализ возможен при соблюдении предоставленных рекомендаций. Следует отметить, что в образцах с первичной остеосаркомой костная структура может быть изменена из-за присутствия опухолевой массы, что делает фактические образцы более слабыми и ломкими, что может облегчить разрезание. Таким образом, для оценки того, так ли это, было использовано трихромное окрашивание Голднера, поскольку минерализованные и неминерализованные участки могут быть идентифицированы с помощью этого метода окрашивания (Рисунок 3C).

В заключение следует отметить, что представленный метод представляет собой легко применимый метод декальцинации образцов костной ткани и получения срезов FFPE, которые могут быть эффективно использованы для NGS или других методов, требующих целостности РНК. Кроме того, приведены рекомендации по секционированию образцов, которые могли не быть деминерализованы до заделки парафина, например, образцов, полученных из банков тканей. Учитывая быстрое развитие пространственного транскриптомного анализа, предложенный метод и рекомендации могут быть очень полезны в исследованиях костей в целом и в исследованиях рака костей в том числе.

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
Усовершенствованный орбитальный шейкер	VWR	76683-470	Используйте для поддержания тканей в состоянии перемешивания во время инкубации, как указано в инструкции к методу.
Щетки из верблюжьей шерсти	Ted Pella	11859	Используйте для обработки секций FFPE, как указано в руководстве.
Набор с двойным индексом TS Set A 96 rxns	10X Genomics	PN-1000251	Используйте для выполнения пространственной транскриптомики.
Ethanol 200 Proof	Decon Labs Inc	2701	Используйте для проведения обезвоживания тканей, как указано в инструкции к методу.
Этилендиаминтетрауксусная кислота, дигидрат соли динатрия (ЭДТА)	Thermo Fisher Scientific	S312-500	Используйте для приготовления ЭДТА 20% pH 8,0.
Fisherbrand Изогнутые щипцы общего назначения Fisherbrand Mid Point	Fisher Scientific	16-100-110	Используйте для обработки секций FFPE, как указано в руководстве.
Fisherbrand Fine Precision Probe	Fisher Scientific	12-000-153	Используйте для обработки секций FFPE, как указано в руководстве.
Fisherbrand  Superfrost Plus Предметные стекла для микроскопа	Fisher Scientific	12-550-15	Используйте для прикрепления свитков с разделами, как указано в рекомендациях.
Высокопрофильные алмазные лезвия для микротомов	CL Sturkey	D554DD	Используйте для секционирования блоков FFPE, как указано в руководстве.
Novaseq 150PE	Novogene	N/A	секвенсор.
Параформальдегид (PFA) 32% водный раствор класса EM Электронная	микроскопия Sciences	15714-S	Разбавить до конечной концентрации 4% с 1x PBS  для выполнения фиксации тканей.
Фосфатно-солевой буфер (PBS)	Thermo Fisher Scientific	10010-049	Готовый продукт. Используйте для разбавления PFA и выполнения стирок, как указано в инструкции к методу.
Премьер Тканевая Плавающая Ванна	Fisher Scientific	A84600061	Используйте для удаления морщин на срезах FFPE, как указано в рекомендациях.
RNase AWAY Обеззараживающее средство для поверхностей	Thermo Fisher Scientific	7002	Используйте для очистки всех поверхностей, как указано в инструкции к методу.
RNeasy DSP FFPE Kit	Qiagen	73604	Используйте для выделения РНК из секций FFPE после их генерации, как указано в рекомендациях.
Полуавтоматический ротационный микротом	Leica Biosystems	RM2245	Используйте для секционирования блоков FFPE, как указано в руководстве.
Гидроксид натрия	Millipore Sigma	S8045-500	Приготовить 10 Н раствор путем медленного растворения 400 г в 1 л воды Milli-Q.
Space Ranger	10X Genomics	2.0.1	Используется для обработки данных секвенирования на выходе .
Surgipath Paraplast	Leica Biosystems	39601006	использовать для выполнения инфлилтации и встраивания тканей, как указано в инструкции к методу.
Visium Accessory Kit	10X Genomics	PN-1000194	Используется для проведения пространственных транскриптомных экспериментов.
Набор транскриптомных зондов человека Visium Small	10X Genomics	PN-1000363	Используется для проведения пространственных транскриптомных экспериментов.
Visium Набор слайдов для пространственной экспрессии генов 4 rxns	10X Genomics	PN-1000188	Используйте для размещения секций при проведении пространственных транскриптомных экспериментов.
Xylene	Leica Biosystems	3803665	использовать для очистки тканей, как указано в инструкции по методу.