Методическая статья

Модель правостороннего ремоделирования сердца и аритмии на крысах с использованием бандажирования легочной артерии

2K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/67001

⸱

30 августа 2024 г.

 ,  ,  ,  ,  , 
1Montreal Heart Institute, 2Department of Pharmacology and Physiology, Université de Montréal, 3Department of Medicine, Faculty of Medicine, Université de Montréal

В этой статье

Краткое содержание

Правосторонняя сердечная недостаточность (ЗСН) характеризуется правосторонней дилатацией сердца и гипертрофией, приводящей к желудочковой и предсердной недостаточности. Сердечно-легочные заболевания, связанные с РГЛ, сопровождаются повышенным риском развития сердечной аритмии. В данной статье описана стандартизированная модель индуцированной бандажированием легочной артерии РГЛ, связанной с усилением желудочкового и предсердного аритмогенеза.

Аннотация

Клинические состояния, включая хроническую обструктивную болезнь легких или легочную артериальную гипертензию (ЛАГ), могут привести к хронической перегрузке правого желудочка и прогрессирующей правосторонней сердечной недостаточности (РГЛ). РГЛ может быть идентифицирована по правосторонней гипертрофии сердца и дилатации, связанной с аномальной функцией миокарда, затрагивающей ПЖ и правое предсердие (РА). Недавно мы продемонстрировали, что тяжелая форма РГЛ сопровождается повышенным риском воспаления предсердий, фиброза предсердий и фибрилляции предсердий (ФП), наиболее распространенного типа сердечной аритмии (КА). Недавние исследования показали, что воспаление ПЖ и РА играет важную роль в аритмогенезе КА, включая ФП. Однако влияние воспаления на развитие КА и ФП при РГЛ описано слабо.

Экспериментальные модели РГЛ необходимы для лучшего понимания связи между правосторонним воспалением миокарда и КА. Хорошо известно, что модель легочной гипертензии (ЛГ), индуцированной монокроталином (МСТ), провоцирует РЗН на крысах. Тем не менее, MCT вызывает тяжелую пневмотоксичность и воспаление легких. Следовательно, MCT-индуцированный RHF не помогает различить, происходит ли последующее воспаление миокарда от RHF как такового или от циркулирующих воспалительных сигналов, секретируемых поврежденным легким.

В данной статье был использован механический метод с использованием бандажирования ствола легочной артерии (PAB) для провоцирования правостороннего аритмогенеза сердца. PAB заключается в выполнении постоянного шва ствола легочной артерии в течение 3 недель. Такой подход создает повышенную перегрузку по давлению в правой части. При D21 после PAB наложение шва приводит к гипертрофированию, расширению и воспалению ПЖ и РА. ПАБ-индуцированная РГЛ также сопровождается уязвимостью к желудочковым и предсердным аритмиям, включая ФП.

Введение

Правосторонняя сердечная недостаточность (ПСН) характеризуется гипертрофией и расширением правых желудочков (ПЖ) и предсердий (РА), что приводит к правосторонней сердечной недостаточности в ответ на хроническую перегрузку давлением ПЖ из-за сужения легочных артерий (ПА)1. Следовательно, условия, провоцирующие сужение ПА, могут быть ответственны за повышенный риск RHF 1,2,3,4. Клинические данные показали, что РГЛ является основной причиной госпитализации (56%) у пациентов с артериальной гипертензией (ЛАГ)2. Клинические исследования показали, что независимо от причины ЛАГ, включая тромбоэмболическую легочную гипертензию (ЛГ) и идиопатическую ЛАГ, пациенты часто страдают РГЛ и на 20% более восприимчивы к развитию сердечных аритмий, включая наджелудочковые тахиаритмии и фибрилляцию предсердий (ФП)2,5,6.

Чтобы лучше понять связь между ЛАГ и РГЛ, были использованы исследования на животных, в том числе модель однократной дозы монокроталина (МСТ), чтобы спровоцировать тяжелое воспаление легких и РГЛ 7,8. Недавно мы заметили, что MCT-индуцированная RHF была связана с воспалением РА и ФП9. Тем не менее, из-за важности MCT-индуцированного воспаления легких и циркулирующих цитокинов, было трудно описать, является ли MCT-индуцированное воспаление РА следствием только RHF9. Следовательно, для изучения воспалительного статуса РА потребовалась новая модель RHF-индуцированной сердечной аритмии.

Экспериментальная модель бандажирования туловища PA (PAB) использовалась у различных видов животных для имитации обструктивных заболеваний PA и изучения связанного с ними патологического ремоделирования сердца, поражающего правую сторону сердца10. Сообщалось о том, что PAB является эффективным методом индуцирования дисфункции и неудачи правой ПЖ в различных исследованиях, имитирующих перегрузку ПЖ 10,11,12,13,14,15,16. Технически ПАБ представляет собой наложение постоянного шва на ствол ПА, провоцирующий механическое уменьшение диаметра ствола ПА10. PAB создает повышенное давление перегрузки для RV10. Во-первых, в качестве компенсаторной адаптации к резкому увеличению постнагрузки ПЖ, полость ПЖ расширяется, что приводит к хронической гипертрофии ПЖ10,13. Дилатация и гипертрофия ПЖ влияют на трехстворчатые клапаны, которые становятся негерметичными13. Точнее, выраженная дилатация ПЖ в сочетании с высокой постнагрузкой ПЖ приводит к растяжению кольца трикуспидального клапана, расположенного между ПЖ и ПЖ13,17. Из-за неполной окклюзии клапана часть крови, выбрасываемой из ПЖ во время систолы, будет направлена в сторону полостиРА 17. Утечка трикуспидального клапана может наблюдаться с помощью эхокардиографии и называется трикуспидальной регургитацией17. Затем РА получает неадекватно высокое кровяное давление, что способствует увеличению дилатации РА и гипертрофии13. Хроническое ремоделирование ПЖ и РА сопровождается местными воспалительными реакциями миокарда, приводящими к фиброзу ПЖ и РА и потере функции 9,13. Сердечный фиброз характеризуется развитием зон низкого напряжения, которые являются менее сократительными и более восприимчивыми к провоцированию блокады проводимости и обратному входу в цепи, участвующие в развитии сердечных аритмий, включая фибрилляцию желудочков и ФП18,19.

Оригинальность данной работы заключается в использовании стандартизированного метода ПАБ-индуцированного правостороннего ремоделирования сердца для провоцирования и изучения индуцируемости сердечных аритмий через 3 недели после ПАБ. Основными преимуществами данного хирургического подхода являются: i) прямой контроль над уменьшением диаметра ствола PA и ii) избежание воспаления легких с целью сосредоточения внимания на RHF-индуцированном воспалении миокарда для изучения сердечных аритмий, включая ФП.

Описанный здесь подход включает в себя точную микрохирургическую процедуру для создания PAB, оценку повышенной постнагрузки RV, эхокардиографию для наблюдения за PAB-индуцированным структурным и функциональным ремоделированием миокарда, а также электрофизиологическое исследование для оценки уязвимости к сердечным аритмиям, включая ФП.

Протокол

Все описанные ниже процедуры были одобрены комитетом по этике Монреальского института сердца (номера протоколов: 2021-2938-2021-47-01 и 2024-3412-2024-48-01) и строго соответствовали рекомендациям Канадского совета по уходу за животными (CCAC). Для проведения процедур использовались самцы крыс линии Вистар (225-275 г) в возрасте 6-8 недель. Все животные были размещены в учреждении по уходу за животными Монреальского института сердца, со свободным доступом к воде и пище.

1. Предоперационная подготовка

  1. Стерилизуйте все хирургические инструменты и материалы перед операцией с помощью автоклава насыщенного пара под высоким давлением при температуре от 121 °C до 134 °C при давлении 15-30 фунтов на квадратный дюйм в течение 30-40 минут с последующим циклом сушки в течение 25 минут.
  2. Подготовьте все объемы препаратов, необходимых для проведения операции. Используйте мультимодальный анальгетический подход, включающий бупренорфин (0,05 мг/кг) и кетопрофен (5 мг/кг), вводимые подкожно за 30 минут до операции и повторяющиеся через 6 ч (бупренорфин) и через 24 ч после операции (бупренорфин и кетопрофен). Кроме того, проводят местную анальгезию в месте разреза (лидокаин 5 мг/мл).
  3. Перед операцией проведите базовую трансторакальную эхокардиографию (см. подробную процедуру трансторакальной эхокардиографии в шагах 6.1-6.13.), чтобы определить диаметр PA и выбрать подходящую измерительную иглу, которая будет использоваться в качестве проводника для получения ожидаемого снижения диаметра PAB на 60%.
    ПРИМЕЧАНИЕ: В данной работе использовались самцы крыс Wistar весом 225-275 г, и использование иглы 19 G было целесообразным для получения такого 60% уменьшения диаметра PA.
  4. Подготовьте иглу 19 G (или соответствующего калибра, как определено в шаге 1.3), которая будет использоваться в качестве проводника (см. ниже: шаги 4.18 и 4.19), чтобы получить оптимальное сужение ствола ПА, провоцирующее серьезное ремоделирование сердца крысы. С помощью щипцов согните 19 G на 90-110° (рисунок 1A).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Изгиб 19 G облегчает: i) расположение рядом с туловищем PA и ii) наложение лигирования во время процедуры. 19 G используется в качестве провода, вокруг которого будет установлен шов для уменьшения диаметра ПА до 1,0 мм (снижение на 60 % для крыс весом 225-275 г), что вызывает значительную перегрузку давлением ПЖ, ответственную за тяжелое ремоделирование ПЖ за 3 недели.

2. Индукция анестезии и подготовка животных

Примечание: Анализы проводились на самцах крыс линии Вистар (225-275 г) в возрасте 6-8 недель. Используйте грелку во время всех этапов следующих процедур, чтобы поддерживать температуру тела животного около 37 °C. Наложите ректальный зонд для контроля температуры тела.

  1. Обезболивают животное непрерывно вдыхаемым изофлураном 3% и 100% кислородом 2-3 л/мин.
  2. Нанесите смазывающий гель для глаз, чтобы защитить роговицу от высыхания.
  3. Проверьте уровень анестезии с помощью зажимного рефлекса на пальце ноги.

3. Интубация

ПРИМЕЧАНИЕ: Интубация была выполнена в соответствии с описанием ранее20.

  1. Переведите животное на наклонную станцию интубации в лежачем положении на спине. Держите крысу за верхние резцы с помощью петли из нити, чтобы удерживать тело в подвешенном положении под углом 45° для получения лучшей визуализации горла.
  2. Направьте гибкий источник света на поверхность горлышка, чтобы он просвечивал через глоточную область.
  3. Вытяните язык с помощью ватной палочки и стабилизируйте его на верхней челюсти изогнутым весовым шпателем в качестве депрессора языка.
  4. Визуализируйте трахею и голосовые связки.
  5. Используйте ангиокатетер 16 G для проведения интубации. Используйте катетер в качестве трахеальной трубки и притупите иглу со скошенным концом, чтобы использовать ее в качестве проводника.
  6. Введите эндотрахеальную трубку (ангиокатетер 16 G), установленную на интродьюсере (игле со скошенным концом) в трахею, и после установки извлеките проводник (Рисунок 1B).
  7. Подтвердите правильное положение трубки, наблюдая за нормальным ритмом дыхания (около 80 вдохов/мин для крыс весом 225 г и около 70 вдохов/мин для крыс весом 275 г) и наличием тумана на поверхности металлического шпателя (или маленького зеркала) при размещении на фланце ступицы канюли.
  8. После правильной интубации быстро переведите животное на хирургическую станцию лежа на гомеотермической грелке.
  9. Отрегулируйте дыхательный объем и скорость работы аппарата ИВЛ в соответствии с массой тела крысы. Крысы в возрасте около 225-275 г получают дыхательный объем 2,0-2,5 мл и 70-80 вдохов/мин с помощью аппарата искусственной вентиляции легких.
  10. Подключите эндотрахеальную трубку к аппарату искусственной вентиляции легких, чтобы начать искусственную вентиляцию легких. Поместите выпускной наконечник вентилятора в водяной цилиндр. Пузырьки воздуха, выходящие из оттока после каждого вдоха, свидетельствуют об успешной интубации.
  11. Как только установится устойчивое дыхание, закрепите эндотрахеальную трубку хирургической лентой и зафиксируйте ректальный зонд вдоль хвоста для контроля температуры тела.

figure-protocol-1
Рисунок 1: Основные инструменты, необходимые для подготовки микрохирургической процедуры PAB. (A) Модифицированная игла 19 G, используемая в качестве отведения, для получения диаметра ствола PAB диаметром 1 мм после PAB. (Б) Использование эндотрахеальных инструментов или успешная интубация крыс. 1. Шпатель используется в качестве депрессора языка у крыс под наркозом для обнажения трахеи. 2. Катетер 16G действует как эндотрахеальная трубка после притупления кончика его стилуса. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

4. Хирургия PAB (Рисунок 2)

ПРИМЕЧАНИЕ: Все процедуры должны выполняться в соответствии со строгими методами асептической хирургии.

  1. Побрейте левую сторону грудной клетки с помощью машинки для стрижки и крема для депиляции и подготовьте кожу с помощью аппликаций 2% хлоргексидина с последующим нанесением 70% спиртовых скрабов (повторите три раза).
  2. Иммобилизуйте передние конечности в открытом положении медицинской лентой, стараясь не перенапрягать конечности, чтобы не нарушить дыхание.
  3. Правую заднюю конечность потяните немного вниз и зафиксируйте ее вдоль хвоста.
  4. Вытяните и приведите левую заднюю конечность и прикрепите ее к правой стороне животного, чтобы создать небольшое правое боковое положение, обнажая левую сторону грудной клетки.
  5. Используйте стерильные перчатки на этом этапе для оставшейся части операции.
  6. Наложите на животное стерильную простыню и сделайте разрез кожи длиной 2-3 см с левой стороны грудной клетки, начиная примерно на 2 см выше мечевидного отростка и ориентированный по диагонали к основанию левой передней конечности крысы.
  7. Под кожей разделите впоследствии грудные мышцы (малую и большую) и отодвиньте их в сторону путем тупого рассечения с помощью ножниц с круглым кончиком. Используйте магнитные втягивающие устройства для удержания мышц, чтобы обеспечить правильную визуализацию грудной клетки, расположенной под ними.
  8. Раздуйте легкие, сняв отводящую трубку (подключенную к аппарату искусственной вентиляции легких) из водяного баллона (см. шаг 3.10). Удаление выпускной трубки из воды снижает давление в легких, что приводит к раздуванию долей.
  9. Выполните левостороннюю торакотомию с помощью изогнутых рассекающих щипцов. Проткните небольшое отверстие в среднеключичной линии мышцы, расположенной между3-м и4-м ребрами.
  10. Введите изогнутые щипцы в отверстие и проведите им вдоль левой внутренней стенки мышцы между двумя ребрами, чтобы немного приподнять левую грудную стенку и избежать касания легких при разрезании мышцы.
  11. Используйте введенные щипцы в качестве ориентира и сделайте разрез продольно к ребрам примерно на 1 см с помощью ножниц по радужной оболочке. Держите левую грудную стенку приподнятой и осторожно манипулируйте ножницами, чтобы не повредить доли левого легкого непосредственно под ней.
  12. Разверните межреберный разрез на 1-2 см слева от животного с помощью ножниц с круглым концом.
  13. Переместите ретракторы под ребра, чтобы рана оставалась открытой.
  14. Осмотрите нижнюю часть тимуса и часть левой доли легкого.
  15. Отодвиньте вилочковую железу и легкие на этом уровне, учитывая значительное пространство, занимаемое этими органами. Отделите доли тимуса с помощью тупого рассечения щипцами и удерживайте легкое с левой стороны с помощью влажной марли. Затем обнажите верхнюю часть сердца, левое предсердие (ЛП), а также легочный ствол и дугу аорты.
  16. Осторожно рассеките тонкий слой перикарда, покрывающего сердце в этой области, вместе с любой прикрепленной жировой тканью, чтобы помочь найти часть, где аорта и легочный ствол все еще прикреплены. Минимально рассекайте перикард и избегайте прикосновения к плевральной мембране.
  17. Вставьте изогнутые щипцы в закрытом положении в пространство между придатком LA и легочным стволом, в середине видимой части сосуда, чтобы добраться до другой стороны сосуда (рис. 2A).
    ВНИМАНИЕ: Избегайте работы слишком близко к корню аорты сердца, чтобы предотвратить риск разрыва сосуда и кровоизлияния.
  18. Визуализируйте кончик щипцов через соединительную оболочку краниально к легочному стволу. С помощью вторых щипцов рассеките кончик и осторожно проткните мембрану, чтобы создать небольшое отверстие. Затем изогнутые щипцы, расположенные под легочным стволом, слегка приоткрываются, чтобы захватить шелковую нить 5-0. Втяните щипцы, чтобы провести нить с одной стороны на другую легочного ствола (рисунок 2В, В).
  19. Выполняют сужение легочного ствола. Во-первых, потренируйтесь в свободном двойном узле 5-0 Silk рядом с артерией. Введите иглу 19 G вдоль сосуда и под нитку. Затяните этот первый узел и зафиксируйте его вторым простым узлом, прежде чем снять 19 G (Рисунок 2D).
    ВНИМАНИЕ: Работайте быстро и осторожно, чтобы свести к минимуму продолжительность полной обструкции легочного ствола.
  20. Заведите последний простой узел и обрежьте оставшуюся шелковую нить 5-0 примерно в 0,5-1 см от узла (Рисунок 2D).
  21. Переместите доли тимуса и удалите ретракторы грудной клетки.
  22. Повторно накачайте легкие, отщипнув отток аппарата ИВЛ на 2 с.
  23. Закройте грудную клетку, выполнив схему вышивки крестом с синтетической рассасывающейся нитью 5-0.
  24. Нанесите несколько капель 0,9% физиологического раствора на область раны и сожмите каждую сторону грудной стенки, чтобы удалить пузырьки воздуха и восстановить отрицательное давление в грудной клетке.
  25. Переместите грудные мышцы и сотрите оставшийся физиологический раствор стерильной марлей.
  26. С помощью шприца нанесите блок лидокаина на поверхность и вокруг раны.
  27. Закройте кожу с помощью синтетической рассасывающейся нити 5-0 с иглой в непрерывном подкожном узоре.
    Примечание: Фиктивные крысы получают ту же процедуру без шагов 4.18 и 4.19.

figure-protocol-2
Иллюстрация 2: Процедура PAB и валидация шелкового шовного материала 5.0 по сравнению с металлическими зажимами. Фотосъемка поэтапной изоляции и лигирования ствола ПА, показывающая: (А) экспозицию и изоляцию ствола ПА, (Б) наложение шва (шелк 5,0) вокруг ствола ПА, (В) лигирование ПА (ПАБ) (с использованием иглы 19 G в качестве провода); (D) проверка движения сердца и перегрузки PA-корня и ПЖ после PAB; (E) сравнение PAB, выполненного с помощью шелкового шва, с металлическим зажимом; и (F) валидация выбора шелкового шовного материала для PAB для создания более воспроизводимого диаметра 1 мм вокруг ствола PAB. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

5. Послеоперационное восстановление

  1. Удаляйте изофлуран, поддерживая крысу на искусственной вентиляции легких только с подачей кислорода. Переверните крысу на правый бок или на брюшной лад, чтобы облегчить дыхание.
  2. Введите объем 0,9% физиологического раствора подкожно в дорсальную область шеи для ускорения восстановления жидкости (в расчете на 10 мл/кг/ч анестезии).
  3. Как только автономное дыхание подтвердится, плавно удалите эндотрахеальную трубку.
  4. Понаблюдайте, когда крыса начнет двигаться самостоятельно, и переложите животное с грелки в новую стерильную клетку для восстановления. Обеспечьте водой и влажным кормом в неограниченном количестве.
  5. В послеоперационный период (4-6 ч) поместите клетку на грелку (половину клетки), чтобы поддерживать температуру тела, и внимательно следите за животным.
  6. Своевременно устраняйте любые признаки боли, затрудненного дыхания или ненормального поведения.
  7. В послеоперационном уходе, через 6 ч после операции, введите вторую дозу 0,05 мг/кг бупренорфина. На следующий день, через 24 ч после операции, введите третью дозу 0,05 мг/кг бупренорфина и вторую дозу 5 мг/кг кетопрофена.
  8. Следите за крысами до полного восстановления их здоровья.

6. Трансторакальная эхокардиография

ПРИМЕЧАНИЕ: В данной статье представлены данные, полученные на 21-й день после операции, когда крысам была проведена трансторакальная эхокардиография. Однако, в зависимости от целей исследования и требований к дизайну исследования, исследователи могут определить другие временные точки для трансторакальной эхокардиографии до и после PAB.

  1. Перед операцией проведите базовую трансторакальную эхокардиографию для определения диаметра PA и выбора подходящей измерительной иглы, используемой в качестве отведения, для ожидаемого снижения диаметра PAB на 60%.
    ПРИМЕЧАНИЕ: В этом исследовании использовались самцы крыс Wistar весом 225-275 г, и использование иглы 19 г было целесообразным для получения такого 60% уменьшения диаметра PA.
  2. Взвесьте и обезболите крыс непрерывно вдыхаемым изофлураном (3% и 2 л/мин О2).
  3. Проведите трансторакальную эхокардиографию на каждом животном с использованием секторного/многоэлементного зонда 12S (4,5-11,5 МГц) и системы получения изображений.
  4. Используйте цветовое отображение в двумерном (2D) парастернальном виде по короткой оси, расположив зонд 12S на уровне аортального клапана. Нажмите кнопку «Цветной допплер» на эхоаппарате, чтобы визуализировать характер кровотока, пересекающего область бандажирования легочной артерии (PAB) в легочном стволе.
  5. Выполняйте непрерывную волновую допплерографию (CW) путем пересечения PAB с помощью цветового картирования в двухмерном парастернальном виде короткой оси, чтобы записать свойства кровотока, проходящего через область PAB, включая пиковую скорость (см/с) и средний градиент давления (мм рт.ст.). Для получения допплеровских кривых отрегулируйте объем образца на уровне бандажирования легочной артерии.
  6. Примените 2D апикальный 4-камерный обзор, расположив зонд 12S на уровне верхушки сердца, чтобы продемонстрировать увеличение РА и ПЖ после операции и определить горизонтальный размер РА в конце сердечной систолы (РАД), выраженный в миллиметрах (мм).
  7. Применение цветовой карты в 2D апикальном 4-камерном виде для выявления трикуспидальной регургитации из-за PAB путем получения кинопетель на эхо-аппарате.
  8. Выполнить эхокардиографию в М-режиме в апикальном 4-камерном зрении путем пересечения соединения трикуспидального кольца и латеральной стенки ПЖ для изучения систолической экскурсии на плоскости трикуспидального кольца (TAPSE), выраженной в мм.
  9. Используйте тканевую допплеровскую визуализацию (TDI) в апикальной 4-камерной проекции на уровне соединения трикуспидального кольца и латеральной стенки ПЖ для измерения систолической сократимости (Sr) боковой стенки ПЖ, выраженной в сантиметрах в секунду (см/с), для оценки систолической производительности ПЖ.
  10. Регистрация диастолического транстрикуспидального потока (TTF) с помощью импульсно-волнового допплера в апикальном 4-камерном виде для изучения диастолических свойств ПЖ, включая пиковую скорость в ранней волне наполнения (E), волне наполнения предсердий (A) и отношение E/A в TTF.
  11. Выполните эхокардиографию в режиме М в парастернальной проекции по длинной оси на уровне аортального клапана для измерения выходного тракта ПЖ в конце сердечной диастолы (RVOT, выраженный в миллиметрах) и размера левого предсердия в конце сердечной систолы (ПМЖ, выраженный в миллиметрах).
  12. Выполнение эхокардиографии 2D M-Mode в парастернальной проекции по короткой оси на уровне папиллярных мышц для оценки размеров ЛЖ на конечных участках систолы и диастолы (LVD и LVDd); и толщина передней стенки ЛЖ в конце диастолы (LVAWd), выраженные в миллиметрах.
  13. Выполните 2D M-режим в парастернальном виде по короткой оси, чтобы определить дробное укорачивание LV (LVFS, выраженное в процентах) и фракцию выброса LV (LVEF, выраженное в процентах).

7. Электрофизиологическое исследование (Рисунок 3)

  1. Поддерживайте крыс под анестезией после эхокардиографии in vivo для чреспищеводного электрофизиологического исследования (ЭПС) in vivo .
  2. Вставьте электроды ЭКГ под кожу крыс (1 рядом с левой передней конечностью, 1 рядом с правой задней конечностью и 1 рядом с левой задней конечностью).
  3. Аккуратно введите в пищевод 4F-квадриполярный катетер с межполюсным расстоянием 5 мм (рисунок 3A).
  4. Отрегулируйте положение чреспищеводного катетера рядом с РА, точно определив, когда зубец P, представляющий сокращения предсердий на поверхностной ЭКГ, совпадает с зубцом P, полученным с помощью ЭКГ чреспищеводного катетера (рис. 3A, B).
  5. Определите порог стимуляции для каждого животного. Этот порог представляет собой минимальное напряжение, при котором стимулятор напрямую влияет на частоту сердечных сокращений.
  6. Оцените уязвимость ФП путем применения импульса напряжения, эквивалентного 4-кратному пороговому напряжению, следуя протоколу из 3 наборов по 12 импульсов стимуляции, каждый из которых длится 3 с при частоте 50 Гц, с последующим 2 с отдыха (1 мин/сет). Между каждым подходом у крыс был 1-минутный период отдыха 9,13,21.
  7. Выявляйте и количественно оценивайте после каждого всплеска возникновение сердечных тахиаритмий, включая ФП или трепетание предсердий.
    ПРИМЕЧАНИЕ: ФП определяется как нерегулярное и сверхбыстрое сердцебиение (>800 уд/мин). Трепетание предсердий определяется как регулярный, но быстрый ритм предсердий, связанный с отсутствием зубца P или наличием регулярного паттерна множественных зубцов P между регулярно последовательными интервалами R-R. Учитываются только аритмические эпизоды продолжительностью более 1 с.
  8. Избегайте прерывания текущих эпизодов ФП или трепетания предсердий, прекратив следующий набор стимуляций, если синусовый ритм не восстанавливается самостоятельно в течение периода покоя между двумя последовательными стимуляциями.

figure-protocol-3
Рисунок 3: Иллюстрация сердечных сокращений в состоянии покоя и соответствующего положения чреспищеводного катетера для электрофизиологического исследования in vivo . (A) Репрезентативная ЭКГ двух последовательных сердечных сокращений в состоянии покоя с показом P-зубца, интервала PR, комплекса QRS, интервала QT и интервала R-R. (В) Схема продольного разреза сердца (1) и пищевода (2), в который вводится квадрипольный катетер (3) для стимуляции и получения ЭКГ предсердий. (C) Репрезентативные сигналы ЭКГ, показывающие предпочтительное положение чреспищеводного катетера, когда предсердный сигнал (красная линия) от поверхностной ЭКГ (верхние следы) совпадает с предсердным сигналом катетерной ЭКГ (нижние следы). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

8. Анализ ЭКГ

ПРИМЕЧАНИЕ: Запись и стимуляция ЭКГ проводились с использованием программного обеспечения для сбора ЭКГ. Анализы проводились с использованием программного обеспечения для анализа ЭКГ (рис. 3A).

  1. Измерьте продолжительность зубца P, соответствующего сокращению предсердий, выраженную в миллисекундах (мс).
  2. Определить интервал PR (выраженный в миллисекундах), соответствующий длительности электрической проводимости через атриовентрикулярный (АВ) узел.
  3. Сообщают о длительности комплекса QRS (выраженной в миллисекундах), соответствующей деполяризации желудочков.
  4. Оценивали интервал QT (выраженный в миллисекундах), отражающий общую продолжительность деполяризации и реполяризации желудочков.
  5. Количественно оцените интервал RR (выраженный в миллисекундах), указывающий на продолжительность между двумя последовательными сердечными сокращениями и определяющий частоту сердечных сокращений.

9. Гистологические анализы

  1. Усыпляют крыс методом обескровливания под анестезией изофлураном (5%, 2 л/мин О2) на 21 день после ПАБ.
  2. Изолируйте РА и ЛП для анализа гистологического ремоделирования предсердий, ассоциированного или не связанного с РГЛ и сердечными аритмиями.
  3. Выполните поперечный срез свежеиссеченных сердец, расположенный на расстоянии 5 мм от верхушки, чтобы оценить ремоделирование желудочков, связанное или не связанное с РГЛ и сердечными аритмиями.
  4. Зафиксировать образцы миокарда в формалине и окрашивать гистологические стекла трихромным раствором22 Массона для количественной оценки толщины стенки желудочка и дилатации, а также фиброза предсердий при D21 после PAB.

10. Статистический анализ

  1. Оцените нормальность распределений по критерию Шапиро-Уилка. Сравните нормально распределенные данные с помощью t-критерия Стьюдента.
  2. Если данные имеют непараметрическое распределение, выполните тест Манна-Уитни. Анализируйте категориальные переменные, такие как индуцируемость AF, с помощью точного теста Фишера.
  3. Выразите результаты в виде среднего ± стандартной погрешности к среднему значению (S.E.M.). Учитывайте различия, статистически значимые при двустороннем значении P < 0,05.

Результаты

Визуальное подтверждение соответствующей перевязки ствола ПА во время операции
Во время процедуры PAB признаком правильного расположения шва является немедленное повышение артериального давления и быстрое расширение RV и корня PA-ствола в месте соединения с RV. Шов не должен двигаться, чтобы обеспечить постоянную и постоянную перегрузку давлением в течение 3 недель. В этом исследовании использование шелка 5-0 было подтверждено как более стабильное, чем металлического зажима (Рисунок 2E, F). 5-0 Silk также позволяет удалить шовный материал, если это требуется в соответствии с конкретным дизайном исследования.

Важным наблюдением, сделанным в ходе этого исследования, было то, что применение металлических зажимов приводило к образованию случайных форм свободного диаметра вокруг провода 19 G, что является важным источником изменчивости. В данном исследовании требовался постоянный диаметр 1 мм. Кроме того, удаление металлических зажимов часто приводило к разрыву ствола ПА, что неприемлемо в дизайне исследования, которое потребовало бы удаления шва для оценки восстановления нормального давления (Рисунок 2E, F).

Подтверждение и измерение ПАБ-индуцированной перегрузки правым желудочковым давлением (Рисунок 4 и Рисунок 5)
Идеальным подтверждением повышенного давления после PAB было бы гемодинамическое измерение давления с помощью внутривенного и внутрисердечного катетера, как описано ранее9. Для протоколов, требующих сохранения сердца в течение длительного периода и неинвазивных подходов, описанная выше методика эхокардиографии помогла оценить увеличение скорости крови и градиента давления вокруг шва с помощью допплерографии CW (рис. 4A,C). Этот неинвазивный метод даже позволил визуализировать лигирование и нарушение кровотока, вызванное сужением диаметра артерии PAB (рис. 4B, C). Здесь представлены данные эхокардиографии, полученные в D21 после PAB, но исследователи, применяющие этот метод, могут выполнять такую неинвазивную трансторакальную эхокардиографию в различные моменты времени до и после PAB, в соответствии с требованиями их конкретных исследований и исследовательских целей.

figure-results-1
Рисунок 4: Оценка лигирования ствола ПА после ПАБ. Допплер продолжения волны в 2D виде парастернальной короткой оси был использован для визуализации картины потока, пересекающего ствол PA в PAB, по сравнению с фиктивными крысами. (A) Измерение скорости кровотока, выбрасываемого из RV через ствол PA у бутафорских крыс (левая панель) и PAB крыс (правая панель). (B) Цветовое отображение ствола PA в фиктивной (левая панель) и PAB rat (правая панель). Кровь, которая в норме выбрасывается из ПЖ и удаляется от сердца с ламинарным потоком, обозначена синим цветом, а турбулентный кровоток после ПАБ из-за фиксированного препятствия оттоку ПЖ – красным и желтым. Частичная перевязка ствола ПА может быть распознана на правой панели из-за непрозрачности шелкового шва. (C) Пиковая скорость PA, выраженная в см/с в PAB, по сравнению с фиктивной при D21 после PAB. (D) Количественная оценка среднего градиента давления PA, выраженного в мм рт.ст. в PAB, по сравнению с фиктивным давлением в D21 после PAB. (Статистический анализ: данные были распределены в соответствии с оценкой с помощью теста Шапиро-Уилка. Сравнение данных проводилось с помощью t-критерия Стьюдента. n = 6 крыс в группе. Результаты выражаются в виде среднего значения ± S.E.M.) Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

На правой стороне сердца PAB индуцировал тяжелую RHF, подтвержденную увеличением толщины RV и расширением RA с нарушением работы миокарда, что наблюдалось при эхокардиографии на D21 после PAB. Что касается функции ПЖ, систолическое давление ПЖ было значительно повышено у крыс PAB по сравнению с симуляцией, а эхокардиография in vivo также показала, что скорость сократимости (Sr) была снижена при PAB по сравнению с симуляцией (рис. 5A-C). По сравнению с фиктивными крысами, размер ПЖ в конце диастолы (RVDd) и толщина передней стенки ПЖ в конце диастолы (RVAWd) были значительно увеличены. Эти эхокардиографические наблюдения были подтверждены после эвтаназии и гистологического анализа поперечного отдела сердца у крыс PAB по сравнению с имитацией (рис. 5D). Увеличение объемной емкости ПЖ в ответ на повышенную постнагрузку приводило к тому, что межжелудочковая перегородка смещалась к ЛЖ, вызывая относительное сжатие ЛЖ (рис. 5A, D).

figure-results-2
Рисунок 5: Подтверждение PAB-индуцированного ремоделирования правого желудочка у D21 после PAB. (A) 2D-апикальный 4-камерный вид четырех сердечных камер, подчеркивающий расширение RA и RV у крыс PAB (правая панель) по сравнению с фиктивной (левая панель). Тканевая допплерография использовалась для (В) количественной оценки систолического давления ПЖ, выраженного в мм рт.ст., у крыс PAB по сравнению с фиктивными, и (C) измерения систолической сократимости (Sr) боковой стенки RV, выраженной в см/с, у крыс PAB по сравнению с фиктивными. (D) Гистологические снимки поперечных срезов сердца в бутафорской (левая панель) и PAB крысы (правая панель), подтверждающие, что PAB индуцировал значительное увеличение RV по сравнению с имитацией. Масштабные линейки: 5 мм. (Статистический анализ: данные были распределены в норме, как это было оценено с помощью теста Шапиро-Уилка. Сравнение данных проводилось с помощью t-критерия Стьюдента. n = 6 крыс в группе. Результаты выражаются в виде среднего значения ± S.E.M.) Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

Оценка индуцированной PAB правосторонней дилатации предсердий и трикуспидальной регургитации (Рисунок 6)
Эхокардиография in vivo , выполненная в D21 после PAB, подтвердила, что RADs значительно увеличиваются, в то время как LADs остается неизменным, из-за индуцированного PAB постоянного увеличения давления на правой стороне сердца (Рисунок 5A, Рисунок 6A, B). Стойкая ПАБ-индуцированная правосторонняя перегрузка давлением сопровождалась деформацией кольца трикуспидального клапана. Индуцированное PAB нарушение работы трикуспидального клапана оценивали с помощью эхокардиографии in vivo , выполненной в D21 после PAB, по наблюдению трикуспидальной регургитации, характеризующейся утечкой крови в РА в систолу (рис. 6C-E).

figure-results-3
Рисунок 6: Оценка PAB-индуцированного ремоделирования РА и трикуспидального клапана в D21 после PAB. (A) Количественная оценка размера RA в конце систолы (RADs) у фиктивных крыс и крыс PAB, измеренная с помощью 2D апикального 4-камерного обзора. (B) Количественная оценка размерности LA в конце систолы (LADs) у фиктивных крыс и крыс PAB. (C) Было зарегистрировано цветовое картирование на 2D апикальном 4-камерном снимке для наблюдения за нормальным закрытием трикуспидального клапана в симуляции (левая панель) по сравнению с трикуспидальной регургитацией, характеризующейся утечкой крови из RV в RA крыс PAB (правая панель) в ответ на индуцированное PAB правостороннее растяжение и деформацию кольца трехстворчатого клапана. (D) Эхокардиография в М-режиме в апикальном 4-камерном режиме была использована для количественной оценки систолической экскурсии на плоскости трикуспидального кольца (TAPSE) у крыс PAB по сравнению с симуляцией. (E) Импульсно-волновой допплеровский метод был использован для количественной оценки скорости движения трехстворчатого кольца у крыс PAB по сравнению с фиктивными. (Статистический анализ: данные были распределены в соответствии с оценкой с помощью теста Шапиро-Уилка. Сравнение данных проводили с помощью t-критерия Стьюдента. n = 6 крыс в группе. Результаты выражаются в виде среднего значения ± S.E.M.) Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

Оценка PAB-индуцированного сердечного аритмогенеза (Рисунок 7 и Рисунок 8)
AB-индуцированное ремоделирование сердца наблюдалось с помощью электрофизиологических анализов на D21 после PAB. Параметры ЭКГ, включая интервал R-R, длительность зубца P и интервал QT, были значительно увеличены у крыс PAB по сравнению с симуляцией (рис. 3A). Эти изменения показали, что PAB влияет на частоту сердечных сокращений, предсердную проводимость и сократимость желудочков (Рисунок 7).

Кроме того, по сравнению с симуляцией, крысы PAB были значительно более уязвимы к сердечным аритмиям, включая ФП, в ответ на электрическую стимуляцию (рис. 8).

figure-results-4
Рисунок 7: Анализ электрокардиограммы. Измеряли параметры ЭКГ (в мс), включая (A) R-R интервал, (B) длительность P-зубца, (C) P-R сегмент, (D) комплекс QRS и (E) интервал QT. (Статистический анализ: данные были распределены в нормальном соответствии с оценкой с помощью теста Шапиро-Уилка. Сравнения проводились с помощью Т-критерия Стьюдента. Каждая точка представляет собой отдельное животное. n = 6 крыс в группе. Результаты выражаются в виде среднего ± S.E.M.). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

figure-results-5
Рисунок 8: Сердечные аритмии, вызванные PAB, включая ФП. (A) Репрезентативная поверхностная ЭКГ, наблюдаемая у фиктивных (верхняя панель) и PAB крыс (нижняя панель) во время электрофизиологического исследования, показывающая синусовый ритм (СР), 3-секундную взрывную стимуляцию с последующим восстановлением ФП и/или СР. (B) Количественная оценка PAB-индуцированной уязвимости к предсердным тахиаритмиям, включая ФП и трепетание предсердий (ФП). (C) Продолжительность ФП у индуцируемых симуляционных крыс и крыс PAB. (Статистический анализ: (Б) Точный текст Фишера. (C) n был слишком коротким в фиктивном тесте для проведения сравнительного теста. n = 6 крыс в группе. Результаты выражаются в виде среднего значения ± S.E.M.) Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

Смертность (Рисунок 9)
Наложение шва в точке D0 сопровождалось 30% смертностью среди PAB по сравнению с 0% у фиктивных крыс в минуты до D3 после операции. Крысы, которые выжили в первые 3 дня после операции, дожили до дня заключительных экспериментов (D21). После D21 смертность значительно увеличилась среди крыс PAB (60% против 0% при симуляции) из-за тяжести правостороннего ремоделирования и RHF (Рисунок 9).

figure-results-6
Рисунок 9: Уровень смертности. Смертность, выраженная в процентах (%) у фиктивных крыс и крыс PAB между D0 и D3, D4 и D21, а также после D21 после операции. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.

Обсуждение

Успешная работа PAB является наиболее важной частью этого протокола. Важно правильно различать аорту и ствол ПА. Изоляция ПА должна быть выполнена тщательно, чтобы избежать разрыва, кровотечения и смерти во время процедуры. Наложение шва вокруг отведения 19G должно быть выполнено быстро с последующим немедленным удалением отведения, чтобы избежать слишком долгой «полной обструкции» ПА из-за наличия отведения.

В соответствии с требованиями исследований мы определили, что 5-0 Silk более устойчив, чем металлический зажим для выполнения PAB10,13. Кроме того, 5-0 Silk допускал удаление, в то время как клипсы провоцировали риски порвать PA. Исследователи, выполняющие PAB, должны адаптировать выбор материала шовной нити (шелк, металл, пластиковый зажим) в соответствии со своими исследовательскими целями10.

В этом исследовании ПАБ (оставляя 1 мм свободного диаметра) проводили анализы in vivo через 3 недели после ПАБ. Через 21 день смертность среди животных увеличилась из-за тяжести правостороннего ремоделирования сердца 10,13,23 (рис. 9). Этот протокол был разработан и адаптирован для нашего исследования аритмогенного ремоделирования сердца за 3 недели. Исследователи, воспроизводящие эту модель, могут рассмотреть возможность адаптации диаметра с использованием другого отведения, отличного от 19 G, и/или продления или уменьшения продолжительности ремоделирования после PAB до эвтаназии23.

Однократная инъекция MCT является признанным методом индуцирования тяжелой ЛАГ и RHF 8,9. Однако из-за важности пневмотоксичности, вызванной MCT, этот метод не был актуален в нашем конкретном контексте, целью которого было изучение влияния воспаления при RHF-индуцированном CA9. Конкретная исследовательская гипотеза этого исследования требовала использования метода увеличения ЛТ без повреждения легких, чтобы избежать сигнализации воспаления, исходящей из легких. Следовательно, стратегия PAB была лучшим вариантом в нашем контексте13.

Этот метод может найти применение в различных областях исследований. В кардиологии протокол PAB может быть полезен для изучения правосторонней гипертрофии сердца, сердечного аритмогенеза и клапанных заболеваний (стеноз PA, нарушение трикуспидального состава)24,25,26. В исследованиях старения протокол PAB может быть полезен для оценки влияния RHF на усугубление возрастной сердечной дисфункции27. В пульмонологии протокол PAB может быть использован для изучения влияния стеноза ствола PAB на внутрилегочную функцию28. Среди прочего, PAB также может быть полезен для оценки роли давно вызванного PAB RHF на функцию мозга и нейродегенеративныерасстройства. В целом, влияние воспаления сердца и фиброза на сердечные заболевания вызывает серьезную озабоченность30. Модель фиброза и воспаления сердца PAB предлагает интересный стандартизированный и воспроизводимый подход к оценке механизмов, связанных с сердечным воспалением, и возможность тестирования потенциальных интервенционных стратегий31,32.

В зависимости от специфики изучаемой модели, исследователи могут предпочесть индуцировать другие уровни тяжести RHF, чем тот, который описан в этой статье, с помощью измерительных игл, отличных от 19 G, представленных в статье. Поэтому важно отметить, что при использовании свинцов меньшего диаметра, используя 20 г или 21 г, мы столкнулись со 100% падежом крыс весом 225-275 г в течение нескольких минут после наложения шва из-за обструкции ствола ПА.

PAB-индуцированная RHF является воспроизводимым и эффективным методом индуцирования и изучения КА, включая ФП у крыс. Ремоделирование предсердий и желудочков, спровоцированное узким PAB (диаметром 1 мм), характеризуется воспалением миокарда и фиброзом, что дает интересный подход к исследованию RHF-ассоциированного желудочкового и предсердного аритмогенеза.

Раскрытие информации

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

Авторы выражают благодарность Коломбу Рою, ЯнФен Ши, Сандре Куэрри и Джозиан Десландес за технические характеристики трансторакальной эхокардиографии и Натали Л'Эро за предварительную техническую помощь во время стандартизации метода PAB. Мы благодарны сотрудникам учреждения по уходу за животными Монреальского института сердца.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
0,9% хлор натрия для инъекций USB (100 мл)  Раствор BaxterJB1302Pиспользуемый для разведения лекарственных препаратов (обезболивающих и противовоспалительных) и для приготовления шприцев с солевой водой, предназначенных для регидратации животного после операции
19 G x 1 1/2 Игла PrecisionGlide BD305187игла модифицированная (изогнутая и притупленная) для использования в качестве спейсера во время частичного сужения легочного ствола
2" x 2" нетканая нестерильная марлевая губка Ritmed, 4-слойныемарлевые губки AMD-RitmedA2101-CHиспользуемые для впитывания крови из раны или для мягкого отодвигания органов (например, тимуса) в сторону.
4 x 4 дюйма нетканый материал Нестерильная марлевая губка Ritmed, 4 слоя (x200)Марлевые губки AMD-RitmedA2100-CHиспользуются для впитывания крови из раны или для мягкого отталкивания органов (например, тимуса) в сторону.
5-0 Vicryl Violet Шовная нить RB-1 1/2 Круглая игла 17 мм 27 дюймовEthiconJ303HСинтетический рассасывающийся стерильный хирургический шовный материал с конической иглой, используемый для закрытия мышечных и кожных ран.
Анафен (100 мг/мл)Merial Canada, Inc.1938126Разведенный инъекционный раствор кетопрофена вводят в качестве нестероидного противовоспалительного, обезболивающего и жаропонижающего средства.
АвтоКлип  СистемаFST12020-00может использоваться для закрытия кожной раны. В комплект входят аппликатор для зажимов, зажимы для ран (9 мм) и средство для снятия зажимов.
Dumont #5/45 ЩипцыFST11251-35Щипцы Dumoxel с наконечниками, расположенными под углом 45°С. Используется для затягивания узлов вокруг распорки, размещенной на легочном стволе.
Тонкие ножницы - Острыеножницы FST14060-10из нержавеющей стали для разреза межреберных мышц и наложения швов.
Форан (изофлуран) 100 млBaxter CanadaBAXCA2L9100ингаляционный анестетик, используемый для грызунов во время операции PAB.
Катетер для внутривенного введения, 16 G x 1,77 " (прямой)BD Insyte381257катетер, используемый в качестве эндотрахеальной трубки с притупленным металлическим стилетом.
Свет  LED 130 F - DrMachEickemeyerM130300светодиодный настенный светильник.
Система втягивания магнитного фиксатора: Опорная пластинаFST18200-50Металлическая пластина, на которую установлены соответствующие приспособления. Он размещается вокруг нагревательной пластины.
Магнитная система втягивания фиксатора: Эластомер (рулон 2 м)FST18200-07Используется для крепления втягивающих устройств к фиксаторам.
Магнитная система втягивания фиксатора: ФиксаторыFST18200-02Подвижные анкеры, которые можно разместить на опорной плите.
Магнитный фиксатор Система втягивания: РетракторыFST18200-11Ретракторы, позволяющие поддерживать операционную рану с нужным отверстием
Ножницы Метценбаума (изогнутые)FST14017-14Тупые ножницы из нержавеющей стали, используемые для тупого рассечения кожи и мышц.
Микро-Адсон ЩипцыFST11018-12Зубчатые щипцы из нержавеющей стали, используемые для захвата кожи и других тканей.
Oster Golden A5 2-скоростная машинка для стрижкиOster Professional34264416949Машинка для стрижки домашних животных, используемая для подготовки операционного поля. Поскольку он предназначен для использования с крупными животными, пользователю нужно быть осторожным с крысами.
Нагревательная пластина для грызунов или система подогреваИзготовленная на заказн/дпластина, подключенная к устройству, оснащенному светодиодным экраном, отображающим температуру, обнаруженную ректальным зондом, а также целевую температуру.
Аппарат ИВЛ для грызунов Модель 683Гарвардский аппарат74240-2Механический аппарат ИВЛ, используемый для мелких лабораторных животных (макс. 5 кг).
Щипцы Semken с зубцами (изогнутые)FST11009-13Щипцы из нержавеющей стали, используемые для рассечения тканей.
Щипцы Semken с зубцами (прямые)FST11008-13Щипцы из нержавеющей стали, используемые для рассечения тканей.
Крем для удаления волос Silky Fresh HairRemoval Veet62200825036Средство для удаления волос, используемое для подготовки места операции после бритья.
Солупреп 3М103.26Раствор антисептический флаконный тонированный 2% хлоргексидином и 70% спиртом 225 мл.
Шпатель из нержавеющей стали 195 ммHeathrow ScientificHS15907Шпатель используется в качестве депрессора языка во время интубации крыс.
Стереомикроскоп системы SZ61TROlympus88-126Микроскоп оснащен биноклем и встроенной камерой, позволяющей вести видеосъемку.
Стерильный хлорид натрия 0,9% ирригационный флакон (60 мл)Физиологический раствор H2O25-6048SA-LРаствор используется для поддержания влажности раны на протяжении всей операции.
Хирургические ножницы - Остро-тупые (прямые)FST14001-12Ножницы из нержавеющей стали, используемые для первоначального разреза кожи.
Шов 5-0 Шелк No Игла HenrySchein102-6344Шелковая нить, используемая для сужения легочного ствола
Systane OintmentAlcon2444062Смазка для глаз, обеспечивающая временное облегчение жжения и раздражения, вызванных сухостью глаз во время операции.
Подставка для стереомикроскопа SZ2-STU2 OlympusN1198900Кронштейн, прикрепленный к основанию, обеспечивает большую свободу движений головки микроскопа.
Щипцы для тканей - 1X2 TeethFST11021-15Щипцы из нержавеющей стали, позволяющие захватывать, удерживать и манипулировать тканями (кожей и мышцами).
Transpore Surgical Tape3M1527-1Медицинская лента используется для иммобилизации передних и задних конечностей крыс.
Vetbond Tissue Adhesive (3 мл)3M1469SBХирургический клей, который можно наносить в небольших количествах на кожу Его можно использовать в качестве дополнения к подкожным швам.
Vetergesic Multidose (0,3 мг/мл) 10 млCeva Canada2342510Разведенный инъекционный раствор бупренорфина, вводимый в качестве обезболивающего препарата.
Ветеринарный испаритель для анестезии Tec 4Dispomed34001 IsoОбеспечивает испарение изофлурана и концентрацию при 0– 5%.
, , домашних животных

Ссылки

  1. Cassady, S. J., Ramani, G. V. Right heart failure in pulmonary hypertension. Cardiol Clin. 38 (2), 243-255 (2020).
  2. Campo, A., et al. Outcomes of hospitalization for right heart failure in pulmonary arterial hypertension. Eur Respir J. 38 (2), 359-367 (2011).
  3. Naeije, R., Manes, A. The right ventricle in pulmonary arterial hypertension. Eur Respir Rev. 23 (134), 476-487 (2014).
  4. Vonk-Noordegraaf, A., et al. Right heart adaptation to pulmonary arterial hypertension: physiology and pathobiology. J Am Coll Cardiol. 62 (25 Suppl), D22-D33 (2013).
  5. Olsson, K. M., Nickel, N., Tongers, J., Hoeper, M. M. Atrial flutter and fibrillation in patients with pulmonary hypertension. Int J Cardiol. 167 (5), 2300-2305 (2013).
  6. Mercurio, V., et al. Pulmonary arterial hypertension and atrial arrhythmias: incidence, risk factors, and clinical impact. Pulm Circ. 8 (2), 2045894018769874(2018).
  7. Dignam, J. P., Scott, T., Kemp-Harper, B., Hobbs, A. J. Animal models of pulmonary hypertension: Getting to the heart of the problem. Br J Pharmacol. 179 (5), 811-837 (2021).
  8. Silva, A. L., et al. Monocrotaline induces acutely cerebrovascular lesions, astrogliosis and neuronal degeneration associated with behavior changes in rats: A model of vascular damage in perspective. Neurotoxicology. 94, 59-70 (2023).
  9. Hiram, R., et al. Right atrial mechanisms of atrial fibrillation in a rat model of right heart disease. J Am Coll Cardiol. 74 (10), 1332-1347 (2019).
  10. Hirata, M., et al. Novel model of pulmonary artery banding leading to right heart failure in rats. Biomed Res Int. 2015, 753210(2015).
  11. Jalal, Z., et al. Unexpected internalization of a pulmonary artery band in a porcine model of tetralogy of Fallot. World J Pediatr Congenit Heart Surg. 8 (1), 48-54 (2017).
  12. Akazawa, Y., et al. Pulmonary artery banding is a relevant model to study the right ventricular remodeling and dysfunction that occurs in pulmonary arterial hypertension. J Appl Physiol. 129 (2), 238-246 (2020).
  13. Le Quilliec, E., et al. Atrial cardiomyocytes contribute to the inflammatory status associated with atrial fibrillation in right heart disease. Europace. 26 (4), euae082(2024).
  14. Cheng, H. W., et al. Assessment of right ventricular structure and function in mouse model of pulmonary artery constriction by transthoracic echocardiography. J Vis Exp. (84), e51041(2014).
  15. Cheng, T. C., Philip, J. L., Tabima, D. M., Hacker, T. A., Chesler, N. C. Multiscale structure-function relationships in right ventricular failure due to pressure overload. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 315 (3), H699-H708 (2018).
  16. Mamazhakypov, A., Veith, C., Schermuly, R. T., Sydykov, A. Surgical protocol for pulmonary artery banding in mice to generate a model of pressure-overload-induced right ventricular failure. STAR Protoc. 4 (4), 102660(2023).
  17. Prihadi, E. A., et al. Morphologic types of tricuspid regurgitation. Characteristics and prognostic implications. JACC: Cardiovasc Imaging. 12 (3), 491-499 (2019).
  18. Samson, N., Paulin, R. Epigenetics, inflammation and metabolism in right heart failure associated with pulmonary hypertension. Pulm Circ. 7 (3), 572-587 (2017).
  19. Liu, Z., et al. Low-voltage zones as the atrial fibrillation substrates: Relationship With initiation, perpetuation, and termination. Front Cardiovasc Med. 8, 705510(2021).
  20. Tomasello, G., et al. Simple and fast orotracheal intubation procedure in rats. Acta Biomed. 87 (1), 13-15 (2016).
  21. Halațiu, V. B., Perian, M., Balan, A. I., Scridon, A. Transesophageal atrial burst pacing for atrial fibrillation induction in rats. J Vis Exp. (180), e63567(2022).
  22. Prophet, E. B., Mills, B., Arrington, J. B., Sobin, L. H. Laboratory Methods in Histotechnology. , American Registry of Pathology. Washington. (1992).
  23. Silva, J. M. A., et al. Hypertrophy of the right ventricle by pulmonary artery banding in rats: a study of structural, functional, and transcriptomics alterations in the right and left ventricles. Front Physiol. 14, 1129333(2023).
  24. Camacho, P., Fan, H., Liu, Z., He, J. Q. Small mammalian animal models of heart disease. Am J Cardiovasc Dis. 6 (3), 70-80 (2016).
  25. Andersen, S., et al. A pulmonary trunk banding model of pressure overload induced right ventricular hypertrophy and failure. J Vis Exp. (141), e58050(2018).
  26. Ukita, R., et al. A large animal model for pulmonary hypertension and right ventricular failure: Left pulmonary artery ligation and progressive main pulmonary artery banding in sheep. J Vis Exp. (173), e62694(2021).
  27. Myers, P. O., et al. Impact of age and duration of banding on left ventricular preparation before anatomic repair for congenitally corrected transposition of the great arteries. Ann Thorac Surg. 96 (2), 603-610 (2013).
  28. Liu, C., et al. Reverse remodeling of pulmonary arterioles after pulmonary artery banding in patients ≥ 2 years old with severe pulmonary arterial hypertension and congenital heart disease. Pediatr Cardiol. 40 (5), 958-964 (2019).
  29. Roy, B., Vacas, S., Ehlert, L., McCloy, K., Saggar, R., Kumar, R. Brain structural changes in patients with pulmonary arterial hypertension. J Neuroimaging. 31 (3), 524-531 (2021).
  30. Hiram, R. Resolution-promoting autacoids demonstrate promising cardioprotective effects against heart diseases. Mol Biol Rep. 49 (6), 5179-5197 (2022).
  31. Hiram, R. Cardiac cytokine therapy? Relevance of targeting inflammatory mediators to combat cardiac arrhythmogenic remodeling. Int J Cardiol Heart Vasc. 37, 100918(2021).
  32. Al-U'datt, D. G. F., et al. Implications of enigmatic transglutaminase 2 (TG2) in cardiac diseases and therapeutic developments. Biochem Pharmacol. 201, 115104(2022).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи