Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Мышиная модель прогрессирующего периодонтита, индуцированного нейлоновой лигатурой во втором верхнем моляре

1.6K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/67848

⸱

30 мая 2025 г.

 ,  , 
1Undergraduate Program of Dental Surgeon, Facultad de Estudios Superiores Iztacala (FES-Iztacala), Universidad Nacional Autónoma de Mexico (UNAM), 2Innate Immunity Laboratory, Biomedicine Research Unit (UBIMED), FES-Iztacala, UNAM, 3Doctoral Program in Biological Sciences, UNAM

В этой статье

Краткое содержание

В этом исследовании описывается модифицированный метод лигирования нейлона 6-0 для индуцирования пародонтита у мышей, который обладает высокой воспроизводимостью и представляет собой альтернативу для исследователей для изучения заболеваний пародонта от их развития до патологических последствий.

Аннотация

Пародонтоз (БП) — это воспалительное заболевание, поражающее поддерживающие ткани зубов и являющееся одним из самых распространенных заболеваний во всем мире. Тяжелая его форма, пародонтит, приводит к разрушению мягких тканей, зубов, кости. Животные модели пародонтита были разработаны с использованием приматов, собак, миниатюрных свиней и мышей. Среди них мышиная модель, индуцированная лигатурой, предлагает такие преимущества, как быстрое прогрессирование заболевания, воспроизводимость, предсказуемость и низкая стоимость при эффективном воспроизведении ключевых аспектов пародонтита человека. Мышиные модели с использованием лигатур позволили получить ценную информацию о микробиологическом и иммунологическом микроокружении тканей пародонта, подчеркнув критическую роль биопленок в иммунных реакциях и их связь с системными заболеваниями. В этом исследовании представлен модифицированный метод лигирования нейлона для индуцирования пародонтита у мышей. Модификация включает в себя использование нейлонового шовного материала вместо шелкового шва и размещение его под межпроксимальной областью контакта, а не через точку контакта. Такой подход упрощает технику и при этом эффективно индуцирует пародонтит. Подробная методология наложения швов графически проиллюстрирована, а прогрессирование пародонтита демонстрируется с помощью гистологического и гистометрического анализов.

Введение

Пародонтоз (БП) — это воспалительное заболевание поддерживающих тканей зубов, которое является одним из самых распространенных заболеваний в мире1; сообщалось, что частота БП колеблется от 20% до 50% во всем мире2. БП имеет разную степень прогрессирования; Его легкая форма, называемая гингивитом, поражает только мягкие ткани, а тяжелая форма, называемая периодонтитом (ПТ), поражает твердые ткани, такие как кость3. Поскольку ПТ является воспалительным заболеванием, его следует рассматривать как комплексный иммунный ответ, который может быть изменен несколькими факторамириска, которые могут изменить процесс заболевания, такими как сахарный диабет5, сердечно-сосудистые заболевания6, гормональные взаимодействия, такие как неблагоприятные исходы беременности7 или преэклампсия8, воспалительные заболевания9 и даже изменения глаз10 или деменция11.

Таким образом, чтобы понять этиологию, связанную с развитием или распространенностью ПТ, протестировать новые или более эффективные терапевтические стратегии или выявить корреляцию между системными заболеваниями и ПТ или микробиотой пародонта, необходимы животные модели12.

Выбор эффективного метода исследования имеет решающее значение для понимания развития ФТ и адекватного ответа на исследовательские вопросы13. На протяжении многих лет для изучения ПТ были разработаны различные животные модели; Тем не менее, такие модели, как приматы, собаки, кролики и миниатюрные свиньи, дороги и сложны в использовании 14,15,16. Мышиные модели ПТ, в частности модель ПТ, индуцированная лигированием, имеют множество преимуществ, включая быструю разработку, воспроизводимость, предсказуемость инизкую стоимость.

Несмотря на то, что для индукции ПТ используются несколько методов, таких как пероральная бактериальная инокуляция, инъекция липополисахаридов и индукция лигатуры10,20, каждый из них имеет свои преимущества и недостатки17, мышиная модель ПТ, индуцированная нейлоновой лигатурой, напоминает человеческий механизм ее развития 20,21,22,23. ПТ происходит за счет удержания резидентной микробиоты, вызывая воспаление и приводя к потере тканей. Кроме того, мыши могут быть генетически модифицированы для изучения различных клеточных популяций или молекул, представляющих интерес для изучения ПТ.

Лигирование зубов может проводиться с использованием различных материалов, таких как ортодонтическая проволока, шелковые шовные нити24,25 или нейлоновые шовные нити26. Наиболее распространенным материалом для индуцирования ПТ путем лигирования у мышей является шелк; Эта методология была объяснена различными авторами, такими как Marchesan et al.18, Abe et al.27 и Chadwick et al.22, каждый со своими собственными модификациями, и все эти методы были успешно использованы несколькими исследователями28. Тем не менее, наложение шелкового шва вокруг верхних коренных зубов у мышей может быть сложным. Marchesan et al. предложили использовать «лигатурный держатель»; Abe et al. и Chadwick et al. поместили шов через точку контакта, хотя Chadwick et al. поместили его вокруг коренных зубов M1 и M2.

Нейлоновые шовные материалы разной толщины использовались для разработки PT на различных моделях животных 29,30,31. Lima et al.31 использовали нейлоновые шовные материалы 5-0; В предыдущих исследованиях мы использовали нейлоновые шовные материалы 6-0 с аналогичными результатами28.

По сравнению с мультифиламентными шовными нитями, нейлоновые шовные нити являются нерезорбируемыми монофиламентными синтетическими и демонстрируют более низкую воспалительную реакцию тканей32; кроме того, нейлоновые шовные материалы также допускают накопление микробов33,34, и имеются данные о адгезии Fusobacterium nucleatum и Porphyromona intermedia35,36, наряду с факультативными анаэробными бактериями в нейлоновых шовных материалах 12,14,17,19,24,27,35,37 (Таблица 1).

Эти характеристики могут позволить воспалительной реакции быть сфокусированной в основном на накоплении бактерий, а не на накоплении материалов. Кроме того, нейлон обладает лучшими механическими свойствами, такими как прочность на разрыв, чем шелк38.

Таким образом, в настоящем исследовании нейлоновый шов 6-0, размещенный вокруг M2 под межпроксимальной контактной зоной, индуцировал развитие периодонтита на поздней стадии у мышей. Такой подход позволяет применять лигатуру с помощью обычного пинцета, и результаты получаются стабильными. Через 30 дней развитие ПВ может быть подтверждено с помощью гистометрического и гистологического анализа.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Все процедуры с участием подопытных животных проводились в строгом соответствии с «Этическими рамками биомедицинских исследований на лабораторных животных» в соответствии с официальным мексиканским стандартом NOM-062-ZOO-1999. Это исследование было одобрено комитетом по этике Facultad de Estudios Superiores Iztacala (FES-Iztacala) в соответствии с протоколом CE/FESI/072024/1765. Мыши были размещены в камерах для животных со свободным доступом к пище и воде в свободной от патогенов среде в животноводческом центре FES-Iztacala. Этот протокол является модификацией метода, ранее описанного Abe et al.27. Самки мышей BALB/c в возрасте от 6 до 8 недель (массой 16 г) были разделены на контрольную (CTL) и периодонтитную (PT) группы. Пародонтит был вызван наложением нейлонового шва 6-0 на 0-й день, чтобы способствовать устойчивой бактериальной адгезии и вызвать тяжелое прогрессирование хронического заболевания. Через 30 дней всех мышей усыпляли (в соответствии с утвержденными в учреждении протоколами) для оценки повреждения тканей и потери прикрепления (AL) с помощью гистометрического анализа (рис. 1). Подробная информация об используемых реагентах и оборудовании приведена в Таблице материалов.

1. Подготовка к анестезии

  1. Готовят разведение ксилазина и кетамина (1:10) с инъекционной водой (запас). Хранить при температуре 4 °C и использовать в течение 4 недель.
  2. Определите и взвесьте каждую мышь. Приготовьте весовую дозу ксилазина (1 мг/кг) и кетамина (2 мг/кг) для внутримышечного введения с помощью инсулинового шприца.
  3. Введите 50% от общей дозы раствора анестетика в заднюю четвертину. Повторите процедуру с обратной стороны.
  4. Поместите мышей в глубокую коробку (10 см³) и дайте им заснуть, что займет примерно 3-5 минут.
  5. Предотвратите сухость глаз и повреждение роговицы из-за анестезии, нанося капли гипромеллозы на каждый глаз каждые 15 минут, пока мыши полностью не проснутся и не смогут нормально моргать.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Мыши должны находиться под наблюдением в течение 45 минут, приблизительной продолжительности анестезии. Если мышь просыпается до завершения процедуры, процедуру следует приостановить, а мышь следует заменить.

2. Позиционирование животного

  1. Когда мышь заснет, положите ее на рабочий стол лицевой стороной вверх головой к оператору. Аккуратно потяните каждую ногу без напряжения и закрепите их микропористой лентой, чтобы предотвратить резкие непроизвольные движения. Накройте мышь одеялом или марлей, чтобы сохранить тепло тела.
  2. Чтобы морда оставалась открытой, поместите один конец ортодонтической резинки вокруг верхних резцов, а другой конец закрепите на верхнем держателе без натяжения. Поместите вторую ортодонтическую резинку вокруг нижних резцов и закрепите ее на нижнем держателе с помощью резиновой ленты.
  3. Поместите разделители щек и осторожно сдвиньте язычок в сторону для лучшей видимости.
  4. Расположите микроскоп так, чтобы обеспечить адекватную визуализацию верхних моляров, начиная с объектива наименьшего увеличения. После этого отрегулируйте увеличение, чтобы обеспечить оптимальный комфорт и концентрацию внимания оператора.

3. Наложение лигатуры

  1. После того, как изображение станет четким, определите три верхних моляра: самый большой и проксимальный моляр (M1), следующий моляр (M2) и самый маленький и дистальный моляр (M3). Наложите нейлоновый шов 6-0, так как его диаметр облегчает наложение лигатуры и вызывает меньше механических повреждений тканей, чем более широкие швы.
    1. Найдите дистальную сторону M2, возьмитесь пинцетом за кончик нейлонового шовного материала 6-0 и поместите кончик у основания сосочка от нёба. Надавите светом через основание межпроксимального небного пространства по направлению к щечной поверхности (Рисунок 2A).
    2. Как только нейлоновый шов 6-0 пересечет, протяните его через межпроксимальное пространство к щечной стороне (Рисунок 2B).
  2. Поместите кончик нейлонового шовного материала 6-0 у основания межпроксимальной области на мезиальной поверхности M2 со стороны щеки. Осторожно надавите на кончик шва, чтобы пересечь его под межпроксимальным пространством, и проведите его через щечное пространство обратно к нёбу (рис. 2C).
  3. Осторожно натяните нейлоновый шов 6-0, удерживайте кончик пинцетом, отрегулируйте его вокруг M2 и закрепите шов тремя простыми узлами.
  4. Разрежьте нейлоновый шов 6-0 тонкими ножницами (Рисунок 2D).

4. Восстановление животных

  1. Чтобы освободить мышь, снимите с ног разделители щек, микропористую ленту и ортодонтические резинки. Сначала снимите резинку вокруг нижних резцов, затем снимите резинку вокруг верхних резцов.
    1. Снимите мышь с рабочего стола, заверните ее в марлю или ткань и положите лицевой стороной вверх. Держите язык в стороне, чтобы дыхательные пути оставались открытыми и предотвращали закупорку.
  2. Держите животное в тепле, накрыв тканью или марлей, и под наблюдением до полного пробуждения. Затем поместите их в обычные клетки.
  3. Нанесите каплю гипромеллозы на каждый глаз, пока мышь не сможет нормально моргать.
  4. Содержать животное следует в стандартных условиях.

5. Проверка лигатуры

  1. Проверяйте стойкость нейлоновой лигатуры каждую неделю (Рисунок 3A, B).
  2. Возьмите мышь, крепко держите голову и тело и с помощью пинцета откройте морду. Обратите внимание на нейлоновый шов 6-0 вокруг M2 при свете лампы.
  3. Устанавливают развитие пародонтоза на основе накопления биопленки и механического раздражения. Убедитесь в этом с помощью гистологического анализа.

6. Гистология

  1. Через 30 дней усыпьте мышей в камере сCO2 (в соответствии с утвержденными в учреждении протоколами). Соберите верхние челюсти, как сообщалось ранее39. Заготовленные ткани промойте в 0,9% растворе NaCl и поместите их в новые, маркированные микроцентрифужные пробирки.
  2. Зафиксируйте образцы в 4% растворе параформальдегида на 2 ч при перемешивании.
  3. Промойте образцы водопроводной водой в течение 2 часов.
  4. Для удаления минералов из кости и приготовления высококачественных парафиновых срезов декальцинируйте образцы в двадцати объемах 4% раствора ЭДТА (pH 7,3) в течение 20 дней в микроцентрифужных пробирках, меняйте ЭДТА каждые 4 дня40.
  5. Заделайте образцы в парафин. Разрежьте участки размером 5 мкм в области М2 и окрасьте их гематоксилином и эозином (H&E)41.

7. Анализ данных

  1. Рассмотрите окрашенные гистологические срезы под оптическим микроскопом для проведения описательного анализа изменений конфигурации эпителия борозды, десневых волокон, периодонтальных волокон, высоты и целостности альвеолярного гребня.
  2. Определите потерю прикрепления (AL), измерив расстояние между цементоэмалевым соединением (CEJ) и самой высокой точкой костного гребня. Проведите линию между этими двумя точками с помощью программы цифрового редактирования. Выполните гистометрический анализ щечной и нёбной поверхностей по методике, описанной Semenoff et al.42 (рис. 4).

8. Статистический анализ

  1. Проанализируйте данные, полученные из групп CTL и PT, с помощью U-критерия Манна-Уитни. Рассмотрим p < 0,05 как статистически значимый. Используйте программное обеспечение для статистики и построения графиков для анализа.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Эта методология позволяет индуцированным мышам развивать пародонтит (ПТ) со второй недели. За мышами наблюдали еженедельно для проверки наличия лигатуры. Эвтаназия была проведена на 30-й день. Оценивались клинические характеристики всех групп. Контрольная группа сохраняла нормальные характеристики, такие как цвет и структура краевой десны, с течением времени. По сравнению с тканями в группе CTL, в тканях группы ПТ наблюдалось воспаление, кровотечение и образование пародонтальных карманов, которые наблюдались на десневом ...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Несколько животных моделей пародонтита были использованы для оценки различных аспектов, таких как микробиологические и иммунные реакции, и имеют некоторое сходствос болезнью человека. Эти результаты свидетельствуют о структуре заболеваний пародонта, таких как роль биопленок, иммунный ответ и взаимодействие с системными заболеваниями44,45.

Животные модели пародонтита имеют различ...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов в связи с публикацией данной статьи.

Благодарности

Эта работа частично финансировалась за счет гранта Совета по науке и технологиям штата Мехико (COMECYT) номер гранта [FICDTEM-2021-072] и Программы поддержки исследовательских проектов и технологических инноваций (PAPIIT)-UNAM, номер гранта [IN-217021]. Мы выражаем признательность программе специализации в области эндопериодонтологии, FES Iztacala, UNAM за предоставленные возможности для создания этого видео, а также Розальбе Яньес Ортис, DDS, за ее поддержку в создании этого видео. Некоторые фигурки были созданы с помощью программы Biorender (Договор No ME282NWCI1).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
0,9% раствор NaCl PiSAПолоскатель верхней челюсти 
6-0 нейлоновый шовный материалAtramat, Internacional Farmacé uticaPE1946-NЛигатурное размещение
программы Amscope 3.7 для цифрового фотоаппаратаAmscope x64, 4.11.21973.20230107для сбора данных
 Сигма&nдаш; AldrichE5134Декальцинация 
Тонкие ножницыуниверсальныеДля разрезания нейлонового шва 6-0
Тонкие тканевые щипцыобщие6-0 нейлоновый шов
Марлевая салфеткаобщаяДля поддержания телесной температуры 
ГрафПад Призма ГрафПад Призма Версия 8.3.0Анализ данных 
Дженерик гипромеллозы Глазная смазка
Вода для инъекцийPisaРазведение анестетика
раствором КетаминАнескет, ПизаАнестетик
Микроцентрифуга пробирки Cellpro801501Для содержания тканей во время декальцификации 
Микропоры3M 1533Для фиксации мыши Микроскоп
цифровой фотоаппаратAmscope MU1603Гистология 
МикропробиркиAxygenMCT-150-CХранение разведения анестетика
Оптический микроскоп UNICOSerie G380Гистология 
Орродонтические эластикиTP Orthodintics, Inc синийЧтобы рыло оставалось открытым 
Раствор параформальдегидаSigma– Олдрич158127Фиксация тканей 
Парапласт Leica39601006Гистология 
Хирургический микроскоп Carl Zeiss GmbH Berlin6-0 нейлоновый шовный материал
Ultra Fine Инсулиновые шприцы 6мм U-100, 0,3 млBD326385Для введения обезболивающего раствора 
Универсальные резинки Чтобырыло оставалось открытым 
Рабочий столGeneric Деревянное основание для поддержки мышей;
КсилазинПорцин, ПизаПредобезболивающее
Решение EDTA

Ссылки

  1. Nazir, M., et al. Global prevalence of periodontal disease and lack of its surveillance. Sci World J. 2020 (1), 2146160(2020).
  2. Tonetti, M. S., Jepsen, S., Jin, L., Otomo-Corgel, J. Impact of the global burden of periodontal diseases on health, nutrition and wellbeing of mankind: A call for global action. J Clin Periodontol. 44 (5), 456-462 (2017).
  3. Caton, J. G., et al. A new classification scheme for periodontal and peri-implant diseases and conditions - introduction and key changes from the 1999 classification. J Clin Periodontol. 45 (Suppl 20), S1-S8 (2018).
  4. Harrel, S. K., Cobb, C. M., Sottosanti, J. S., Sheldon, L. N., Rethman, M. P. Clinical decisions based on the 2018 classification of periodontal diseases. Compend Contin Educ Dent. 43 (1), 52-56 (2022).
  5. Stöhr, J., Barbaresko, J., Neuenschwander, M., Schlesinger, S. Bidirectional association between periodontal disease and diabetes mellitus: A systematic review and meta-analysis of cohort studies. Sci Rep. 11 (1), 13686(2021).
  6. Sanz, M., et al. Periodontitis and cardiovascular diseases: Consensus report. J Clin Periodontol. 47 (3), 268-288 (2020).
  7. Figuero, E., Han, Y. W., Furuichi, Y. Periodontal diseases and adverse pregnancy outcomes: Mechanisms. Periodontol 2000. 83 (1), 175-188 (2000).
  8. Jung, E., et al. The etiology of preeclampsia. Am J Obstet Gynecol. 226 (2s), S844-S866 (2022).
  9. Hajishengallis, G., Chavakis, T. Local and systemic mechanisms linking periodontal disease and inflammatory comorbidities. Nat Rev Immunol. 21 (7), 426-440 (2021).
  10. Arjunan, P., et al. Exacerbation of AMD phenotype in lasered CNV murine model by dysbiotic oral pathogens. Antioxidants. 10 (2), 309(2021).
  11. Ma, K. S., et al. Dementia and the risk of periodontitis: A population-based cohort study. J Dent Res. 101 (3), 270-277 (2022).
  12. Hajishengallis, G. Illuminating the oral microbiome and its host interactions: Animal models of disease. FEMS Microbiol Rev. 47 (3), fuad018(2023).
  13. Hajishengallis, G., Lamont, R. J., Graves, D. T. The enduring importance of animal models in understanding periodontal disease. Virulence. 6 (3), 229-235 (2015).
  14. Weinberg, M. A., Bral, M. Laboratory animal models in periodontology. J Clin Periodontol. 26 (6), 335-340 (1999).
  15. Shanbhag, S., et al. Peri-implant bone regeneration in pigs. Int J Implant Dent. 10 (1), 55(2024).
  16. Do, M. J., et al. Development of animal experimental periodontitis models. J Periodontal Implant Sci. 43 (4), 147-152 (2013).
  17. Khuda, F., Baharin, B., Anuar, N. N. M., Satimin, B. S. F., Nasruddin, N. S. Effective modalities of periodontitis induction in rat model. J Vet Dent. 41 (1), 49-57 (2024).
  18. Marchesan, J., et al. An experimental murine model to study periodontitis. Nat Protoc. 13 (10), 2247-2267 (2018).
  19. Martuscelli, G., Fiorellini, J. P., Crohin, C. C., Howell, T. H. The effect of interleukin-11 on the progression of ligature-induced periodontal disease in the beagle dog. J Periodontol. 71 (4), 573-578 (2000).
  20. Lin, P., et al. Application of ligature-induced periodontitis in mice to explore the molecular mechanism of periodontal disease. Int J Mol Sci. 22 (16), 8900(2021).
  21. Wong, R. L., et al. Comparing the healing potential of late-stage periodontitis and peri-implantitis. J Oral Implantol. 43 (6), 437-445 (2017).
  22. Chadwick, J. W., Glogauer, M. Robust ligature-induced model of murine periodontitis for the evaluation of oral neutrophils. J Vis Exp. (155), e59667(2020).
  23. De Almeida, K., et al. Identification of microRNAs expressed in an animal model of periodontal disease and their impact on pathological processes. Tissue Cell. 90, 102525(2024).
  24. Yoon, H., et al. Temporal changes of periodontal tissue pathology in a periodontitis animal model. J Periodontal Implant Sci. 53 (4), 248-258 (2023).
  25. Benzen, B. H., et al. A comparison of two models of experimental periodontitis in rats. Scand J Lab Anim Sci. 32 (2), 73-80 (2005).
  26. Franca, L. F. C., et al. Periodontitis changes renal structures by oxidative stress and lipid peroxidation. J Clin Periodontol. 44 (6), 568-576 (2017).
  27. Abe, T., Hajishengallis, G. Optimization of the ligature-induced periodontitis model in mice. J Immunol Methods. 394 (1-2), 49-54 (2013).
  28. Ortiz-Sánchez, B. J., et al. Periodontitis exacerbation during pregnancy in mice: Role of macrophage migration inhibitory factor as a key inductor. J Periodontal Res. 59 (2), 267-279 (2023).
  29. Lu, H., et al. Chronic stress accelerates ligature-induced periodontitis by suppressing glucocorticoid receptor-α signaling. Exp Mol Med. 48 (3), e223(2016).
  30. França, A. L. Q., et al. Molecular docking study and antireabsorptive activity of a semi-synthetic coumarin derivative from Platymiscium floribundum in the ligature-induced periodontitis in rats: The involvement of heme oxygenase-1. Clin Oral Investig. 26 (2), 1701-1711 (2022).
  31. Lima, M. L. S., et al. The receptor at1 appears to be important for the maintenance of bone mass, and at2 receptor function in periodontal bone loss appears to be regulated by at1 receptor. Int J Mol Sci. 22 (23), 12849(2021).
  32. Faris, A., et al. Characteristics of suture materials used in oral surgery: Systematic review. Int Dent J. 72 (3), 278-287 (2022).
  33. Nadafpour, N., Montazeri, M., Moradi, M., Ahmadzadeh, S., Etemadi, A. Bacterial colonization on different suture materials used in oral implantology: A randomized clinical trial. Front Dent. 18, 25(2021).
  34. Naghsh, N., Yaghini, J., Arab, A., Soltani, S. Comparison of the number of bacterial colonies among four types of suture threads using simple loop method following periodontal surgery in patients with periodontitis: A single-blind randomized clinical trial. Dent Res J (Isfahan). 20, 71(2023).
  35. De Castro Costa Neto, O., et al. Oral bacteria adherence to suture threads: An in vitro study. Oral Maxillofac Surg. 19 (3), 275-280 (2015).
  36. Asher, R., Chacartchi, T., Tandlich, M., Shapira, L., Polak, D. Microbial accumulation on different suture materials following oral surgery: A randomized controlled study. Clin Oral Investig. 23 (2), 559-565 (2019).
  37. Banche, G., et al. Microbial adherence on various intraoral suture materials in patients undergoing dental surgery. J Oral Maxillofac Surg. 65 (8), 1503-1507 (2007).
  38. Kaur Randhawa, R., et al. Assessment of the mechanical properties of different suture materials for oral surgery: An in vitro tensile strength study. Cureus. 16 (8), e65952(2024).
  39. Liu, Y., et al. Using inducible osteoblastic lineage-specific stat3 knockout mice to study alveolar bone remodeling during orthodontic tooth movement. J Vis Exp. (197), e65613(2023).
  40. Wang, S. K., et al. Itgb6 loss-of-function mutations cause autosomal recessive amelogenesis imperfecta. Hum Mol Genet. 23 (8), 2157-2163 (2014).
  41. Sadeghipour, A., Babaheidarian, P. Making formalin-fixed, paraffin-embedded blocks. Methods Mol Biol. 1897, 253-268 (2019).
  42. Semenoff, T. A., et al. Histometric analysis of ligature-induced periodontitis in rats: A comparison of histological section planes. J Appl Oral Sci. 16 (4), 251-256 (2008).
  43. Oz, H. S., Puleo, D. A. Animal models for periodontal disease. J Biomed Biotechnol. 2011, 754857(2011).
  44. Zhao, P., Xu, A., Leung, W. K. Obesity, bone loss, and periodontitis: The interlink. Biomolecules. 12 (7), 865(2022).
  45. Graves, D. T., Corrêa, J. D., Silva, T. A. The oral microbiota is modified by systemic diseases. J Dent Res. 98 (2), 148-156 (2019).
  46. Yoshimi, K., Mashimo, T. Application of genome editing technologies in rats for human disease models. J Hum Genet. 63 (2), 115-123 (2018).
  47. Vandamme, T. F. Rodent models for human diseases. Eur J Pharmacol. 759, 84-89 (2015).
  48. Liberman, D. N., Pilau, R. M., Orlandini, L. F., Gaio, E. J., Rösing, C. K. Comparison of two methods for alveolar bone loss measurement in an experimental periodontal disease model in rats. Braz Oral Res. 25 (1), 80-84 (2011).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Мышиная модель прогрессирующего периодонтита, индуцированного нейлоновой лигатурой во втором верхнем моляре
Свяжитесь с нами
Рекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

Авторские права © 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.