Методическая статья

Минимально инвазивная техника с двойным живым узлом для моделирования ишемии-реперфузионного повреждения миокарда у крыс

789 просмотров

⸱

DOI:

10.3791/68430

⸱

25 июля 2025 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Shaanxi Key Laboratory of Chinese Medicine Fundamentals and New Drugs Research, School of Pharmacy, Shaanxi University of Chinese Medicine, 2People's Hospital of Ningxia Hui Autonomous Region, Ningxia Medical University

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

В данной работе мы предлагаем схему индуцирования ишемии-реперфузионного повреждения миокарда путем нацеленного на левую переднюю нисходящую коронарную артерию (ПМЖ) двойного активного лигирования спирали, которая может быть высвобождена in vitro для реперфузии по требованию без вторичной торакотомии и является минимально инвазивной.

Аннотация

Модель ишемии-реперфузионного повреждения миокарда (ИМ/РИ) имеет большое значение в изучении патофизиологических механизмов инфаркта миокарда и содействии разработке соответствующих лекарственных препаратов. Однако среди широко используемых методов моделирования традиционный метод лигирования коронарных артерий с помощью полиэтиленовой трубки имеет существенные недостатки. Для развязывания лигатуры необходимо снова открыть грудную клетку, что не только отнимает много времени, но и наносит существенный ущерб подопытным животным и может легко привести к их гибели. Целью данного исследования является внедрение усовершенствованного метода подготовки моделей. При этом методе левая передняя нисходящая коронарная артерия (ПМЖ) перевязывается с помощью двойной спирали «живого узла», и «живой» узел может быть раскрыт in vitro для достижения реперфузии, что позволяет избежать повторной инвазивной процедуры. Методы оценки, такие как мониторинг электрокардиограммы (ЭКГ), определение эхокардиографии (МЭ) в М-режиме, Эванс Блю и окрашивание 2,3,5-трифенит-тразолиумхлоридом (EB-TTC), показали, что этот метод может индуцировать стабильный ИМ/РИ. Эта улучшенная схема модели MI/RI отличается простотой и быстротой, а также высоким уровнем успешности моделирования. В целом, он предлагает практическое и ценное руководство для исследователей, занимающихся исследованиями MI/RI.

Введение

По данным Всемирной организации здравоохранения, ишемическая болезнь сердца занимает значительное место в глобальном бремени сердечно-сосудистых заболеваний, характеризуясь высокой заболеваемостью, высокой смертностью и высокой частотой осложнений. Более того, болезнь демонстрирует все более молодую тенденцию. Статистические данные некоторых развитых стран показывают, что заболеваемость ишемической болезнью сердца в возрастной группе от 35 до 40 лет увеличилась примерно на 15-20% за последнее десятилетие. Методы реперфузии, такие как медикаментозный тромболизис, интервенционная терапия и аортокоронарное шунтирование, безопасны, эффективны и широко используются. Однако резкое восстановление кровотока часто усугубляет структурное и функциональное повреждение ишемизированного миокарда, приводя к каскаду неблагоприятных исходов. К ним относятся апоптоз и некроз кардиомиоцитов, аритмии и систолическая дисфункция, которые в конечном итоге завершаются ишемией-реперфузионным повреждением миокарда (ИМ/РИ)1,2. Частота поражения ИМ/РИ достигает 25%-30%, и механизм его развития до конца не выяснен3. Таким образом, изучение эффективных стратегий профилактики и лечения стало серьезной проблемой, которую необходимо решать в области сердечно-сосудистых заболеваний.

Животные модели имеют первостепенное значение в исследованиях сердечно-сосудистых заболеваний. Они служат незаменимыми инструментами для выяснения патологических механизмов ИМ/РИ и для разработки новых терапевтических стратегий4. Надежность и стабильность животной модели ишемии-реперфузионного повреждения миокарда напрямую влияют на успешную трансляцию и применение стратегий лечения в клинической практике. Левая передняя нисходящая коронарная артерия (ПМЖ) является распространенным сосудом, пораженным ишемией миокарда5. Модель ИМ/РИ, построенная путем лигирования ПМЖ, очень схожа с патогенезом и патологическим процессом ишемии-реперфузионного повреждения миокарда человека6. Среди этих моделей традиционный метод лигирования коронарных артерий с помощью полиэтиленовой трубки широко использовался в предыдущих исследованиях. Его широкое применение можно объяснить такими преимуществами, как равномерное распределение силы лигирования и степень защиты сосудистого эндотелия7. Однако, несмотря на свои многочисленные преимущества, детали эксплуатации остаются предметом споров среди многих исследователей.

При традиционном методе перевязки коронарных артерий с помощью полиэтиленовой трубки грудную клетку необходимо вновь открыть, чтобы развязать лигатуру во время реперфузии. В настоящее время существует два основных метода операции: классический метод торакотомии и модифицированный малоинвазивный метод лигирования. Классический метод торакотомии требует масштабного разреза грудной клетки, чтобы полностью обнажить сердце для лигирования6. Модифицированный малоинвазивный метод лигирования использует специальные инструменты для завершения лигирования через меньший разрез8. На стадии реперфузии классический метод торакотомии требует повторного вскрытия грудной клетки для развязки лигатуры, что не только занимает много времени, но и наносит тяжелую травму подопытным животным и может привести к их смерти. Кроме того, повторная торакотомия может спровоцировать такие осложнения, как инфекция, мешая точности экспериментальных результатов 7,9. Более того, поскольку степень каждой операции торакотомии трудно полностью согласовать, это увеличит вариабельность экспериментальных данных. Что касается применения модифицированного минимально инвазивного метода лигирования, то, несмотря на меньший разрез, процедура представляет значительные технические сложности. Он требует, чтобы экспериментаторы обладали высококвалифицированными техническими знаниями и полагались на высококлассные прецизионные инструменты, такие как стереомикроскоп. При попытке в замкнутом пространстве без помощи таких инструментов существует повышенный риск непреднамеренного повреждения окружающих тканей. Это, в свою очередь, может подорвать стабильность и достоверность экспериментальных результатов.

Следовательно, существует острая потребность в усовершенствованном модельно-подготовительном подходе для решения этих проблем. В данном исследовании представлен усовершенствованный метод моделирования MI/RI. Метод включает в себя использование двойной спирали с живым узлом для перевязки ПМЖ и позволяет in vitro высвобождать живой узел для достижения реперфузии, тем самым устраняя необходимость во второй торакотомии. Характеризуясь простотой в эксплуатации и легкостью в освоении, этот метод может последовательно вызывать ишемическое повреждение миокарда, предлагая ценный ориентир и вдохновение для исследователей в области ИМ/РИ.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Протокол эксперимента был проведен в соответствии с рекомендациями Комитета по использованию лабораторных животных и Комитета по уходу и использованию институциональных животных в Университете традиционной китайской медицины Шэньси (рекордный номер: SUCML20240820006). Все данные исследований на животных были задокументированы в соответствии с рекомендациями ARRIVE. Для исследования были использованы самцы крыс Sprague Dawley (SD) массой от 250 г ± 20 г в возрасте 6-8 недель. Особенности использования животных, реагентов и оборудования приведены в Таблице материалов.

1. Предоперационная подготовка

  1. 1.1. Проводить голодание: Подвергать крыс 8-часовому периоду голодания со свободным доступом к воде
  2. Калибровка и взвешивание: точное измерение массы тела с помощью электронных весов (с точностью 0,1 г) для расчета дозы анестетика.
  3. Вызвать анестезию: ввести 20% раствор уретана путем внутрибрюшинного введения в дозе 0,4 мл на 100 г массы тела с помощью стерильного шприца объемом 2,5 мл; Введите 1 см латерально к вентральной средней линии.
  4. Подтвердите анестезию: Зажмите заднюю лапу стерильными щипцами; Отсутствие рефлекса отведения конечностей подтверждает глубокую анестезию.

2. Мониторинг электрокардиограммы (ЭКГ) (Рисунок 1, Шаг 1)

  1. Обездвижите крысу в положении лежа на спине: Закрепите туловище и конечности в «позе с вытянутыми конечностями» с помощью медицинской клейкой ленты на операционном столе.
  2. Подсоедините электроды: подкожно введите стерилизованные иглы электродов в следующей последовательности: правая передняя конечность (подключена к белому электроду), правая задняя конечность (подключена к черному электроду) и левая задняя конечность (подсоединена к красному электроду). Впоследствии прикрепите эти электроды к монитору ЭКГ в отведении II. Убедитесь, что установлен стабильный базовый уровень и что комплексы QRS четко видны на мониторе.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Поддерживайте непрерывный мониторинг ЭКГ на протяжении всей процедуры. Оценивайте глубину анестезии и состояние крысы в режиме реального времени с помощью аномалий формы волны.

3. Депиляция и дезинфекция в области хирургического вмешательства (Рисунок 1, Шаг 2)

  1. Механическая эпиляция: С помощью электрической машинки для стрижки удалите шерсть с шеи и левой грудной клетки (остаточная длина ≤0,5 мм).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Держите лезвие под углом 30° и двигайтесь против направления роста волос.
  2. Химическая депиляция: равномерно нанесите крем для депиляции на открытые участки кожи в течение 2 минут. Тщательно удалить стерильным скребком с последующим импульсным промывкой с помощью шприца объемом 2,5 мл с физиологическим раствором 37 °C. Повторите 3 раза, пока не останется остатков.
  3. Ступенчатая дезинфекция: Продезинфицируйте кожу три раза концентрическими кругами (от внутреннего к внешнему) смесью 75% этанола и йодофора (1:1) с использованием стерильных ватных шариков.

4. Настройка параметров вентилятора

  1. Предоперационная проверка оборудования: Подключите контур аппарата ИВЛ к Y-образному адаптеру трахеальной трубки.
  2. Отрегулируйте параметры ( Рисунок 1, Шаг 3): Установите видоспецифичные параметры: дыхательный объем 3,0 мл, частота дыхания 80 вдохов/мин и соотношение вдохов-выдохов (I:E) 2:1.
  3. Проверьте проходимость контура: активируйте аппарат искусственной вентиляции легких и погрузите конец контура в солевой раствор. Наблюдайте за ритмичным образованием пузырьков. Если они отсутствуют, систематически проверяйте наличие утечек и устраняйте неполадки.

5. Интубация трахеи

  1. Положение разреза: Накиньте операционное поле стерильной тканью. Подтяните кожу подщитовидного хряща острыми щипцами и сделайте продольный разрез длиной 2,5 см вдоль трахеи с помощью прямых ножниц.
  2. Послойная диссекция: Втяните кожу стерильными щипцами (левая рука) и выполните поверхностную прогрессивную диссекцию микроножницами (правая рука).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Ограничьте первый слой эпидермисом и дермой; Избегайте повреждения мышечного слоя.
  3. Воздействие на трахею (Рисунок 1, Шаг 4): Используйте гемостатические щипцы для тупого рассечения платизмы и ремневых мышц, чтобы обнажить 4-5 трахейных хрящей. Мобилизуйте трахею с помощью щипцов и подложите под нее силиконовую трубку для стабилизации.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Сонная артерия и блуждающий нерв могут быть видны с обеих сторон трахеи, поэтому избегайте повреждения этих структур во время операции.
  4. Интубация трахеи ( Рисунок 1, Шаг 5): С помощью микроножниц создайте поперечный Ω-образный разрез (примерно 1/3 окружности) между 3-м и 4-м кольцами хряща трахеи. Быстро введите силиконовую эндотрахеальную трубку 14 г, совместив маркер глубины с краем разреза.
    ПРИМЕЧАНИЕ: После интубации синхронизируйте движения грудной клетки с ритмом аппарата искусственной вентиляции легких. Контролируйте давление в дыхательных путях и частоту дыхания на предмет аномалий. Отрегулируйте настройки аппарата ИВЛ или проверьте проходимость трубки при возникновении отклонений.

6. Подготовка межреберного разреза

  1. Отметьте место разреза: С помощью стерильного хирургического маркера очертите левую границу грудины в 3-4-м межреберье (определяется путем пальпации точки максимального апикального импульса). Нарисуйте продольную линию длиной 3,0 см.
  2. Послойное рассечение: Приподнимайте кожу стерильными щипцами и делайте надрез вдоль отмеченной линии с помощью стерильных ножниц. Введите гемостатические щипцы подкожно под углом 30° и выполните тупое рассечение параллельно межреберному пространству для отделения мышечного слоя.
  3. Транссекция ребер: Пересеките 3-е и 4-е ребра и межреберные мышцы с помощью микроножниц. Примечание: Если произошло кровоизлияние в межреберную артерию, немедленно приложите стерильный ватный тампон с сильным давлением в течение 60 с для достижения гемостаза10.

7. Локализация и перевязка левой передней нисходящей артерии (ПМЖ)

  1. Подтвердите место перевязки (Рисунок 1, Шаг 6): Расширьте межреберье до 4 см с помощью стернального ретрактора, чтобы обнажить сердце. Аккуратно рассеките перикард (идентифицируйте ткань тимуса как белую структуру над сердцем). Располагайте ПМЖ на 2 мм ниже средней точки буквы «V», образованной легочным конусом (коническая прорузия правой ушной раковины) и левой ушной раковиной (треугольная клапанная структура).
  2. Калибровка иглы (Рисунок 1, Шаг 7-1): Зажмите полипропиленовый шов 6-0 (с иглой) с помощью микрощипцов. Введите миокард на 1 мм латерально к среднедистальному ПМЖ под углом 15° относительно поверхности миокарда (глубина: 1 мм; ширина: 2 мм), продвигаясь справа налево.
  3. Техника двойного скользящего узла (Рисунок 1, Шаг 7-1 - 7-5): После того, как лигатурная нить была пропущена через миокард, скатайте один конец лигатурной нити с игольчатым кончиком в катушку с микроскопическими щипцами, а другой конец проденьте в спираль и аккуратно потяните за нее, чтобы затянуть фиксацию. Снова завяжите другой конец лигатурной нити, повторив вышеуказанную операцию, чтобы сформировать структуру с двойным узлом, и убедитесь, что два конца лигатурной нити остаются параллельными друг другу за пределами грудной полости.
    ПРИМЕЧАНИЕ: В процессе подтяжки микропинцет использовался для постепенной затяжки с мягким и равномерным усилием, в то время как наблюдались изменения цвета миокарда для определения степени ишемии, чтобы избежать чрезмерного напряжения, ведущего к разрыву сосуда или небезопасному перевязке. Успешное построение модели было подтверждено наблюдением ишемической бледности передней стенки/апикальной области левого желудочка и устойчивым подъемом сегмента ST ≥ 0,2 мВ на электрокардиограмме, а 30-минутный ишемический таймер был запущен сразу после подтверждения успешного лигирования.

8. Наложение швов и восстановление отрицательного давления в грудной клетке

  1. Закрытие ребер: Снимите стернальный ретрактор. Закройте межреберные мышцы вокруг ребер 3-4 с помощью рассасывающегося шва 4-0 по схеме непрерывной фиксации (интервал стежков 2 мм).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Избегайте контакта между лигационным швом и закрывающими швами, чтобы предотвратить вмешательство в реперфузию.
  2. Закрытие мышечного слоя и эвакуация воздуха: Аппроксимируйте большие и малые мышцы поверхностных грудных мышц швом 4-0. Перед окончательной затяжкой введите безыгольный шприц объемом 2,5 мл в последнее отверстие для шва, чтобы отасадить внутригрудной воздух, пока ассистент закрепляет шов.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Контролируйте движение грудной клетки для спонтанного дыхания (на что указывает асинхронный ритм относительно аппарата искусственной вентиляции легких).
  3. Закрытие и дезинфекция кожи: Непрерывно накладывать шов на кожу 4-0. Продезинфицируйте три раза, следуя рекомендациям Протокола 3.3.

9. Отключение аппарата искусственной вентиляции легких

  1. Экстубация: Медленно извлеките эндотрахеальную трубку, наблюдая за спонтанным дыханием.
  2. Закрытие трахеи и мышц: Шов на хрящевые кольца трахеи накладывается продольно с помощью шва 4-0 для обеспечения герметичного прилегания. Повторите нагрузку на мышцы шеи.
  3. Закрытие и дезинфекция кожи (Рисунок 1, Шаг 8): Закройте кожу шеи швом 4-0. Продезинфицируйте с помощью стерильных тампонов, пропитанных этанолом и повидон-йодом. Снимите простыни и переложите крысу на грелку с температурой 38 °C для реперфузии.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Если спонтанное дыхание не удается, повторно вставьте эндотрахеальную трубку и повторите шаги 8.1-8.3 перед повторной попыткой экстубации.

10. Ишемия-реперфузия

  1. Ослабьте лигатуру (Рисунок 1, Шаг 9): После 30 минут ишемии развяжите первый узел, потянув горизонтально за лигатурную проволоку на одном конце обвязочной иглы, затем развяжите второй узел, потянув за лигатурную проволоку на другом конце, а затем потянув горизонтально из стороны в сторону, чтобы убедиться, что нет сопротивления, доказывающего, что двойной узел был успешно развязан.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Если требуется двойное окрашивание EB-TTC, лигатурную линию вытягивать нельзя.
  2. Валидация реперфузии: Подтвердите разрешение сегмента ST на ЭКГ как доказательство успешной реперфузии12.

11. Определение эхокардиографии (МЭ) в М-режиме 10

  1. Подготовка к процедуре: Через 2 ч после реперфузии оцените глубину анестезии и при необходимости дополните ее. Обездвижите крысу в положении лежа на спине и нанесите 2 мм геля для ультразвука 37 °C на прекардиальную область.
  2. Сбор данных: Питание от ультразвуковой системы. Выберите предустановленный протокол, установите зонд MX250 на частоту 18 МГц и запишите изображения движения левого желудочка в M-режиме. Сохраняйте изображения соответствующим образом.
  3. Анализ данных: Рассчитайте фракцию выброса левого желудочка (ФВЛЖ), фракционное укорочение (ЛЖЛ), конечный систолический диаметр (LVIDs), конечный диастолический диаметр (LVIDd) и ударный объем (SV) с помощью системного программного обеспечения.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Сбор данных из ≥3 последовательных сердечных циклов; Сообщайте о средних значениях для статистической строгости.

12. Окрашивание синим Эванса и 2,3,5-трифенит-тразолиумхлоридом (EB-TTC)

  1. Повторная интубация: последовательно снимите швы с кожи шеи, мышц и трахеи. Вставьте эндотрахеальную трубку и подключите ее к аппарату искусственной вентиляции легких для поддержания дыхания.
  2. Повторная торакотомия: Снимите швы с кожи груди, мышц и ребер. Используйте грудной ретрактор, чтобы расширить межреберье и полностью обнажить сердце.
  3. Религация артерии ПМЖ: Повторная лигация артерии ПМЖ; подтвердить успешное лигирование путем наблюдения за апикальной бледностью и стойким подъемом сегмента ST на ЭКГ.
  4. Введите БЭ: С помощью инсулинового шприца объемом 0,5 мл аспирируйте 0,3 мл 1,5% раствора Evans Blue. Затем быстро рассеките дугу аорты, введите иглу шприца в аорту, и закрепите ее микрогемостатическим зажимом. Затем введите раствор Evans Blue и понаблюдайте за сердцем на предмет равномерного окрашивания в синий цвет.
  5. Иссечение сердца: через 30 с после инъекции иссекайте сердце стерильными ножницами. Немедленно погрузите его в солевой раствор и многократно промойте, чтобы удалить остатки крови и Evans Blue. Заморозьте сердце при температуре -80 °C.
  6. Разрежьте сердце: После 20 минут замораживания удалите сердце. С помощью хирургического лезвия отрежьте пять поперечных срезов толщиной 1 мм перпендикулярно длинной оси сердца от вершины до основания.
  7. Морилка TTC: Дайте ломтикам сбалансироваться до комнатной температуры. Переложите их в янтарную центрифужную пробирку объемом 50 мл, содержащую 1,5% раствор TTC. Инкубируйте пробирку в предварительно нагретом термостатическом шейкере при температуре 37 °C в течение 30 минут в защищенных от света условиях.
  8. Получение и анализ изображения: После окрашивания зафиксируйте срезы в параформальдегиде на 12 часов. Делайте снимки с высоким разрешением и количественно оценивайте площадь инфаркта (IA), зону риска (AAR) и общую площадь левого желудочка (LV) с помощью программного обеспечения Image J. Рассчитайте отношение инфаркта миокарда как IA/(AAR+IA) и отношение риска ишемии как (AAR+IA)/LV, следуя методологии, описанной Cai et al12.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

ЭЛЕКТРОКАРДИОГРАММА
Электрокардиограмма регистрировалась на протяжении всего процесса от до перевязки сердца крысы до 120 мин после ишемии-реперфузии. Изменения на электрокардиограмме показаны на рисунке 2А. Во время ишемии сегмент ST показывал восходящее возвышение, а зубец T был высоким и заостренным. После реперфузии подъем сегмента ST постепенно снижался.

МЕНЯ

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Лигирование коронарных артерий, классический метод построения модели ишемии-реперфузионного повреждения миокарда, имеет большое значениев исследованиях сердечно-сосудистых заболеваний. С 1980-х годов метод лигирования коронарных артерий с помощью полиэтиленовой трубки, впервые предложенный Ямамото и др., широко применяется в научно-исследовательских лабораториях по всему миру. Этот метод имеет ряд преимуществ, включая контролируемую силу лигирования, визуализирова...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

Эта работа была поддержана Программой инновационных талантов в области науки и технологий Университета китайской медицины Шэньси (No 2024-CXTD-03), Исследовательскими проектами в области традиционной китайской медицины провинции Шэньси (No 2024-CXTD-03), Управлением исследований традиционной китайской медицины провинции Шэньси (No 2024-CXTD-03). SZY-KJCYC-2025-JC-043) и Программа исследований и разработок Департамента науки и технологий провинции Шэньси (No 2024CY-JJQ-36).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
0,5 мл инсулинового шприца Уси Юшоу Медицинское оборудование Ко.https://e.tb.cn/h.6NJ9o4dBdpXt4bT?tk=YobMVflhtgI Используется для абсорбции БЭ и введения через дугу аорты;
2,3,5-трифенит-тразолиумхлоридShanghai Yuanye Biotechnology Co., Ltd.S19026Для окрашивания сердца 
2,5 мл одноразовый стерильный шприцRobust Ping An Medical Technology Co., Ltd.20231230Используется для аспирации анестетиков и обезболивания крыс путем внутрибрюшинной инъекции; используется для извлечения воздуха из грудной полости крыс во время операций на закрытой грудной клетке.
4 % параформальдегидаGuangzhou Viggs Biotechnology Co., Ltd.SW002Используется для фиксации сердца после окрашивания
шва 4-0Shandong Haidike Medical Products Co., Ltd.Для сшивания ребер, мышц и кожи 
6-0 шовный материалJiangsu Beiyueshen Medical Device Co., Ltd.https://e.tb.cn/h.6NKQ9XNVD1J56np?tk=R8NKVfPJIUMДля лигирования LAD 
Игла для иглоукалывания Пекин Лоя Шаньчуань Медицинское оборудование Ко.https://e.tb.cn/h.6NQZzrSfBLQ9OYZ?tk=yW5aVfPuXP3Используется для прокалывания кожи конечностей крысы и подключения электродной линии электрокардиограммы.
Средство для удаления шерсти животныхJinyun New Concept Household Products Co.https://e.tb.cn/h.6NJe67IEMgxPfUt?tk=9boIVflb6mm Для эпиляции 
Крем для депиляцииGuangzhou Miyanshe Brand Management Co., Ltd.https://3.cn/2fP-knZw Для глубокой эпиляции 
ЭтанолТяньцзинь Тяньли Химический реагент Ко., Лтд.https://e.tb.cn/h.6NnxsK8EAvBV1Zu?tk=ja1XVflVhfM Для дезинфекции 
Evans BlueSigmaE2129Для окрашивания сердца 
Кровоостанавливающие щипцы Шанхайская компания «Эйд Медикал Инструмент»https://e.tb.cn/h.6NQkHWD25dxnsv4?tk=xA1VVflTXjWИспользуется для фиксации инсулинового шприца и остановки крови дуги аорты.
Медицинские микроножницыNanjing Ji Xiaobao Trading Co.https://e.tb.cn/h.6NJu33PgNRJCO1L?tk=smZjVflr730Используется для разрезания трахеи и ребер;
Медицинский микроскопический пинцетNanjing Ji Xiaobao Trading Co.https://e.tb.cn/h.6Nqn2dyJIUjUN6n?tk=MEMaVflGK0bДля защемления шва 6-0 для лигата LAD
Medical scalpelShandong Boryuida Analytical Instrument Co.https://e.tb.cn/h.6NJyfb9CWH5Sj32?tk=HW0kVflEyOL Для разрезания сердца при окрашивании EB-TTC
Медицинские ножницыShandong Boryuida Analytical Instrument Co.https://e.tb.cn/h.6NJCLzckQnXXEPe?tk=CtcTVflFJQw Используется для разрезания крысиной кожи и наложения швов.
Медицинская хирургическая тканьHenan Meideqi Medical Equipment Co.https://e.tb.cn/h.6NqItN9yA0xttr9?tk=cCCIVflzFjr Используется для обеспечения стерильной операционной области 
Медицинская лентаZhejiang Aotai Medical Technology Co.https://e.tb.cn/h.6N93etxLPPlJ9ZQ?tk=DfblVflAo5dИспользуется для фиксации крыс 
Медицинский пинцетJiangsu Videocon Medical Technology Co.https://e.tb.cn/h.6NreHXQv2YTJkIl?tk=S1imVfO17QVИспользуется для оценки степени анестезии у крыс, зажимания кожи, ребер и других тканей, а также отшелушивания подкожных мышц и перикарда.
Медицинский ультразвуковой соединитель Qingdao Hainuo Biological Engineering Co., Ltd.https://3.cn/2fPpwB-j Используется для повышения эффективности ультразвукового пропускания
Обычный физиологический раствор Шаньдун Циду Фармацевтическая Компания, Лтд.https://e.tb.cn/h.6NMCUFJIti2EsiU?tk=FXBBVfOV1iNИспользуется для мытья остатков крема для депиляции 
Портативный цветной допплеровский ультразвуковой аппаратVINNO Technology Co., Ltd.Винно 6 Используется для определения М-режима эхокардиографии у крыс 
Повидон йодШаньдун Аньцзе Хай-тек Технология дезинфекции Ко., Лтд.https://e.tb.cn/h.6NqAb4WsT3xjMb9?tk=mhFxVfO4G1GДля дезинфекции 
Крысиная хирургическая пластинаShandong Boryuida Analytical Instrument Co.https://e.tb.cn/h.6NQyjjGNGInF3Eu?tk=qgQwVflHilH Используется для фиксации крыс 
Холодильник холодильный Чжэцзян Чжисин Сверхнизкотемпературные технологииDL-78Для замораживания сердца 
Силикагелевые трубкиShandong Chengwu Sano Medical Equipment Co.https://e.tb.cn/h.6N9L82XWNGlgDDG?tk=pWzCVfOQIgNИспользуется для поддержки трахеи;
Аппарат искусственного дыхания для мелких животныхAnhui Zhenghua Biological Equipment Co., Ltd.DW-3000HИспользуется для помощи крысам в дыхании после торакотомии 
Стерильный ватный тампон Qingdao Hainuo Biological Engineering Co., Ltd.https://e.tb.cn/h.6NJbKVmD0b7QhTf?tk=wMceVfOTrBX Для обеззараживания этанолом и повидон-йодом 
стерильный ватный тампонQingdao Hainuo Biological Engineering Co., Ltd.https://e.tb.cn/h.6NMAQz1252EJHSM?tk=nyfLVfOUSBi Используется для очистки от остатков крови в грудной полости 
Теплоизоляционное одеялоGuangdong Zhongke Life Science & Технологическая компанияhttps://e.tb.cn/h.6N9OyBVWuSXTUDy?tk=d6OqVfOSTlIДля послеоперационной изоляции тела крыс 
Торакотомический ретракторGuangdong Zhongke Life Science & Технологическая компанияhttps://e.tb.cn/h.6NQra4Z9UG8dnvo?tk=6eFUVfllCFWИспользуется для обнажения хирургического поля зрения 
Электрокардиограмма типа IIChengdu Taimeng Technology Co., Ltd.BL-420NДля мониторинга электрокардиограммы 
УретанШаньдун Кеюань Биохимическая Компания, Лтд.U820333Используется у крыс под наркозом 
Генератор постоянной температуры водыShanghai Boxun Medical Biological Instrument Co., Ltd.SHZ-BДля окрашивания сердца 

Ссылки

  1. Hausenloy, D. J., Yellon, D. M. Myocardial ischemia-reperfusion injury: a neglected therapeutic target. J Clin Invest. 123 (1), 92-100 (2013).
  2. Ibáñez, B., Heusch, G., Ovize, M., Van de Werf, F. Evolving therapies for myocardial ischemia/reperfusion injury. J Am Coll Cardiol. 65 (14), 1454-1471 (2015).
  3. Algoet, M., et al. Myocardial ischemia-reperfusion injury and the influence of inflammation. Trends Cardiovasc Med. 33 (6), 357-366 (2023).
  4. Rahman, A., et al. Large animal models of cardiac ischemia-reperfusion injury: Where are we now. Zool Res. 44 (3), 591-603 (2023).
  5. Luan, F., et al. Cardioprotective effect of cinnamaldehyde pretreatment on ischemia/ reperfusion injury via inhibiting NLRP3 inflammasome activation and gasdermin D mediated cardiomyocyte pyroptosis. Chem Biol Interact. 368, 110245(2022).
  6. Xu, Z., Alloush, J., Beck, E., Weisleder, N. A murine model of myocardial ischemia-reperfusion injury through ligation of the left anterior descending artery. J Vis Exp. (86), e51329(2014).
  7. Xu, Z., McElhanon, K. E., Beck, E. X., Weisleder, N. A murine model of myocardial ischemia-reperfusion injury. Methods Mol Biol. 1717, 145-153 (2018).
  8. Marek-Iannucci, S., Thomas, A., Gottlieb, R. A. Minimal invasive pericardial perfusion model in swine: A translational model for cardiac remodeling after ischemia/reperfusion injury. Front Physiol. 11, 346(2020).
  9. Xiong, Y., et al. Decreased MFN2 activates the cGAS-STING pathway in diabetic myocardial ischaemia-reperfusion by triggering the release of mitochondrial DNA. Cell Commun Signal. 21 (1), 192(2023).
  10. Peng, L., et al. Cardioprotective activity of ethyl acetate extract of Cinnamomi Ramulus against myocardial ischemia/reperfusion injury in rats via inhibiting NLRP3 inflammasome activation and pyroptosis. Phytomedicine. 93, 153798(2021).
  11. Xu, H., et al. Resveratrol pretreatment alleviates myocardial ischemia/reperfusion injury by inhibiting STIM1-mediated intracellular calcium accumulation. J Physiol Biochem. 75 (4), 607-618 (2019).
  12. Cai, W., et al. Alox15/15-HpETE aggravates myocardial ischemia-reperfusion injury by promoting cardiomyocyte ferroptosis. Circulation. 147 (19), 1444-1460 (2023).
  13. Zhao, G., et al. A novel anti-inflammatory strategy for myocardial ischemia-reperfusion in rats with cinnamamide derivative compound 7. Int Immunopharmacol. 136, 112370(2024).
  14. Chen, L. Q., Wang, W. S., Li, S. Q., Liu, J. H. Minocycline relieves myocardial ischemia-reperfusion injury in rats by inhibiting inflammation, oxidative stress and apoptosis. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 26 (8), 3001-3009 (2022).
  15. Liu, Z., et al. Shuangshen ningxin formula attenuates cardiac microvascular ischemia/reperfusion injury through improving mitochondrial function. J Ethnopharmacol. 323, 117690(2024).
  16. J'Undra, N., Pegues, M. M., et al. Disparities in 180-day infection rates following coronary artery bypass grafting and aortic valve replacement. J Thorac Cardiovasc Surg. S0022-5223 (25), 00017-00020 (2025).
  17. Peng, J. -F., et al. Targeted mitochondrial drugs for treatment of myocardial ischaemia-reperfusion injury. J Drug Target. 30 (8), 833-844 (2022).
  18. Sun, Q., et al. A minimally invasive approach to induce myocardial infarction in mice without thoracotomy. J Cell Mol Med. 22 (11), 5208-5219 (2018).
  19. Olatoye, O., Yasir, A. -O., Gregory, D. R. Initial experience of left atrial appendage ligation using penditure in a minimally invasive cardiac surgical approach. Innovations. 20 (1), 19-21 (2025).
  20. Wagenaar, A., Wiegerinck, R. F., Heijnen, V. V. T., Post, M. J. Percutaneous microembolization of the left coronary artery to model ischemic heart disease in rats. Lab Animal. 45 (1), 20-27 (2016).
  21. Kainuma, S., et al. Influence of coronary architecture on the variability in myocardial infarction induced by coronary ligation in rats. PLoS One. 2 (8), e0183323(2017).
  22. Chen, J., Ceholski, D. K., Liang, L., Hajjar, R. Abstract 130: The Diversity of Coronary Artery and Myocardial Infarction in Mice. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 37 (Suppl_1), A130(2021).
  23. Lysenko, A. V., Salagaev, G. I., Lednev, P. V., Belov, Y. V. The results of coronary artery bypass grafting by using of surgical microscope. Pirogov J Surg. 6, 5-10 (2019).
  24. Guo, Y., et al. Genetic background, gender, age, body temperature, and arterial blood pH have a major impact on myocardial infarct size in the mouse and need to be carefully measured and/or taken into account: results of a comprehensive analysis of determinants of infarct size in 1,074 mice. Basic Res Cardiol. 107 (5), 288(2012).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Видео скоро будет доступно

Похожие статьи