Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Исследование влияния инфракрасной терапии на кости после высокоинтенсивных тренировок на беговой дорожке

701 просмотров

⸱

DOI:

10.3791/68502

⸱

22 августа 2025 г.

 ,  ,  , 
1School of Exercise and Health, Shanghai University of Sport, 2College of Athletic Performance, Shanghai University of Sport, 3Institute of Orthopedic Surgery, Xijing Hospital, Air force Medical University

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

Длительные высокоинтенсивные тренировки на беговой дорожке препятствуют формированию костей и способствуют резорбции костей у мышей, что приводит к снижению костной массы. В этой статье мы представляем протокол для изучения влияния инфракрасной терапии на изменения в костном метаболизме, вызванные высокоинтенсивными физическими упражнениями. Необходимы дальнейшие механистические исследования для выяснения основных молекулярных путей.

Аннотация

Костная ткань является важным несущим органом человеческого организма. Умеренные физические упражнения увеличивают костную массу за счет механической нагрузки, в то время как высокоинтенсивные упражнения могут подавить ее. Инфракрасная терапия улучшает кровообращение, уменьшает боль / воспаление и способствует восстановлению тканей. В данной статье представлен протокол для выяснения модулирующих эффектов инфракрасной терапии на высокоинтенсивные метаболические расстройства скелета, вызванные физическими упражнениями, и их молекулярные механизмы. В этом исследовании 24 6-недельные мыши были случайным образом разделены на контрольную (CTR, N = 8), высокоинтенсивные тренировки на беговой дорожке (HIT, N = 8) и инфракрасную терапию после высокоинтенсивных упражнений на беговой дорожке (IRT, N = 8). Последние две группы обучались в течение 8 недель. В первую неделю мыши прошли акклиматизацию на беговой дорожке. На второй неделе мыши тренировались со скоростью 24 м/мин в течение 50 мин, которая увеличивалась со скоростью 1 м/мин и 10 мин каждую неделю, пока не достигла 28 м/мин в течение 80 мин, с градиентом 5° в течение 6 дней. На пятой неделе мыши группы HIT были подвергнуты воздействию инфракрасной терапии всего тела, при этом температура контролировалась в диапазоне от 42 °C до 45 °C. Весь процесс лечения длился ~40 минут, 3 раза в неделю. Результаты показали, что в группе HIT по сравнению с группой CTR объем кости/общий объем и трабекулярное число были значительно уменьшены, трабекулярное разделение было значительно увеличено, остеогенные гены Atf4, Runx2 и Ocn были подавлены, а также связанные с остеокластами гены Ctsk и Mmp9 были усилены. Результаты микрокомпьютерной томографии мышей группы IRT не показали существенной разницы, но связанные с остеогенезом гены Alp, Atf4, Runx2, Ocn и Osx были повышены в бедренной кости. Кроме того, был подавлен ген Ctsk , связанный с остеокластами. Длительные высокоинтенсивные упражнения на беговой дорожке могут уменьшить костную массу. Хотя инфракрасная терапия не влияет на минеральную плотность костей, она может улучшить метаболизм костей.

Введение

Остеопороз (ОП) является одним из наиболее распространенных системных метаболических заболеваний костей, особенно распространенным среди пожилых людей, и представляет собой серьезную глобальную проблему здравоохранения1. ОП характеризуется в первую очередь снижением минеральной плотности костной ткани (МПК), качества кости и прочности костей, что увеличивает риск переломов костей2. Профилактика и лечение ОП имеют решающее значение для улучшения качества жизни человека, включая такие подходы, как фармакологическая терапия, адекватное потребление кальция и витамина D, сокращение курения и потребления алкоголя, а также ранние физические упражнения для увеличения и поддержания пикового уровня костной массы 3,4.

Кость, как структурный каркас тела, обеспечивает фундаментальную форму и защищает внутренние органы. В рамках регуляции нервной системы кость облегчает различные движения во время мышечных сокращений. На протяжении всей жизни кость подвергается непрерывному формированию, резорбции и ремоделированию. Остеокласты постоянно резорбируют старую кость, в то время как остеобласты образуют и минерализуют новую кость. Эти процессы тесно связаны и взаимно регулируются, поддерживая динамический баланс в костном обороте5. Многочисленные исследования показали, что соответствующие физические упражнения (такие как аэробные упражнения и тренировки с отягощениями) могут эффективно предотвращать и лечить ОП6. Физические упражнения влияют на метаболизм костей, модулируя механическую нагрузку на скелет (например, удар о землю, удар и напряжение в месте прикрепления мышц) и биохимические факторы кровообращения (такие как гормоны и цитокины), тем самым способствуя здоровью костей7. Тем не менее, длительные высокоинтенсивные упражнения могут негативно повлиять на здоровье костей, что приведет к потере костной массы. Например, после 8 недель бега на беговой дорожке с высокой, умеренной и низкой интенсивностью (со скоростью 15 м/мин) на мышиной модели с травмой вращательной манжеты плеча объем/общий объем кости (BV/TV), трабекулярное число (Tb.N) и толщина трабекуляра (Tb.Th) были самыми низкими в группе высокой интенсивности по сравнению с контрольной группой и группой умеренной/низкой интенсивности. в то время как трабекулярное разделение (Tb.Sp) было самым высоким. Этот вывод свидетельствует о том, что высокоинтенсивные тренировки оказывают пагубное воздействие на восстановление вращательной манжеты плеча и костную массу8.

Инфракрасная терапия (IRT) является одним из наиболее широко используемых принципов в реабилитационных физиотерапевтических устройствах в Китае. Способствует местному кровообращению, ускоряет всасывание воспалительных веществ, усиливает снабжение питательными веществами 9,10. В качестве неинвазивной физиотерапии, IRT в последние годы привлекла широкое внимание в области спортивной медицины, реабилитационной науки и исследований костного метаболизма. ИРТ чаще используется в клинических условиях, чем другие вмешательства. Исследования показали, что заживление костной ткани является сложным процессом, включающим в себя разрешение воспаления и клеточную регенерацию, которую можно разделить на три этапа: воспаление, пролиферация и ремоделирование. Воспалительная фаза в первую очередь характеризуется ангиогенезом; пролиферативная фаза включает в себя пролиферацию остеобластов и образование новой кости; А фаза ремоделирования отмечена постепенным увеличением вновь образованных трабекул внутри каллуса, при этом мозоль моста через разрыв разрыва полностью подвергается оссификации11. После перелома кровь, поступающая из сосудов в ткани, должна быстро всасываться, что стимулирует разрастание остеобластов и формирование костной ткани. Эти жизненно важные процессы требуют благоприятной внутренней среды и достаточного количества питательных веществ для поддержки. Определенная степень термотерапии может эффективно облегчить выполнение этих функций12. В клинической практике инфракрасная терапия может использоваться как вспомогательное средство для лечения остеопороза и помощи в облегчении связанных с ним симптомов, но ее исследования костной массы относительно ограничены. В данной статье представлен протокол для выяснения модулирующих эффектов инфракрасной терапии на высокоинтенсивные метаболические расстройства скелета, вызванные физическими упражнениями, и их молекулярные механизмы. Таким образом, эта работа, основанная напредыдущих исследованиях, строит модель высокоинтенсивных упражнений на беговой дорожке у мышей для наблюдения за изменениями костной массы и дальнейшего изучения того, может ли термотерапия смягчить потерю костной массы, вызванную высокоинтенсивными упражнениями на беговой дорожке. Цель состоит в том, чтобы предоставить справочный материал для профилактики и лечения ОП на основе физических упражнений.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Это исследование получило этическое одобрение Комитета по этике лабораторных животных Шанхайского университета спорта (No 102772023DW016) и соответствовало национальным/институциональным правилам исследований на животных. Двадцать четыре 5-недельных самца мышей C57BL/6 были размещены в помещении для животных класса SPF в Шанхайском университете спорта. Мышей содержали при температуре 22 ± 2 °C, влажности 40-70% с 12-часовым циклом света/темноты и предоставляли пищу/воду в неограниченном количестве . Все биологические материалы, включая кости, кровь и образцы, обработанные реагентами для экстракции РНК, должны быть собраны в автоклавные пакеты уровня II биологической опасности, стерилизованы при 121 °C в течение 60 минут перед утилизацией, с надлежащей документацией в лабораторных журналах отходов.

1. Животные

  1. После 1 недели акклиматизации стратифицировать мышей по массе тела и случайным образом распределить их по трем группам: контрольная (группа CTR, N = 8), высокоинтенсивные тренировки на беговой дорожке (HIT, N = 8) и инфракрасная терапия после высокоинтенсивных упражнений на беговой дорожке (IRT, N = 8).

2. Высокоинтенсивные тренировки на беговой дорожке и протокол термотерапевтических вмешательств

  1. Подавайте CTR группу в статических условиях без вмешательства.
  2. После 1 недели акклиматизации подвергните мышей в группах HIT и IRT 8 неделям высокоинтенсивных тренировок на беговой дорожке. Первую неделю считают фазой адаптации: заставляют мышей в группе беговой дорожки бегать со скоростью 12, 15 и 18 м/мин в течение 20, 30 и 40 мин соответственно с наклоном 0°. На второй неделе заставьте мышей тренироваться со скоростью 24 м/мин в течение 50 мин, а затем увеличивайте их упражнения со скоростью 1 м/мин и 10 мин каждую неделю, пока она не достигнет 28 м/мин в течение 80 мин с градиентом 5°. Проводите такой режим упражнений 6 дней в неделю, с отдыхом по воскресеньям (табл. 1).
  3. Для группы IRT после 4 недель упражнений на беговой дорожке введите инфракрасную терапию (IRT) на пятой неделе.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Во время инфракрасного облучения строго поддерживайте температуру тела мыши в диапазоне от 42 °C до 45 °C.
    1. Обезболивайте мышей с помощью внутрибрюшинной инъекции, чтобы вызвать потерю сознания.
    2. Облучайте все тело мышей с помощью инфракрасного терапевтического аппарата, следя за тем, чтобы температура мышей поддерживалась в диапазоне от 42 °C до 45 °C (обнаруживается детектором температуры). Проводите весь процесс обработки в течение ~40 минут, 3 раза в неделю (понедельник, среда и суббота), в течение 4 недель до тех пор, пока не будут взяты образцы.

3. Забор тканей

ПРИМЕЧАНИЕ: Препарированные образцы костей мышей должны быть немедленно сохранены в жидком азоте или при температуре -80 °C для сохранения целостности РНК.

  1. Сбор и хранение образцов сыворотки крови
    1. Взвесьте всех мышей с помощью электронных весов.
    2. Обезболивайте мышей с помощью внутрибрюшинной инъекции трибромэтанола.
      ПРИМЕЧАНИЕ: При работе с трибромэтанолом всегда готовьте свежие растворы под вытяжным шкафом для химикатов, надев нитриловые перчатки и защитные очки, храните при температуре 4 °C в светозащищенных янтарных флаконах и утилизируйте неиспользованные порции через утвержденные каналы химических отходов.
    3. Соберите образцы крови асептически с помощью пункции сердца для получения 0,5-0,6 мл крови. Сначала сбрейте волосы на груди мыши и продезинфицируйте йодофором. Затем пальпируют точку максимальной пульсации сердца и вводят иглу 4-5 G, прикрепленную к шприцу, в левую грудную полость между третьим и четвертым межреберьями. Наконец, когда вы наблюдаете, как кровь самопроизвольно поступает в шприц, примените мягкую аспирацию, чтобы завершить процедуру забора крови.
    4. Дайте образцам крови свернуться в течение 10 минут при комнатной температуре, затем центрифугируйте при 1000 × г в течение 15 минут. Аликвотируйте и храните надосадочную жидкость (сыворотку) при температуре -80 °С.
  2. Сбор и сохранение образцов костей
    1. Используйте стерильные микроножницы и пинцет для рассечения бедренных костей и голени. Аккуратно отклейте мышцы и сухожилия от поверхности кости по продольной оси, не соскребая надкостницу, и уделите особое внимание защите пластины роста.
    2. Промойте все образцы с помощью 1x PBS (pH 7,4). Зафиксируйте левую бедренную кость в 4% параформальдегиде (PFA) на 24 часа. Используйте левую бедренную кость для измерения минеральной плотности кости перед дальнейшим анализом.
    3. Поместите правую бедренную кость в предварительно маркированные микроцентрифужные пробирки объемом 1,5 мл и храните при температуре -80 °C.
    4. Используйте правую бедренную кость и обе большеберцовые кости для анализа костного метаболизма.

4. Измерение параметров

  1. Измерение уровня глюкозы в крови
    1. Перед сбором тканей возьмите образцы крови из хвостовой вены мышей. Измерьте уровень глюкозы в крови с помощью портативного анализатора глюкозы.
  2. Измерение уровня лактата в крови
    1. Сразу после заключительного занятия на беговой дорожке соберите образцы крови из хвостовой вены. Определите уровень лактата в крови с помощью портативного анализатора лактата.
  3. Тест Ротарод
    ПРИМЕЧАНИЕ: После того, как все вмешательства были завершены, мы провели ротародные тесты на мышах из каждой группы. При проведении тестирования ротарод мы выбираем разные группы мышей для одновременного тестирования, чтобы обеспечить постоянное время отдыха, а не сначала тестируем одну группу мышей, чтобы мы могли исключить различия, вызванные временем отдыха.
    1. Поместите мышей на вращающийся аппарат так, чтобы голова была обращена в противоположном направлении вращения, чтобы провести одну попытку адаптации.
    2. Установите скорость вращения ротарод на 30 об/мин; После запуска аппарат равномерно разгоняется до заданной скорости.
    3. Запишите время до первого падения мыши. Используйте этот показатель для оценки способности мышей к координации движений.
  4. Измерение трабекулярной костной массы бедренной кости
    1. Удалите мышечную и соединительную ткань, прикрепленную к костям, с помощью стерильных микроножниц и щипцов и промойте PBS.
    2. Проведение микрокомпьютерной томографии для оценки параметров трабекулярной кости в левой бедренной кости с использованием следующих параметров сканирования: микрокомпьютерная томография проводилась при давлении 55 кВ/145 мкА (8 Вт) в режиме непрерывного вращения с изотропными вокселями 9 мкм, полем зрения 31,0 мм, экспозицией 250 мс, собственным разрешением (388 слоев/сегмент) и калибровкой ЧД 1 200 мгГА/см³.
    3. Измерьте следующие результаты трабекулярной и кортикальной микроархитектуры.
      1. Импортируйте восстановленные изображения в CT-vox для трехмерного (3D) рендеринга и визуализации.
      2. Используя многопланарные виды (корональная, сагиттальная и поперечная плоскости), отделяют и извлекают кортикальную и трабекулярную кость в отдельные области ткани, чтобы обеспечить независимый анализ их морфометрических характеристик.
      3. Количественная оценка ключевых микроструктурных параметров, включая объем/общий объем кости (BV/TV), трабекулярное число (Tb.N) и толщину трабекулярной (Tb.Th) трабекулярную сепарацию (Tb.Sp), для оценки развития кости и статуса минерализации.
  5. Срез парафина и гистологическое окрашивание
    1. Промойте три левые бедренные кости из каждой группы PBS и декальцифицируйте их при 10% ЭДТА (pH 7,15) до полной декальцинации.
    2. Обезвожьте образцы с помощью дифференцированных концентраций этанола (70%, 90%, 95% и 100%), очистите их ксилолом, инфильтрируйте парафином и заделайте их (см. Таблицу 2).
    3. Режьте серийные участки толщиной 5,0 мкм.
    4. Окрашивание гематоксилином и эозином (HE)
      1. Сначала подвергните ломтики депарафинизации ксилола, градиентной регидратации этанолом, а затем замочите их в гематоксилине на 5 минут.
      2. Постирайте для удаления излишков пятна, дифференцируйте в 1% спирте соляной кислоты в течение 3 с, окрашивайте эозином в течение 3 минут, обезвоживайте с помощью сортированного этанола, очищайте ксилолом и скрепляйте нейтральной камедью (см. Таблицу 3).
      3. Получение микроскопических изображений для наблюдения за структурой костной ткани, морфологией и распределением клеток в полости костного мозга.
    5. Окрашивание тартрат-резистентной кислой фосфатазой (TRAP)
      1. Очистите ломтики от парафина с помощью ксилола и регидратируйте градиентным этанолом.
      2. Инкубируйте срезы с реагентом TRAP в духовке при температуре 37 °C в течение 1 ч, обезвоживайте и прозрачьте их (см. Таблицу 4).
      3. Нанесите каплю нейтральной смолы на предметное стекло, затем осторожно опустите покровное стекло под углом 45° от одного края, чтобы свести к минимуму образование пузырьков. Дайте установленному предметному стеклу полностью высохнуть в вытяжном шкафу, прежде чем приступать к микроскопическому наблюдению и визуализации.
  6. Анализ экспрессии генов в костной ткани большеберцовой кости
    1. Изоляция костного мозга
      1. Рассеките голени мышей и удалите лишние мышцы/фасции с помощью стерильных инструментов.
      2. Поместите очищенные голени в микроцентрифужную пробирку объемом 1,5 мл.
      3. Разрежьте оба конца кости стерильными ножницами.
      4. Промойте костный мозг в измельчительную трубку, содержащую стерильные шлифовальные шарики, используя 1x PBS.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Промойте полость костного мозга PBS до тех пор, пока полость не станет бледной и не будет удалена вся видимая ткань костного мозга.
    2. Экстракция РНК
      ПРИМЕЧАНИЕ: Отходы хлороформа/изопропанола должны быть разделены в специальных емкостях с галогенированными растворителями и никогда не смешиваться с отбеливателем из-за образования токсичных газов.
      1. Добавьте 1 мл реагента для экстракции РНК в пробирку. Гомогенизируйте образцы с помощью настольного гомогенизатора (импульсы 30 с, 4 °C). Инкубируйте лизаты при комнатной температуре в течение 5 минут.
      2. Добавьте 200 мкл хлороформа, вортексируйте в течение 15 с и инкубируйте при температуре 4 °C в течение 30 минут.
      3. Центрифуга при 12 000 × г в течение 30 мин при 4 °C.
      4. Перенесите верхнюю водную фазу в новую микроцентрифужную пробирку. Добавьте 500 μL изопропанола, переверните в 10 раз для перемешивания и выдерживайте при 4 °C в течение 20 минут.
      5. Центрифуга при 12 000 × г в течение 30 минут при 4 °C. Осторожно выбросьте надосадочную жидкость, не потревожив гранулу РНК.
      6. Промойте гранулу 1 мл 75% этанола (приготовленного на воде, обработанной DEPC). Кратковременно обработайте вихрем и центрифугируйте при 7 500 × g в течение 5 мин при 4 °C.
      7. Высушите гранулу на воздухе в течение 5-10 минут в вытяжном шкафу (не допускайте пересушивания).
      8. Растворите РНК в 20-50 μл воды, обработанной DEPC.
      9. Измерьте концентрацию и чистоту (соотношение А260/А280 ≥ 1,8) с помощью спектрофотометра.
    3. Синтез кДНК
      1. Синтезируйте кДНК с использованием 1 г общей РНК и набора для обратной транскрипции.
      2. Храните кДНК при температуре −20 °C для количественного ПЦР-анализа.
    4. Анализ количественной ПЦР
      1. Проанализировать экспрессию генов по остеогенным маркерам: Alp, Atf4, Runx2, Ocn, Osx; маркеры остеокластов: Nfatc1, Mmp9, Ctsk; цитокины: Tnf-α, Il-1β, Il-10 (см. табл. 5).
      2. Используйте последовательности грунтов, перечисленные в таблице 6 (включая температуру отжига).

5. Статистический анализ

  1. Представление всех данных в виде среднего значения ± стандартной погрешности среднего значения (среднее значение ± SEM).
  2. Используйте Бонферрони и Тамхани для апостериорных тестов.
  3. Проведите односторонний дисперсионный анализ для оценки различий между группами.
  4. Считаем P < 0,05 статистически значимым.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Усталость из-за длительных высокоинтенсивных тренировок на беговой дорожке
Мы создали долгосрочную модель высокоинтенсивных упражнений для бега на платформе для изучения изменений скелета при физической нагрузке и влияния инфракрасной терапии на кости (рис. 1A). В конце вмешательства у мышей наблюдались изменения массы тела. По сравнению с массой тела мышей в группе CTR, в группе HIT не было выявлено существенных изменений, в то время как в группе IRT произошло значительн...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Из всех метаболических заболеваний костей ОП является наиболее распространенной и серьезной глобальной проблемой общественного здравоохранения11. ОП возникает, когда остеобластические и остеокластические функции дисфункциональны, и его распространенность высока18. Физические упражнения все чаще подчеркиваются врачами и исследователями как потенциальная стратегия профилактики и лечения ОП, учитывая их низкую стоимость и небольшое количество ...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

У авторов нет конфликта интересов, о котором можно было бы сообщить.

Благодарности

Работа выполнена при поддержке Национального фонда естественных наук Китая (NoNo 82172475, 82222046, 82272608); Шанхайская ключевая лаборатория развития и поддержания спортивных компетенций человека (Шанхайский университет спорта) (No 11DZ2261100).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Прибор для дальней инфракрасной терапии  Медицинские технологии CofoeЗатем инфракрасное излучение применялось в качестве источника тепла для нагрева крови в подкожной капиллярной сети. Температура терапии контролировалась в диапазоне от 42 до °°; C и 45° C, и вся процедура длилась примерно 40 минут, 3 раза в неделю
Микрокомпьютерная томографияСКАНКО Медикал АГVIVACT80Микрокомпьютерная томография проводилась для оценки параметров трабекулярной кости в левой бедренной кости, включая BV/TV, Tb.N, Tb.Th, Tb.Sp и толщину коры головного мозга (Ct.Th).
Беговая дорожка для мышиАньхой Чжэнхуа Biological Apparatus Facilities Co., LtdБеговая дорожка высокой интенсивности у мышей
Машина для заделки парафинаЛейкаМашина для заделки парафина может внедрять ткани
Слайсер для парафинаЛейкаПарафиновый микротом может разрезать ткани
Набор реагентов PrimeScript RT 
СПСС 
Трибромэтанол Авертин
TRIzol Точная биологияAG21101/AG21102

Ссылки

  1. Khosla, S., Hofbauer, L. C. Osteoporosis treatment: recent developments and ongoing challenges. Lancet Diabetes Endocrinol. 5 (11), 898-907 (2017).
  2. Rachner, T. D., Khosla, S., Hofbauer, L. C. Osteoporosis: now and the future. Lancet. 377 (9773), 1276-1287 (2011).
  3. Portier, H., Benaitreau, D., Pallu, S. Does physical exercise always improve bone quality in rats. Life (Basel). 10 (10), 217(2020).
  4. Reid, I. R., Billington, E. O. Drug therapy for osteoporosis in older adults. Lancet. 399 (10329), 1080-1092 (2022).
  5. Srivastava, R. K., Sapra, L., Mishra, P. K. Osteometabolism: Metabolic alterations in bone pathologies. Cells. 11 (23), 3943(2022).
  6. Cauley, J. A., Giangregorio, L. Physical activity and skeletal health in adults. Lancet Diabetes Endocrinol. 8 (2), 150-162 (2020).
  7. Rubin, C. T., Lanyon, L. E. Regulation of bone formation by applied dynamic loads. J Bone Joint Surg Am. 66 (3), 397-402 (1984).
  8. Chen, H., et al. Effect of exercise intensity on the healing of the bone-tendon interface: A mouse rotator cuff injury model study. Am J Sports Med. 49 (8), 2064-2073 (2021).
  9. Shemilt, R., et al. Potential mechanisms for the effects of far-infrared on the cardiovascular system - a review. Vasa. 48 (4), 303-312 (2019).
  10. Yu, S. Y., et al. Biological effect of far-infrared therapy on increasing skin microcirculation in rats. Photodermatol Photoimmunol Photomed. 22 (2), 78-86 (2006).
  11. Jurić, F., et al. Thermal changes during clavicle fracture healing in children. J Clin Med. 13 (23), 7213(2024).
  12. Einhorn, T. A., Gerstenfeld, L. C. Fracture healing: mechanisms and interventions. Nat Rev Rheumatol. 11 (1), 45-54 (2015).
  13. Yan, K., et al. Establishment and identification of an animal model of long-term exercise-induced fatigue. Front Endocrinol (Lausanne). 13, 915937(2022).
  14. Proia, P., et al. Lactate as a metabolite and a regulator in the central nervous system. Int J Mol Sci. 17 (9), 1450(2016).
  15. Westerblad, H., Bruton, J. D., Katz, A. Skeletal muscle: energy metabolism, fiber types, fatigue and adaptability. Exp Cell Res. 316 (18), 3093-3099 (2010).
  16. Zarrouk, N., et al. Assessment of acute neuromuscular fatigue manifestations and functional performances after heavy resistance exercise. J Sports Med Phys Fitness. 61 (12), 1596-1604 (2021).
  17. Warden, S. J., Davis, I. S., Fredericson, M. Management and prevention of bone stress injuries in long-distance runners. J Orthop Sports Phys Ther. 44 (10), 749-765 (2014).
  18. Aibar-Almazán, A., et al. Current status of the diagnosis and management of osteoporosis. Int J Mol Sci. 23 (16), 9465(2022).
  19. Chang, X., Xu, S., Zhang, H. Regulation of bone health through physical exercise: Mechanisms and types. Front Endocrinol (Lausanne). 13, 1029475(2022).
  20. Klein-Nulend, J., Bacabac, R. G., Bakker, A. D. Mechanical loading and how it affects bone cells: the role of the osteocyte cytoskeleton in maintaining our skeleton. Eur Cell Mater. 24, 278-291 (2012).
  21. Pacifici, R. Estrogen, cytokines, and pathogenesis of postmenopausal osteoporosis. J Bone Miner Res. 11 (8), 1043-1051 (1996).
  22. Xie, M., et al. Advancements in photothermal therapy using near-infrared light for bone tumors. Int J Mol Sci. 25 (8), 4139(2024).
  23. Peris, P. Stress fractures. Best Pract Res Clin Rheumatol. 17 (6), 1043-1061 (2003).
  24. Bourrin, S., et al. Adverse effects of strenuous exercise: a densitometric and histomorphometric study in the rat, (1985). J Appl Physiol. 76 (5), 1999-2005 (1994).
  25. Koenen, K., et al. Sprint interval training induces a sexual dimorphism but does not improve peak bone mass in young and healthy mice. Sci Rep. 7, 44047(2017).
  26. Bertels, J. C., He, G., Long, F. Metabolic reprogramming in skeletal cell differentiation. BoneRes. 12 (1), 57(2024).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Свяжитесь с нами
Рекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

Авторские права © 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.