Хирургический метод вмешательства в субклапанную структуру с помощью трансаортального подхода у нормальных свиней Бама

Summary

В данном исследовании представлен хирургический метод вмешательства в структуру субклапанного клапана с использованием таргетного сечения тканей с помощью трансаортального подхода у нормальных свиней Бама.

Abstract

Аномалии субклапанной структуры, приводящие к изменениям левожелудочкового выходного тракта (LVOT) и гипертрофии миокарда, являются характерными анатомическими особенностями структурных заболеваний сердца, таких как гипертрофическая кардиомиопатия (ГКМ). В данном исследовании установлен хирургический метод вмешательства в структуру аорты с помощью трансаортального подхода у нормальных свиней Бама. Животных получали у сертифицированного поставщика экспериментальных свиней в Пекине (Лицензия No SCXK (Jing) 2018-0008). Этот метод был подтверждён на трёх здоровых миниатюрных свиней Bama в возрасте примерно 33-35 недель, весящих 30-35 кг на момент операции. Процедура включает среднюю стернотомию и разрез передней стенки аорты, выполненные под поддержкой сердечно-лёгочного шунтирования (CPB), гипотермическую остановку сердца и прямую визуализацию LVOT и субвальвулярных областей. Для ремоделирования структуры подклапана используются целенаправленное извлечение тканей, локализация и разрез.

Весь хирургический процесс включает индукцию анестезии, установку центрального венозного катетера и мочевыводящего катетера, дезинфекцию и драпировку хирургического участка, медианную стернотомию, перикардный разрез и сердечную мобилизацию. CPB формируется через дренаж левого предсердия и ретроградную коронарную синусовую перфузию. После разреза передней стенки аорты левый желудочек проходит через аортальный клапан, и при остановке сердца проводится вмешательство в субклапанную ткань. Процедура завершается закрытием аорты, возобновлением сердечного удара, отменой CPB и закрытием грудной клетки. В течение всей процедуры сохранялась гемодинамическая стабильность, и животное оставалось в хорошем состоянии без интраоперационной смертности. После операции поверхности порезов стали гладкими, а окружающие структуры остались целыми.

Этот метод демонстрирует высокую воспроизводимость и процедурную управляемость, обеспечивая стабильную модель хирургического вмешательства для изучения субклапанной структуры. Он также предоставляет техническую платформу для проведения гистологического анализа, хирургической валидации и оценки стратегии вмешательства.

Introduction

Аномалии субклапанных структур левого желудочка играют решающую роль при различных сердечно-сосудистых заболеваниях, особенно у пациентов с гипертрофической кардиомиопатией (ГКМ), где субклапанные аномалии способствуют обструкции левого желудочкового выходного тракта (LVOT) и гипертрофии межжелудочковой^{перегородки 1}. Эти структурные изменения не только ухудшают полнение и выброс желудочков, но и могут привести к серьёзным осложнениям, таким как желудочковые аритмии, внезапная сердечная смерть и хроническая сердечная^{недостаточность. 2}. Клинически для обструкции обструкции LVOT и улучшения прогноза часто применяется трансаортальная хирургическая резекция тканей левого желудочка. Однако лишь немногие исследования систематически изучали физиологические изменения и процессы ремоделирования желудочков после этого хирургического вмешательства, что ограничило его применение в фундаментальных исследованиях и трансляционной терапии.

Различные модели на животных широко применялись для изучения структурных изменений субклапанов и стратегий вмешательства. Эти модели значительно способствовали пониманию молекулярных и тканевых механизмов; Однако они демонстрируют заметные ограничения в моделировании клинических кардиохирургических процедур, особенно в достижении точной экспозиции и целенаправленного разрезания тканей левого желудочка. Проблемы, такие как анатомические искажения, недостаточная хирургическая точность и ограниченный отбор образцов тканей, остаются ^4,5,6,7. Эти недостатки препятствуют более широкому применению таких моделей в исследованиях механизмов хирургического вмешательства, послеоперационного структурного вмешательства и оценки биоматериалов.

В последние годы модели животных, моделирующие вмешательство в структуру левого желудочкового субвалвулярного механизма с помощью трансаортального подхода, остаются крайне ограниченными. Существующие исследования в основном ограничиваются модификацией современных хирургических методов, пытаясь вмешаться в локализованные структуры желудочковых тканей с помощью минимально инвазивных путей или энергетических методов. Однако эти подходы существенно отличаются от клинической хирургии по хирургическим путям, интраоперационным кардиологическим заболеваниям и стратегиям тканевого вмешательства, что затрудняет точное воспроизведение структурных, гемодинамических, реперфузионных и механических стрессовых реакций, вызванных хирургическими^{вмешательствами 8,9}. Поэтому в этом исследовании мы установили воспроизводимую хирургическую модель крупных животных, проведя медианную стернотомию и разрез передней стенки аорты под поддержкой сердечно-легочного шунтирования (CPB) у нормальных свиней Бама. Эта модель позволяет напрямую экспозиционировать левожелудочковый выходной тракт и субклапанную область, а затем контролируемое разрезание тканей для стимулирования вмешательства в субклапанную структуру, предоставляя клинически значимую платформу для будущих исследований.

В частности, эта модель была разработана для воспроизведения процедурного пути и операционной среды клинической трансаортальной септальной миэктомии, используемой у пациентов с гипертрофической обструктивной кардиомиопатией (HOCM). Она не предназначена для повторения патофизиологии HOCM или использования в качестве модели заболевания, а скорее для воспроизведения операционных условий, при которых проводится субклапанное вмешательство.

Эта модель служит стандартизированной хирургической основой для изучения субклапанных структурных вмешательств, оценки новых кардиохирургических устройств и предоставления воспроизводимой платформы для обучения экспериментальной кардиохирургии, включая хирургическую подготовку по трансаортальному воздействию LVOT и контролируемой субклапанной резекции, а также острые тканевые и гистологические исследования после определённых структурных вмешательств.

Protocol

Все процедуры на животных были одобрены Институциональным комитетом по уходу и использованию животных (IACUC) Китайской академии медицинских наук больницы Фувай под номером одобрения 0106-1-20-ZX(X)-21. Все эксперименты проводились в соответствии с руководящими принципами ARRIVE и Руководством Национального института здоровья по уходу и использованию лабораторных животных. Животных содержали в стандартных условиях окружающей среды (температура 20-26 °C, влажность 40-60%, 12 часов цикл свет/темнота) с свободным доступом к корму и воде.

1. Экспериментальная подготовка животных

1. Приобретите обычных взрослых миниатюрных свинок Bama у сертифицированного поставщика экспериментальных свиней в Пекине (Лицензия No SCXK (Jing) 2018-0008).
   ПРИМЕЧАНИЕ: Этот метод был подтверждён у трёх здоровых миниатюрных свинок Bama в возрасте примерно 33-35 недель, весящих 30-35 кг на момент операции.
2. Разместите животных в стандартной барьерной среде не менее 7 дней до операции для акклиматизации, при контролируемой температуре (20-26 °C), влажности (40-60%) и в 12-часовом цикле свет/темнота, с свободным доступом к корму и воде.
3. Проведите комплексную медицинскую оценку за 24 часа до операции, включая оценку психического состояния, аппетита, фекалий, целостности кожи, походки и дыхательных состояний.
4. Задержите пищу на 12 часов и воду на 4 часа до операции, чтобы снизить риск аспирации во время анестезии.
5. Заполните измерение массы тела и регистрацию идентификации перед операцией, а также запишите исходные жизненные показатели.
6. В день операции переведите животных в операционную зону для установления внутривенного доступа и подготовки к индукции анестезии.

2. Предоперационная подготовка

1. Установка доступа с ушными венами
   1. Перед введением анестезии установите венозный доступ через крайнюю ушную вену следующим образом:
      1. Мягко надавите на проксимальную часть маргинальной ушной вены, чтобы обеспечить венозное заполнение. С помощью внутривенного катетера 22 G (22 GA × 1,00 дюйма; 0,8 × 25 мм) вводите иглу вдоль пути сосуда от дистального сосуда к проксимальному направлении.
      2. Увидев возвращение крови, вынимите стилет и полностью введите катетер в вену. Удалите игольчатый сердечник, подключите трёхступенчатый запорный кран и введите небольшое количество стерильного физиологического раствора для подтверждения педактности.
      3. Убедитесь, что подкожное выпячивание не происходит и инфузия проходит гладко, затем закрепите кран скотчем для стабилизации катетера.
2. Анестезия
   ВНИМАНИЕ: Проверьте достаточную глубину анестезии и потерю рефлексов перед проведением любых инвазивных процедур для предотвращения стресса или боли.
   1. Индуцировать анестезию, вводя 1% раствора пропофола через ушную вену при дозе 2-4 мг/кг. Как только животное теряет способность стоять, снижает сознание и падает, его немедленно переносят в центр операционного стола.
   2. Поставьте животное в положение лежа на спине и закрепите все четыре конечности по бокам операционного стола с помощью ремней для фиксации. Положите мягкие подушечки под спину и шею, чтобы предотвратить компрессионные травмы.
   3. После подтверждения потери сознания введите внутривенно фентанил (3-5 мкг/кг) для обезболивания, затем атракурий (0,2 мг/кг) для расслабления мышц.
   4. Проведите эндотрахеальную интубацию, обнажив гортанку с помощью ларингоскопа. Введите в трахею манжетированную эндотрахеальную трубку соответствующего размера (рекомендуемый внутренний диаметр 6,5–7,5 мм) и продвигайте её к грудному сегменту, чтобы избежать закупорки правого черепного бронха.
   5. Подключите трубку к механическому аппарату ИВЛ. Установите вентилятор на приливный объём 10-12 мл/кг, частоту дыхания 12-16 вдохов в минуту,_FiO2 100% и соотношение I:E 1:2. Перед закреплением эндотрахеальной трубки подтвердите двустороннюю вентиляцию легких.
   6. Поддерживайте анестезию во время операции с помощью непрерывной внутривенной инфузии пропофола (6-10 мг/кг/ч). Корректируйте дозировку фентанила в соответствии с жизненными показателями животного.
   7. Постоянно контролируйте электрокардиограмму (ЭКГ), артериальное давление (АД), насыщение кислородом (_{SpO 2}) и температуру тела (Temp).
   8. Поддерживайте температуру тела на уровне 37 ± 0,5 °C, чтобы снизить метаболический спрос и обеспечить защиту миокарда при кардиопульмональном шунтировании. Поддерживайте_{SpO 2}≥ 95% и поддерживайте артериальное давление в стабильных физиологических пределах.
3. Хирургическая подготовка кисти
   1. Проведите стандартное хирургическое антисептиковое лечение кисти согласно институциональному протоколу. После мытья рук вытирайте руки стерильными хирургическими полотенцами, прежде чем надеть стерильные перчатки.
4. Центральная венозная катетеризация под руководством направляющей проводки
   ВНИМАНИЕ: Соблюдайте строгую асептическую технику во время катетеризации. Аккуратно обращайтесь с иглами и направляющими, чтобы избежать случайных травм.
   1. Выберите правую наружную яремную вену для венозного доступа. Тщательно продезинфекцируйте местную область кожи, затем введите 5 мл 2% лидокаина подкожно для получения местной анестезии.
   2. Соедините иглу с шприцом и введите её под углом 20-30° вдоль яремной вены в сторону черепа.
   3. Медленно продвигайте иглу при непрерывном вдыхании, пока не будет обнаружено венозное возвращение крови. Аккуратно введите направляющую проволоку в сосуд через иглу. Стабилизируйте направляющую проволоку и аккуратно вынимите иглу. Продвиньте дилатор на направляющую проволоку, чтобы расширить прокол, затем уберите дилататор.
   4. Введите центральный венозный катетер поверх направляющего провода в вену. Продвигайте катетер на глубину примерно 10–15 см, обеспечивая расположение кончика катетера внутри полой вены черепа, не входя в правое предсердие, чтобы избежать вмешательства во время интраоперационной окклюзии сердца.
   5. Снимите направляющую проволоку. Подтвердите проходность каждого люмена с помощью аспирации. Промите каждый просвет гепаринизированным физиологическим раствором (50 МЕ/мл) и зафиксируйте катетер тем же раствором для поддержания проходимости.
   6. Закрепите катетер стерильными швами. Нанесите прозрачную стерильную повязку на место прокола. Чётко обозначьте функцию люмена и глубину установки катетера.
5. Катетеризация мочи
   1. После индукции анестезии и позиционирования промежности продезинфицируйте стерильными ватными шариками, замочёнными в растворе повидона-йода, и дайте ей высохнуть естественным путём. Наместите стерильную завесу на окружающую территорию, обнажая только уретральное отверстие. Используйте только сук свиней для катетеризации уретры.
   2. В стерильных условиях откройте набор катетера Фолея. Наденьте стерильные перчатки, смажьте кончик катетера и аккуратно введите его в уретру. Когда наблюдается поток мочи, продвигайте катетер ещё на 1-2 см. Введите стерильную дистиллированную воду в баллон катетера, чтобы закрепить его на месте. Приложите мягкое натяжение, чтобы подтвердить фиксацию.
   3. Подключите катетер к закрытому дренажному мешку. Закрепите трубку на хвосте или боковой части операционного стола скотчем, чтобы предотвратить натяжение или загрязнение. Запишите время установки катетера и процедурные детали. Во время операции постоянно контролируйте выделение мочи и пропускность дренажа.
6. Драпировка и создание стерильного хирургического поля
   1. Проведите хирургическую антисептику кисти снова в соответствии с клиническими стандартами. После сушки вернитесь на операционный стол.
   2. Сотрудничайте с ассистентом, чтобы украсить хирургическое поле. Сначала разместите маленькие стерильные шторы и закрепите их полотенцами-зажимами. Затем надевайте средние по размеру шторы, закрывая тело, кроме операционной области.
   3. Убедитесь, что открытая область простирается от верхней части грудины до кестифоидного отростка, примерно 20-25 см в длину и 10-12 см в ширину, включая среднюю линию грудины и двусторонние реберные края.
   4. После драпировки снова проведите быструю антисептику для рук. Наденьте стерильные хирургические халаты и перчатки с помощью медсестры. Разместите большое стерильное занавеску с фенестрацией, чтобы открыта только область разреза, а все остальные участки полностью закрыты. Выровняйте фенестрацию с центром разреза и закрепляйте края, чтобы предотвратить утечку жидкости, тем самым завершив создание стерильного хирургического поля.

3. Сердечная воздействие и мобилизация

1. Экспозиция грудной полости
   ВНИМАНИЕ: Защитите руки и глаза оператора во время стернотомии. Убедитесь, что ретрактор наносится медленно, чтобы избежать разрыва тканей или переломов костей.
   1. Сделайте разрез по средней линии вдоль грудины, простирающийся от надгрудинной выемки примерно на 2 см ниже отростка ксифовидного отростка, используя хирургический скальпель для разреза кожи и подкожных тканей. Поддерживайте длину разреза примерно 20 см.
   2. Используйте электрокоагуляторное устройство, чтобы разделить большие мышцы грудной мышцы и надплечник грудины, полностью обнажая переднюю поверхность грудины.
   3. Аккуратно втягивайте боковые ткани с помощью помощника, чтобы поддерживать чистое хирургическое поле.
   4. После обнажения грудины введите нож Лебше под ксифовидный отросток и приложите тягу вверх.
   5. С помощью маленького молотка аккуратно и равномерно постукуйте по проксимальному концу ножа Лебше, чтобы постепенно расщепить грудину по средней линии, двигаясь по черепу, пока не откроется грудная полость.
   6. Поддерживайте непрерывную тягу вверх на протяжении всего процесса, чтобы избежать отклонения или повреждения перикарда. После завершения грудинного деления установите ретрактор Финочиетто и медленно расширяйте грудную полость в обеих сторонах, чтобы расширить рабочее поле. Избегайте чрезмерного втягивания, чтобы предотвратить травмы плевры или переломы рёбер.
2. Сердечная мобилизация
   1. Определите ход двусторонних френических нервов, проходящих вдоль латеральных поверхностей перикарда (рисунок 1A).
   2. Разрезать верхний край перикарда и продлить разрез параллельно длинной оси животного, держа его близко к средней линии, чтобы минимизировать риск повреждения нервов (рисунок 1B).
   3. Проведите тупую дисекцию в обе стороны, чтобы отделить перикард от медиастинальной плевры и прилегающих соединительных тканей.
   4. После завершения вскрытия экспонируйте сердце под прямой визуализацией. Подтвердить чёткую идентификацию ключевых анатомических структур, включая аорту, легочную артерию, левый предсердный придаток, вершину сердца и коронарный синус.
3. Установление кардиопульмонального шунтирования (CPB)
   ВНИМАНИЕ: Убедитесь, что все подключения цепей CPB надёжно защищены и правильно заземлены. Аккуратно обращайтесь с электрическими и перфузионными устройствами, чтобы предотвратить утечку или электрический ток.
   1. После достижения достаточного воздействия сердца наместите шов из сумочной нити у основания левой предсердной конечности. Сделайте небольшой разрез в петле шва и введите венозную дренажную канюлю косо вниз вдоль оси левого предсердия, чтобы создать венозный возвратный путь для кардиопульмонального шунтирования.
   2. Продвигайте канюлю примерно на 3-4 см, чтобы кончик входил в левую предсердную полость. Закрепите канюлю на предсердной конечности с помощью шелковых швов, чтобы предотвратить скольжение или протечки.
   3. Наложите шов на вход в коронарный синус. Создайте небольшой разрез внутри шовной петли и вставьте перфузионную канюлю, которая служит путём притока для кардиоплегии и перфузии миокарда.
   4. Продвигайте перфузионную канюлю примерно на 1-2 см в коронарный синус. Закрепите его шелковыми швами для стабильного положения.
   5. Подключите все канюли к аппарату для кардиопульмонального шунтирования. Заполните схему смесью из 800 мл лактатного раствора Рингера, 1 000 мл раствора сукцинилированного желатина и 2 мл гепарина. Тщательно обезвентилируйте цепь и проведите тест давления для подтверждения устойчивости.
   6. Непрерывно контролировать параметры перфузии и скорость потока на протяжении всей процедуры, а также поддерживать активированное время свертывания (ACT) выше 480 секунд с с помощью системной гепаринизации.
   7. Активируйте венозный возвратный насос для начала частичного венозного дренажа. Постепенно открывайте артериальный насос, чтобы поддерживать давление перфузии на уровне 60-80 мм рт. ст. Убедитесь, что протечки нет и что поток в цепях не прекращается, прежде чем начать полное кардиопульмональное шунтирование.
   8. После достижения стабильного CPB постепенно вводите охлаждённый раствор кардиоплегии с высоким содержанием калия через коронарный синус. Наблюдайте постепенное ослабление сердечных сокращений до полной остановки сердца, когда электрокардиограмма (ЭКГ) не покажет плоскую линию. Запишите время остановки сердца.
   9. Убедитесь, что до начала субвальвулярного вмешательства обеспечены полный электромеханический остановка и достаточное охлаждение миокарда. Начинайте манипуляцию тканями только после подтверждения отсутствия желудочковых сокращений и стабильного состояния остановки.
   10. В этом протоколе назначают однократную дозу кардиоплегии, достаточную для поддержания остановки миокарда на протяжении всего периода субклапанного вмешательства. Повторная дозировка не требуется регулярно из-за относительно короткой продолжительности перекрёстного зажима аорты (примерно 30-40 минут).
   11. Нанесите заранее подготовленную солёную слякоть из дробленного льда на поверхность сердца, чтобы дополнительно снизить температуру миокарда, снизить метаболический спрос и усилить защиту миокарда.

4. Экспозиция левого желудочка и вмешательство в структуру подклапана через доступ к аорте

ВНИМАНИЕ: Осторожно обращайтесь с острыми инструментами и ножницами при разрезе аорты и резке тканей. Избегайте чрезмерного сцепления, которое может повредить окружающие конструкции.

1. После достижения кардиоплегической остановки и гипотермической защиты сделайте поперечный разрез длиной примерно 1,0–1,5 см на передней стенке восходящей аорты, расположенной примерно в 1,5–2,0 см над кольцом аортального клапана и ориентированной перпендикулярно длинной оси аорты.
2. Вставьте два изогнутых листовых крюка в разрез аорты с левой спинной и вентральной сторон соответственно. Аккуратно отведите разрез вбок, чтобы открыть корень аорты и расширить хирургическое поле (рисунок 2A).
3. Введите держатель для иглы с предварительно нагруженным тяговым шовом в операционное поле. Наместите шов на целевую подклапанную ткань для облегчения внутриоперационной тяги и точной локализации.
4. Продвигайте маленькие изогнутые ножницы через разрез аорты вдоль оси аорты к камере левой желудочковой. Используйте тяговой шов для экспонирования целевого субклапанного участка (рисунок 2A).
5. При прямой визуализации направите ножницы горизонтально и контролируемо разрежьте заданные субклапанные структуры (рисунок 2B). Удалите удаленную ткань и передайте её ассистенту.
6. Тщательно промыйте левую желудочковую камеру и просвет аорты стерильным физиологическим раствором, чтобы удалить остатки тканей.
7. Закройте разрез аорты непрерывными впитывающимися швами. Начинайте с одного конца разреза и последовательно проводите иглою через интиму и среду, используя равномерно расположенные стежки для обеспечения полного, водонепроницаемого закрытия. После завершения шва снова полийте внешнюю поверхность участка закрытия стерильным физиологическим раствором для очистки участка.

5. Возобновление сердечно-сосудистой системы и отлучение от сердечно-лёгочного шунтирования

ВНИМАНИЕ: Перед восстановлением кровообращения, чтобы предотвратить воздушную эмболию, подтвердите полное удаление сердечных камер и перфузионных линий.

1. После завершения закрытия аорты постепенно снижайте частоту перфузии коронарных пазух и прекращайте инфузию кардиоплегии. Одновременно постепенно снижайте скорость потока насоса сердечно-легочного шунтирования (CPB), чтобы обеспечить прогрессивное восстановление спонтанной сердечной активности.
2. Постоянно отслеживайте сердечный ритм с помощью электрокардиографии (ЭКГ) для выявления возвращения синусового ритма или наличие аритмий.
3. После успешного отъёма от CPB обратите системную гепаринизацию, введя протамин для нейтрализации циркулирующего гепарина и восстановления нормальной функции свертывания.
4. Если спонтанное ребиение сердца не происходит в течение нескольких минут, применяйте прямую дефибрилляцию, установив дефибрилляторные лопатки непосредственно на поверхность сердца. Дайте один низкоэнергетический разряд и повторяйте по мере необходимости, пока не восстановится организованная электрическая активность.
5. После восстановления регулярных форм волн ЭКГ оценивайте апикальный импульс, коронарную пульсацию и общую сокращенность миокарда.
6. Когда сердечный ритм стабилизируется и сила сокращения станет удовлетворительной, последовательно удалять канюлю перфузии коронарного синуса и левую предсердную венозную дренажную канюлю. Закройте каждое место канюляции швами для достижения гемостаза.
7. Отключите систему CPB. Запишите общую длительность CPB, время перекрёстного зажима аорты и время до возобновления сердечной терапии.
8. Тщательно промыйте перикардиальную полость стерильным физиологическим раствором и аспирируйте остатки жидкости или тромбы.
9. Перед закрытием грудины разместите две закрытые дренажные трубки внутри перикардиальной полости, разместив по одной с каждой стороны сердца. Выделите дренажные трубы наружу через межреберное пространство и соедините их с внешними дренажными бутылками.
10. Закройте грудину четырьмя нержавеющими стальными проводами в прерванной конфигурации. Затем выполняйте рутинное многослойное закрытие грудной стенки.

Results

Этот хирургический протокол обеспечивает стабильную экспозицию и контролируемое разрезание субклапанных структур внутри левого желудочка. Во время процедуры разрез аорты был точно расположен, а вход через аортальное отверстие позволил чётко визуализировать выходной тракт левого желудочка и сопутствующую подклапанную область. Хирург локализовал область разреза, наложив тракция на заранее наложенный шов и выполнил целенаправленное разрезание подклапанной ткани под прямым зрением с помощью ...

Discussion

Аномалии субклапанной структуры левого желудочка представляют собой критические анатомические изменения у пациентов с гипертрофической кардиомиопатией (ГКМ), приводящие к нарушению лэнтрикулярной комплиансии, повышенному диастолическому давлению и обструкции левого желудочкового выходного тракта (LVOT). Эти структурные аномалии составляют основные патологические основы для клинической сердечной дисфункции и неблагоприятных^{последствий 10,11}

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
0.9% Sodium Chloride Injection	-	-	Используется для орошения и разбавления раствора
Анестезиологический аппарат	-	-	Обеспечивает ингаляционную анестезию и дыхательную поддержку
Анестетики (Пропофол, Фентанил, Атракуриум)	-	-	Используется для введения и поддержания анестезии
Аортальный ретрактор	SINOVIEW	RT37008-25	Используется для оттягивания аорты и улучшения видимости
Атравматические щипцы	SINOVIEW	FC22500-24	Используется для захвата тканей с минимизацией травм
Кардиоплегия раствор (St. Thomas)	-	-	Используется для остановки сердца и его защиты
Апарат и шланги для искусственного кровообращения	-	-	Используется для поддержания циркуляции во время ИКК
Набор для центрального венознаго катетера	-	-	Обеспечивает центральный венозный доступ
Набор для эндотрахеальной интубации и вентилятор	-	-	Поддерживает дыхательные пути во время операции
Плоский крючкообразный ретрактор	SINOVIEW	RT37000-00	Используется для оттягивания тканей в грудной полости
Общий ретрактор	-	-	Используется для оттягивания тканей и экспонирования хирургического поля
Гемостатические щипцы	-	-	Используется для зажимания кровеносных сосудов или тканей для остановки кровотечения
Гепариновая натрия инъекция	-	-	Используется для антикоагулирования
IV катетер · рентгенопаке 22 GA × 1,00 дюйм	BD Angiocath	381123	Используется для установления венозного доступа
Корзина для микрохирургических инструментов	SINOVIEW	90X0003	Используется для хранения и транспортировки микрохирургических инструментов
Минимально инвазивные изогнутые ножницы	SINOVIEW	SC40230-25	Используется в минимально инвазивных процедурах для изогнутых вырезаний
Минимально инвазивные двухшарнирные ножницы	SINOVIEW	SC55001-29	Используется для точного вырезания в глубоких операционных полях
Держатель игол	-	-	Используется для удержания шовных игл во время шитья
Рукоятка и лезвие скальпеля	-	-	Используется для насечения кожи и тканей
Стерильные накладки, шовный материал, перчатки, маски	-	-	Используется для поддержания стерильного хирургического поля
Стерилизационный ящик для точных инструментов	SINOVIEW	90X0401	Используется для очистки и стерилизации хирургических инструментов
Тканевые щипцы (зубчатые/незубчатые)	-	-	Используется для захвата тканей
Тканевые ножницы	SINOVIEW	SC35101-25SC	Используется для общего вырезания тканей
Трехшарнирные микрощипцы	SINOVIEW	FC17010-301	Используется в микрохирургии для тонкой манипуляции
Ультраострые ножницы	SINOVIEW	SC35101-23UC	Используется для точного разделения тканей
Мочевой катетер и мочеприемник	-	-	Используется для дренажа и контроля мочи
Монитор жизненных показателей	-	-	Мониторит ЭКГ, артериальное давление, SpO2, температуру