Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Имплантация вспомогательного устройства левого желудочка (LVAD) у молодых свиней Landrace: модель имплантации детской сердечной недостаточности с помощью LVAD

522 просмотров

⸱

DOI:

10.3791/69151

⸱

16 января 2026 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Cardiac Surgery, Fuwai Hospital, National Center for Cardiovascular Diseases, Chinese Academy of Medical Sciences and Peking Union Medical College, 2Beijing Key Laboratory of Preclinical Research and Evaluation for Cardiovascular Implant Materials, Fuwai Hospital, National Center for Cardiovascular Diseases, Chinese Academy of Medical Sciences and Peking Union Medical College, 3Guangzhou First People's Hospital, The Second Affiliated Hospital of South China University of Technology, 4Department of Cardiac Surgery, Fuwai Yunnan Hospital, Chinese Academy of Medical Sciences, Affiliated Cardiovascular Hospital of Kunming Medical University, 5State Key Laboratory of Cardiovascular Disease, Fuwai Hospital, National Center for Cardiovascular Diseases, Chinese Academy of Medical Sciences and Peking Union Medical College, 6Shenzhen Key Laboratory of Cardiovascular Disease, Fuwai Hospital, Chinese Academy of Medical Sciences, 7Sanya Institute of China Agricultural University

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

В этой статье представлен протокол имплантации левожелудочкового вспомогательного устройства (LVAD) в поросёнка. Эта модель представляет собой эффективный способ изучения имплантации LVAD у детей и раскрытия механизма обратного ремоделирования желудочков в лечении LVAD.

Аннотация

Была создана модель имплантации детского устройства для вспомогательного лечения левого желудочка (LVAD) для моделирования поддержки детских LVAD и изучения механизма обратного ремоделирования сердца. Сердечная недостаточность (ГФ) — распространённое глобальное сердечно-сосудистое заболевание. Имплантация LVAD — важный метод лечения HF. Однако существующие детские модели имплантации LVAD остаются недостаточно развитыми, а механизм лечения LVAD, приводящий к обратному ремоделированию желудочков, остаётся неясен, особенно среди детей, хотя было проведено множество исследований, раскрывающих возможную цель. Поэтому необходимо выяснить механизм, особенно у детей. Хорошая модель служит основой для тестирования функции нового детского LVAD и раскрытия ключевого механизма. Мы разработали модель имплантации LVAD молодой ландрасовой свиньи, которая могла бы использоваться для оценки безопасности и эффективности детских LVAD. После имплантации LVAD помпа LVAD поддерживала стабильный и непрерывный кровоток более месяца. Кроме того, жизненные показатели, включая гемодинамику, были стабильны и находились в пределах идеальных и нормальных диапазонов. Эта модель точно воспроизводит гемодинамические состояния у клинических пациентов после имплантации LVAD. Его можно использовать для отслеживания непрерывных изменений после имплантации LVAD. В то же время он может использоваться для раскрытия реактивности и безопасности имплантации детского LVAD. Этот протокол является простым и стандартным общим процессом создания модели униформизации для исследований имплантации детских LVAD.

Введение

Терапия LVAD повышает выживаемость у пациентов с сердечной недостаточностью и служит мостом к пересадке сердца. LVAD используется взрослым уже десятилетиями, считается, что он восстанавливает функцию сердца за счёт обратного ремоделирования миокарда1. Предыдущие исследования были сосредоточены на взрослых пациентах с имплантациейLVAD 2. Однако детальный молекулярный механизм обратного ремоделирования для лечения LVAD у детей3 оставался неясен. Поэтому необходима хорошая модель для исследований механизмов лечения LVAD, приводящих к обратному ремоделированию. Хотя модели мышей широко используются при оценке лекарств и разработке устройств для сердечно-сосудистых заболеваний, иммунная система, сократимость миокарда, гемодинамика и метаболизм мышей существенно отличаются от человеческих. Кроме того, частота сердечных сокращений мышей в покое может достигать 500-600 ударов в минуту, что в 6-10 раз выше человеческого. Имплантация желудочковских вспомогательных устройств слишком быстрая. Кроме того, размер левого желудочка и кровеносных сосудов у мышей очень мал. Крайне сложно спроектировать и имплантировать трубы, которые были бы достаточно тонкими, гибкими, биосовместимыми и способными обеспечить достаточный поток и низкое сопротивление. Поэтому необходимо разрабатывать животные модели, более характерные для человека. С точки зрения системы кровообращения, свиньи очень похожи на человека, что может быть хорошим модельным животным для исследований заболеваний системы кровообращения человека или имплантации инструментов, а модели свиней широко используются в доклинических трансляционных исследованиях желудочковых вспомогательныхустройств 4,5. Наш протокол установил новую детскую модель имплантации LVAD у молодых свиней рода landrace.

Кроме того, детская сердечная недостаточность (ФГ) затрагивает 0,87-7,4 на 100 000 детей6. Хотя трансплантация сердца (ГТ) является стандартным методом лечения ГФ, некоторые дети не могут сразу получить донорское сердце. Поэтому детская имплантация LVAD необходима для жизнеобеспечения детей с ВЧ. Использование LVAD увеличивается в педиатрии, но эти пациенты часто бывают сложными и могут нуждаться в лечении атриовентрикулярнойблокадой 7. Кроме того, не существует подходящего детского LVAD для детей с HF, а прошлые клинические результаты показали, что частота крупных кровотечений, инсультов, инфекций и почечной дисфункции была выше, чем увзрослых 8. В предыдущих краткосрочных клинических испытаниях использование детских LVAD приводило к таким проблемам, как ишемический инсульт и тяжёлые аритмии, что указывает на необходимость дополнительной оптимизации детских LVAD9. Поэтому необходимо создать детскую модель имплантации LVAD. Это может стать важной моделью для новых испытаний LVAD или исследований механизмов обратного ремоделирования. Молодые свиньи ландрейс относительно небольшого размера, с весом сердца примерно 100 г, аналогично весу детей. Их можно использовать для оценки безопасности и эффективности имплантируемых желудочковых вспомогательных устройств, специально разработанных для детей. Поэтому молодой ландрас является подходящим сортом для исследований имплантации детских LVAD.

В этой статье мы представили модель имплантации LVAD в молодой ландрасе. Это может быть подходящей моделью для выявления механизма обратного ремоделирования LVAD и оценки безопасности и эффективности детской имплантации LVAD.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Все процедуры, связанные со свиньями, были одобрены Институциональным комитетом по уходу и использованию животных (IACUC) больницы Фувай, Китайской академии медицинских наук (этическое одобрение: 0109-1-35-ZX(X)-5). Все наши эксперименты следовали рекомендациям ARRIVE. Экспериментальные животные, трёхмесячные самцы молодых свиней рода лендрас (30-35 кг), были заранее помещены и изолированы в экспериментальных помещениях Центра животных больницы Фувай для адаптации к окружающей среде и снижения стресса. Животных осматривали до операции для обеспечения их предоперационного состояния, и они были исключены из эксперимента, если у них были аномальные поведенческие характеристики, аномальные симптомы или признаки. Экспериментальные животные голодались и запрещались пить перед пересадкой сердца и осмотром согласно рутинным процедурам центра экспериментов.

1. Предоперационное лечение и подготовка экспериментального животного

  1. Пусть животные голодаются 12 часов и лишите их воды на 4 часа перед операцией.
  2. Индуцировать общую анестезию кетамином 10-20 мг/кг, внутри мозга.
  3. Установить венозный доступ к ушной вене.
    1. Плотно наложите жгут у основания уха, чтобы наполнить вену.
    2. Используйте недоминантную руку, чтобы растянуть и стабилизировать ухо. Держите иглу катетера как карандаш доминирующей рукой, скошенно вверх под углом 15-30° к коже.
    3. Проколите кожу и стенку вен одним плавным движением.
    4. Увидев флэшбэк в камере, продвините всю сборку ещё на 1-2 мм. Затем стабилизируйте стилет (металлическую иглу) и полностью продвигайте пластиковый катетер в сосуд.
    5. Приложите давление на кожу над кончиком катетера, чтобы предотвратить кровотечение, быстро вынимите стилет и убрать его в острый контейнер. Немедленно подключите гепариновую крышку или запорный кран.
    6. Снимите жгут с основания уха. Аспирируйте шприцом для наблюдения за возвратом крови, подтверждающей внутрисосудистую установку. Медленно промывайте 1-2 мл физиологического раствора. Обратите внимание на наличие отёка вокруг участка, указывающего на экстравазацию.
    7. Обмотайте всё ухо плотной повязкой, чтобы кончик ушей был открыт для мониторинга на ишемию.
  4. Вводите пропофол (2-4 мг/кг внутривенно) и выполняйте эндотрахеальную интубацию.
    1. Проверьте и подготовьте нужного размера эндотрахеальную трубку, ларингоскоп (прямое лезвие), стилет, шприц, смазку, блок для прикуса/свернутую марлю, крепкую ленту и стетоскоп.
    2. Разместите свинку в устойчивом спинном положении. Вытяните шею и запрокиньте голову назад.
    3. Если возможно, обеспечивайте 100% кислородом через маску на 3-5 минут.
    4. Введите лезвие ларингоскопа в правую коммиссуру рта, продвигая его вперёд, при этом смещая язык влево.
    5. Продвигайте лезвие вдоль средней линии языка. Определите надгортанник, затем с помощью кончика лезвия аккуратно поднимите и опустите надгортанник, чтобы открыть гортанку (вертикальную щель).
    6. Когда гортанка открывается (во время вдохания), продвигайте эндотрахеальную трубку (с использованием стилета, если используется) через правую коммиссуру в трахею.
    7. Когда трубка продвинута, стабилизируйте её и аккуратно снимите стилет.
    8. Ищите конденсат внутри трубки и ощупай выдыхаемый воздух в её отверстии.
    9. Надуйте манжету трубки воздухом с помощью шприца, пока протечка вокруг трубки не будет запечатана.
    10. Подключите капнограф; наличие обычной формы сигналаEtCO 2 подтверждает расположение трахеи.
    11. Привяжите трубку к блоку и прочно закрепите её на нижней челюсти или верхней челюсти с помощью скотча.
    12. Подключите эндотрахеальную трубку к схеме анестезиологического аппарата. После эндотрахеальной интубации переведите животное в операционную.
  5. Миорелаксант: После внутривенного болюса 0,5 мг/кг атракурия поддерживайте инфузию на уровне 5-10 мкг/кг/мин.
  6. Поддерживающая анестезия: вводите ингаляционный изофлуран в дозе 2-3% и поддерживайте дексмедетомидином 1 U/кг и пропофолом 1-2 мг/кг/ч. Используйте сукцинилхолин 2 мг/кг в качестве миорелаксантов (свинья нечувствительна к цисбензолу).
  7. Выполните пункцию передней полой вены для контроля центрального венозного давления (CVP).
    1. Пальпировать яремную бороздку между передним краем грудино-ключно-сомышлевидной мышцы и трахеей.
    2. Сделайте продольный разрез длиной 3–4 см в месте соединения верхней и средней трети линии, соединяющей угол нижней челюсти с манубриумом стерны.
    3. Резко разрезайте кожу и подкожную фасцию слоями.
    4. Проведите тупую диссекцию через мышцу платизмы, чтобы обнажить сонную оболочку.
    5. Мобилизуйте сегмент яремной вены диаметром 1-2 см с помощью арахисового диссектора.
    6. Пропустите две лигатуры под изолированным сегментом вены (проксимальная лигатура для тяги; дистальная для постоянной связки).
    7. Проведите венотомию, сделав V-образный разрез в передней венозной стенке между лигатурами с помощью радужных ножниц.
    8. Введите катетер с скошенным обликом под прямой визуализацией для обеспечения внутрилюминального размещения.
    9. Продвигайте катетер на 15-20 см головного мозга, пока не достигнете верхней полой вены (SVC).
    10. Подтвердите расположение, вдыхая тёмную венозную кровь.
    11. Зашивайте фиксирующее крыло к подкожной ткани шелком 3-0.
    12. Закройте рану слоями (фасция: впитываемый шов; кожа: прерванная, невпитывающаясь).
    13. Настройка мониторинга CVP: подключайтесь в следующем порядке один за другим: катетер, трёхконтактный запорный кран, датчик давления, монитор.
    14. Обнулить преобразователь на уровне стернального угла и запустить непрерывный мониторинг волны CVP.
  8. Подключите трёхконтактную электрокардиограмму и обнаружите электрокардиограмму на протяжении всего процесса.
  9. При необходимости установите доступ к бедренной артерии для измерения артериального давления.
    1. Определите пульс бедренной артерии примерно на 2–3 см ниже середины линии, соединяющей переднюю верхнюю подвздошную костку и лобковый бугорок.
    2. Сделайте продольный разрез 4–5 см вдоль оси пульса бедренной артерии.
    3. Разрезите кожу и подкожный жир, а также проведите тупую диссекцию через фасцию.
    4. Разрезайте бедренную оболочку, чтобы обнажить бедренную артерию, и мобилизуйте сегмент бедренной артерии длиной 2-3 см.
    5. Микрососудистые зажимы накладывают проксимально и дистально.
    6. Создайте поперечную артериотомию (50% окружности артерии).
    7. Вставьте скос катетера под углом 30°.
    8. Продвигайте катетер на 8-10 см в сторону аорты.
    9. Подтвердите пульсирующий поток ярко-красной крови.
    10. Пришвите крыло фиксации катетера к глубокой фасции с помощью шва 5-0 Prolene.
    11. Закройте рану слоями.
    12. Соединяйте в следующем порядке один за другим: катетер, трёхконтактный запорный кран, датчик давления, монитор.
    13. Разместить преобразователь на уровне правого предсердия (четвёртое межреберное пространство/среднеподмышечная линия).
    14. Выполните нулевой калибровку и начните непрерывный мониторинг давления.

2. Имплантация LVAD

  1. Проведите медианную торакотомию в положении лежа на спине; Подвесьте перикард и закрепите его, чтобы открыть сердце.
  2. Гепаринизация: введение инъекции гепарина натрия (100 U/кг ) через центральный венозный катетер. Через 3-5 минут после инъекции возьмите артериальную кровь для измерения времени активированного свертывания (ACT). Значение ACT должно достигать и поддерживаться на уровне > 480 секунд до начала установки кардиопульмонального шунтирования (CPB).
  3. Установка кардиолегочного шунтирования
    1. После подключения трубки сердечно-легочного байпаса (CPB) подготовьте систему подготовленным раствором прайминга (инъекция натрия лактата Рингера: тетраспан 6% = 2:1, с добавлением гепарина: 2–4 МЕ гепарина на 1 мл общего объёма прайма, бикарбонат натрия: 5–10 ммол на 1000 мл объёма прайма и т.д.).
    2. Наместите два шва с кошельком с двусторонними швами на выбранном месте канюляции на передней стенке аорты.
    3. Разрезайте центр швов на сумочке. Вставьте аортальную канюлю температурой 22 F. Надёжно завяжите швы на сумочке и зафиксируйте канюлю, обеспечив гемостаз.
    4. Подключите дистальный конец канюли к артериальной линии аппарата кардиопульмонального шунтирования.
    5. Определите место канюляции на правом предсердном придатке и наместите на выбранном месте один двусторонний шов с двумя руками.
    6. Разрезайте центр шва на сумочной верёвке лезвием скальпеля. Вставьте венозную канюлю при температуре 26°F и плотно закрепите шов на сумочке вокруг канюлы.
    7. Подключите канюлю к венозной линии аппарата для кардиопульмонального шунтирования.
  4. Пропустите сигнальную линию LVAD через подкожный туннель сзади и подключите её к контроллеру, чтобы пиг не заделся о сигнальную линию и не отвалился после пробуждения.
    1. Отметьте точку, где сигнальная линия выходит со стороны спины свиньи, в 3-5 см от центральной линии.
    2. Сделайте разрез на коже, чтобы получить точку. С помощью сосудистых щипцов проведите тупую диссекция подкожной ткани в сторону левого четвёртого межреберного пространства.
    3. Используйте металлические наконечники, чтобы провести сигнальные провода через подкожный туннель. Внешний конец подключён к контроллеру, а внутренний используется как резерв для подключения LVAD.
  5. Определите положение и направление митрального клапана с помощью УЗИ.
    1. Аккуратно разместите стерильный высокочастотный линейный зонд (7-10 МГц) над несосудистой зоной левой желудочковой вершины, чтобы получить ключевые плоскости визуализации.
    2. В левом желудочковом длинном виде локализуйте зону коаптации между передним митральным листом (сегменты A2/A3) и задней митральной листочкой (сегменты P2/P3).
    3. В модифицированном апикальном четырёхкамерном виде отрегулировать угол зонда вдоль правой стенки желудочка, чтобы визуализировать всю линию коаптации митрального клапана.
    4. Заморозьте изображение в середине диастолы, затем измерите перпендикулярное расстояние от середины переднего митрального листочка, свободного края до центра предполагаемого участка входной канюли LVAD (> 15 мм).
  6. Убедитесь, что LVAD успешно подключен к искусственному сосуду заранее. Тестирование в обычном физиологическом растворе гарантирует, что LVAD работает правильно и отсутствие утечки в искусственном кровеносном сосуде.
  7. Используйте стерильный хирургический маркер, чтобы определить фиксированное положение апикального кольца на вершине сердца.
  8. Закрепите верхнее кольцо на вершине с помощью швовой резьбы 5-0 с прокладкой.
  9. Удалите миокард внутри теменного кольца с помощью апикального перфоратора и обрежьте пинцетом и ножницами, чтобы предотвратить попадание фрагментов в сердечную полость.
  10. Выведите весь воздух из насоса LVAD, помещая LVAD в обычный физиологический раствор, медленно заполняя его физиологическим раствором.
  11. Заблокируйте искусственную кровь, чтобы предотвратить проникновение воздуха.
  12. Вставьте головку насоса LVAD в верхнее кольцо и убедитесь, что головка насоса входит в сердечную полость. Плотно зафиксируйте замок и снимите зажим верхнего кольца.
  13. Определите соответствующую длину искусственного кровеносного сосуда (диаметр: 8 мм) от головки насоса LVAD до восходящей аорты (15–20 см).
  14. Поставьте частично-окклюзионный зажим спереди на восходящую аорту.
  15. Сделайте начальный разрез скальпелем на расстоянии 1 см от коронарной остии.
  16. Удлините разрез в овальную форму с помощью ножниц.
  17. Вырежьте косое отверстие (около 30°) и анастомозируйте конец восходящей аорты, чтобы избежать деформации искусственного кровеносного сосуда.
    1. Задняя стена (позиция 6 часов): Наложите закреплённый шов.
    2. Передняя стенка (положение 12 часов): Наложите простой прерванный шов.
    3. Завершите оставшуюся окружность непрерывным швом и закрепите анастомоз хирургическими узлами.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Допустите 10% дополнительной длины в сосудистом трансплантате, чтобы предотвратить чрезмерное напряжение и обеспечить нераскрученный и неизвинутый трансплантат на протяжении всего процесса.
  18. Проверьте наличие кровотечений, а также дальнейшее восстановление и накладывание швов.
  19. Установите ультразвуковой датчик на поверхность правого предсердия и проведите ультразвуковое исследование, чтобы проверить положение головки насоса LVAD и убедиться, что она правильно расположена (входной отверстие LVAD направлен прямо на трикуспидальный клапан).
  20. Запрограммируйте контроллер LVAD на достижение целевой скорости вращения (rpm) и скорости расхода: Отрегулируйте соответствующую скорость вращения и расход в зависимости от веса тела свиньи и сердечного выпуска. Постепенно увеличивайте расход, начиная с 1,0 л/мин, и поддерживайте стабильное давление.
  21. Установите ультразвуковой датчик на восходящей аорте, чтобы проверить кровоток. Убедитесь, что кровоток через искусственный сосуд гладкий и отсутствие значительной турбулентности в аорте.
  22. Вставьте дренажную трубку в каждое из левого и правого пространств сердца и подключите внешний отсосной бутылку с отрицательным давлением.
  23. Выровняйте грудину и закройте грудную клетку слой за слоем.
    1. Пропустите пять стернальных проводов из нержавеющей стали 5-0 через грудину с помощью направляющей 18 G, по одной проволоке на межреберное пространство. Скручите провода последовательно и туго от ксифоидной клетки в сторону голова.
    2. Приблизить большую грудную мышцу и фасцию непрерывным 3-0 викрилным швом.
    3. Закройте подкожную ткань зарытым непрерывным монокрильным швом размером 2-0.
    4. Переработайте кожу с помощью прерванных вертикальных матрасных швов из нейлона 4-0.
    5. Дезинфицируйте место разреза раствором повидона-йода по асептической методике.

3. Послеоперационный уход

  1. После операции по имплантации LVAD переведите свинку в отделение интенсивной терапии для мониторинга. Ежедневно фиксируйте потребление и выход, включая артериальное давление и параметры LVAD. Анестезируйте свинью внутривенную инфузию пропофола и регулируйте введение вазоактивных агентов (дофамин, изопротенол, норадренал) для поддержания стабильности гемодинамики в первые послеоперационные дни.
  2. Послеоперационное обезболивающее лечение: с 0 до 72 часов после операции вводят мелоксикам: 0,4 мг/кг подкожной инъекцией каждые 24 часа. С 72 часа до 7 дней вводите мелоксикам 0,2 мг/кг внутрь, каждые 24 часа.
  3. Используйте вазоактивные средства и регулируйте подходящий поток LVAD (1/3-1/2 нормального сердечного выброса) для поддержания нормальной динамики кровотока у свиней.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Внимательно следите за сигнальными линиями LVAD и избегайте затоптания или запутывания свиньями.
  4. Присутствую кардиологическое УЗИ в первый день после операции, третий, седьмой день, на второй неделе и раз в неделю один раз. Когда вокруг сердца почти нет жидкости, удалите дренажные трубки.
  5. Схема послеоперационного антикоагулянта: Взять артериальную кровь с помощью шприца объемом 5 мл из венозного катетера для мониторинга ACT и международного нормированного соотношения (INR). В первые три дня вводите внутривенную инфузию гепарина для поддержания ACT примерно 150-200 с. Начиная с третьего дня, следите за приемом варфарина (0,15-0,2 мг/кг/сут) внутрь, поддерживая INR от 1,5 до 2. Прекратите предоставление гепарина, когда INR достигнет 1,5.
  6. План послеоперационного противоинфекционного лечения: Вводите цефазолин (25 мг/кг, каждые 8 часов) в течение 5-7 дней.
  7. Послеоперационное управление LVAD и сбор данных: Поскольку используется проводная система управления LVAD, сигнальные линии выходят из задней части пига и подключаются к монитору. Поэтому после операции убедитесь, что сигнальные линии выходят сверху клетки и оставаются слабыми для долгосрочного контроля и сбора данных. Это делается для предотвращения отрыва сигнальных линий из-за движения свиньи.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Для установления модели имплантации LVAD для детей мы использовали этот протокол на 3-месячном молодом ландрасе, 33,8 кг, мужчине, который набрал 2,6 кг через 4 недели операции. Свиньи ландраса обычно достигают половой зрелости примерно в один год. Поэтому это абсолютно молодая свинья. Как показано на рисунке 1A, мы завершили операцию по имплантации LVAD в соответствии с протоколом. Как показал предоперационный результат элек...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Молодая модель имплантации LVAD в ландрасе предоставила метод для изучения детального механизма LVAD, приводящего к обратному ремоделированию. Он может использоваться для раскрытия непрерывных динамических изменений миокарда после имплантации LVAD в разные временные точки. Кроме того, доступна биопсия миокарда для отслеживания изменений миокарда у того же животного, что может снизить использование животных. Более того, трёхмесячный молодой ландрас того же возраста, что и дети, что являет...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

У авторов нет конфликтов интересов, которые нужно объявлять.

Благодарности

Эта работа была спонсирована Национальным фондом естественных наук для выдающихся молодых учёных Китая (82125004; Цзянпин Сун). Оценка экспериментов на крупных животных для самостоятельно разработанного специализированного педиатрического имплантируемого желудочкового вспомогательного устройства и доклиническое подтверждение клинических прорывов, а также установление диагностических и лечебных норм терминальной стадии сердечной недостаточности у детей (2023YFC2706204); Ключевой проект Frontier Biotechnology в рамках Национальной программы ключевых исследований и разработок Министерства науки и технологий Китая (2023YFC3404300; Цзянпин Сун), специальный проект Министерства науки и технологий Китая при поддержке Государственной ключевой лаборатории сердечно-сосудистых заболеваний, больницы Фувай и Китайской академии медицинских наук (2024GZZD-03; до Цзянпин Сун).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Крестовый зажим аорты под углом 10 градусовСиновьюCP40431-19Окклюзия аорты
Крестовый зажим аорты под углом 10 градусовСиновьюCP40431-19Окклюзия аорты
Сосудистый зажим с 30-градусной дуговой ветвьюСиновьюCP40432-19
Крестовый зажим аорты под углом 45 градусовСиновьюCP40044-18
Патрон ACT-KЭбботт03P74-25Мониторинг ACT
Пробирки ACT-LRMedtronic809Мониторинг ACT
Система оксигенации с аффинным термоядерным синтезомMedtronicBB841Кардиолегочное шунтирование
Анестезиологический аппаратMindrayA9Анестезия и другие
Апикальное кольцо (швейная манжета)Cor-Heart-Имплантированный компонент. Зашита к вершине сердца для поддержки и герметизации соединения насоса с сердцем.
Артериальная канюляMedtronic18FrКардиолегочное шунтирование
АтракурийHengrui Pharmaceutical-Анестезия и другие
Атравматические плоские щипцыSureMedGF04021-25
Атравматические плоские щипцыSureMedGF04021-25
Микрохирургические щипцы с балансированной ручкойСиновьюFC12010-21
Юные свиньи ЛандрейсИнститут зоологии, Китайская академия наук, Северный исследовательский центр крупных животных-Экспериментальные животные
Анализатор газов кровиЭлектронная диагностикаPT1000Анестезия и другие
Кабельный тягачCor-Heart-Хирургический аксессуар. Используется во время операции для извлечения чрескожного кабеля из тела.
Кардиопульмональное шунтированиеMedtronicB-HL-159Кардиолегочное шунтирование
Центральный венозный катетерBaihe Medical-Анестезия и другие
Зарядная базаCor-Heart-Внешний компонент. Заряжает батарею.
Тест-полоски для PT CoaguChek XSРош4015630936854  (ИН)Мониторинг INR
Адаптер связиCor-Heart-Опциональный внешний компонент, многоразовый. Обеспечивает коммуникационное соединение между монитором и контроллером.
Защитный разъёмCor-Heart-Внешний компонент. Используется для укрепления соединения между чрескожным и контроллером, а также для предотвращения вращения/ослабления разъёма.
Втулка уплотнения разъёмаCor-Heart-Хирургический аксессуар. Используется во время операции для соединения натягивателя троса с перкутанным тросом и обеспечения целостности герметизации.
КонтроллерCor-Heart-Внешний компонент. Подключается к работе насоса и отслеживает её, обеспечивая функции сигнализации на случай аномалий.
Нож для кернаCor-Heart-Хирургический аксессуар. Используется во время операции для создания отверстия в сердечной верхушке.
Изогнутые щипцыSureMedGC01002-16
Изогнутые щипцыSureMedGC01002-12
Изогнутые щипцыSureMedGC01002-16
Одноразовый микроэмболический фильтр для плазмыСансинFAF-2Кардиолегочное шунтирование
Одноразовый фильтр с резервуаром кровиСансинFCR300KКардиолегочное шунтирование
Одноразовая система доставки кардиоплегииMedtronicXP41Кардиолегочное шунтирование
ДофаминJiuan Pharmaceutical-Анестезия и другие
Эндотрахеальная трубкаМедицина ЯсинYS-0000Анестезия и другие
АдреналинJinyao Pharmaceutical-Анестезия и другие
Тонкие расщепляющие щипцыSureMedGC01090-20
Тонкие щипцы для рассеченияSureMedGC01090-20
Аппарат сердца и лёгкихLivaNovaS5Кардиолегочное шунтирование
ГепаринNorth China Pharmaceutical-Анестезия и другие
Ведро для льдаSureMedGQ13018-00D
Ведро для льдаSureMedGQ13018-00D
Инфузионный насосSino MDTSN-C8Анестезия и другие
Тест-полоска INRatio PT/INRHemoSenseREF:0100071 Мониторинг INR
Внутривенный катетерKDL16G-26GАнестезия и другие
ИзофлуранLunan Pharmaceutical-Анестезия и другие
ИзопротеренолHarvest Pharmaceutical-Анестезия и другие
Лактатное решение РингераKelun Pharmaceutical-Анестезия и другие
Большой бассейнSureMedGQ13033-00D
Большой бассейнSureMedGQ13033-00D
ЛарингоскопХанфейльTD-C-IIIАнестезия и другие
Инъекция гидрохлорида лидокаинаKelun Pharmaceutical Co., LtdH20057816
Сульфат магния для инъекцииZdjt Pharmaceutical Co., LtdH20051792
Медицинская электрическая грудинная пилаЦзиндун СицзиHF-X01
Медицинская пила для грудины, электрическая пила для грудиныЦзиндун СицзиHF-X01
Ретрактор среднего размера для грудиныSureMedGR04130-00
Модифицированное решение Святого ТомасаСделанные самостоятельно-Анестезия и другие
Монитор/КомпьютерCor-Heart-Опциональный внешний компонент, многоразовый. Подключается к контроллеру и ассоциирующему насосу желудочков для настройки и эксплуатации.
Многопараметрический мониторMindrayBenoversion N17Анестезия и другие
Игольчатый проход для швов с кошельком и верёвкойSureMedGR04074-00
НорадреналинHarvest Pharmaceutical-Анестезия и другие
Канюля оттокаCor-Heart-Имплантированный компонент. Фиксированно соединяется с искусственным сосудом и обеспечивает его защиту.
Тестовый картридж PCL ACTЛаборатория приборостроения257
Детский ретрактор грудиныSureMedGR04114-00
Инъекция хлорида калияKelun Pharmaceutical Co., LtdH42021164
Адаптер питанияCor-Heart-Внешний компонент. Обеспечивает сетевое питание к системе помощи левому желудочку.
Сульфат протаминYoucare Pharmaceutical-
Introducer для шва с кошельком и струнамиSureMedGR04074-00
Аккумуляторный аккумуляторный блок с перезаряжаемой литиевой батареейCor-Heart-Внешний компонент. Обеспечивает питание Системой помощи левого желудочка (LVAS).
Атравматические магические щипцы РесаноСиновьюFC25501-23S
Щипцы под прямым угломSureMedGC01110-14
Щипцы под прямым угломSureMedGC01089-18
Прямоугольный зажимSureMedGC01110-14
Прямоугольный зажимSureMedGC01089-18
Малый бассейнSureMed-
Инъекция бикарбоната натрияKelun Pharmaceutical Co., LtdH20043739
Инъекция натрия лактата РингераЧжэцзян Тяньжуй ФармаH20033783
Стернальный ретрактор (среднего размера)SureMedGR04130-00
Прямые щипцыSureMedGC01001-12
Прямые щипцыSureMedGC01001-16
Прямые щипцыSureMedGC01001-12
Прямые щипцыSureMedGC01001-16
Suture 5-0 Prolene BBEthicon-
Шов Пролен Блум 4-0 SH 36Ethicon-
Швы 2-0 Prolene Blu M SHEthicon-
Швы BB 4-0 ПроленEthicon-
Температурный датчик3M-Анестезия и другие
Тетраспан 6%Б. БраунL6511 (Ecobag)
Щипцы миндалинSureMedGC09009-20D
Держатель иглы с кольцевой рукояткой из карбида вольфрамаSureMedGN01013-22K
Держатель иглы с кольцевой рукояткой из карбида вольфрамаSureMedGN01013-22K
Держатель иглы с кольцевой рукояткой из карбида вольфрамаSureMedGN01010-22K
Венозная канюляMedtronic28Fr, 32FrКардиолегочное шунтирование
Аппарат искусственной вентиляции лёгкихMindraySV300Анестезия и другие
Насос помощи желудочковCor-Heart-Что-то вроде центробежного насоса магнитной левитации. Имплантированный компонент. Имплантирован в сердце для улучшения кровообращения.

Ссылки

  1. Nickel, I., et al. Deactivation of LVAD support for myocardial recovery-surgical perspectives. J Heart Lung Transplant. 43 (9), 1489-1500 (2024).
  2. Burkhoff, D., Topkara, V. K., Sayer, G., Uriel, N. Reverse remodeling with left ventricular assist devices. Circ Res. 128 (10), 1594-1612 (2021).
  3. Burkhoff, D., Klotz, S., Mancini, D. M. LVAD-induced reverse remodeling: basic and clinical implications for myocardial recovery. J Card Fail. 12 (3), 227-239 (2006).
  4. Meissner, F., et al. Intra-aortic band impairs transapical device implantation in a pig: a case report. BMC Vet Res. 19 (1), 212(2023).
  5. Sakota, D., et al. Left ventricular assist device mode: co-pulse left ventricular unloading in a working mode of ex vivo heart perfusion. J Heart Lung Transplant. 42 (6), 707-715 (2023).
  6. Watanabe, K., Shih, R. Update of pediatric heart failure. Pediatr Clin North Am. 67 (5), 889-901 (2020).
  7. Howard, T. S., et al. Leadless pacemaker implantation in an adolescent with durable LVAD support. Pediatr Cardiol. , (2025).
  8. Schweiger, M., Miera, O. Not little adults: outcomes in pediatric intracorporeal LVAD patients. J Heart Lung Transplant. 43 (1), 182-183 (2024).
  9. Almond, C. S., et al. A prospective multicenter feasibility study of a miniaturized implantable continuous flow ventricular assist device in smaller children with heart failure. J Heart Lung Transplant. 43 (6), 889-900 (2024).
  10. Beltramo, F., et al. Validation of an ultrasound cardiac output monitor as a bedside tool for pediatric patients. Pediatr Cardiol. 37 (1), 177-183 (2016).
  11. Pagani, F. D., et al. Concomitant surgical procedures and aspirin avoidance with left ventricular assist device therapy. JACC Heart Fail. 13 (7), 1-13 (2025).
  12. Lilja, D., et al. Detection of inflow obstruction in left ventricular assist devices by accelerometer: a porcine model study. J Heart Lung Transplant. 42 (8), 1005-1014 (2023).
  13. Santiago, A., et al. Design and execution of a verification, validation, and uncertainty quantification plan for a numerical model of left ventricular flow after LVAD implantation. PLoS Comput Biol. 18 (6), e1010141(2022).
  14. De Lazzari, C., Ferrari, G., Mimmo, R., Tosti, G., Ambrosi, D. A desk-top computer model of the circulatory system for heart assistance simulation: effect of an LVAD on energetic relationships inside the left ventricle. Med Eng Phys. 16 (2), 97-103 (1994).
  15. Yu, X. Y., Shi, J. W., Zang, Y. R., Zhang, J. M., Liu, Z. G. Factors influencing the functional status of aortic valve in ovine models supported by continuous-flow left ventricular assist device. Artif Organs. 46 (7), 1334-1345 (2022).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Модель LVAD в педиатриимодель на молодых свиньяхобратное ремоделирование сердцагемодинамический мониторингэхокардиографическая оценкапротокол хирургической операции на животных
Имплантация вспомогательного устройства левого желудочка (LVAD) у молодых свиней Landrace: модель имплантации детской сердечной недостаточности с помощью LVAD
Связаться с нами
Порекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия использования

Политики

© 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.