Протокол исследований был утверждён Этическим комитетом Второй аффилированной больницы Медицинской школы Чжэцзянского университета (No 2025-0581). Все эксперименты и процедуры проводились в соответствии с Хельсинкской декларацией (пересмотренной в 2013 году). В этом ретроспективном исследовании приняли участие 47 пациентов, госпитализированных по LETM во Второй аффилированной больнице Медицинской школы Чжэцзянского университета. В этом исследовании получилось информированное согласие всех участников. Это ретроспективное когортное исследование включало всех подходящих пациентов. Для оценки достаточности размера выборки был проведён постфактический анализ мощности. Результаты показали, что при текущем размере выборки наблюдаемый размер эффекта составляет 1,213515, а достигнутая мощность (вероятность 1-β err) — 0,9659161, что превышает обычный порог 0,8. Таким образом, размер выборки соответствует статистическим требованиям.
Набор пациентов
Критерии включения: включать пациентов, страдавших от острых приступов, имеющих полные клинические данные, у которых сыворотка показала отрицательный результат на антитела MOG, AQP4 и GFAP, а также чьи поражённые сегменты превышали или равны трём18. Критерии исключения: Исключить пациентов с другими заболеваниями, способными привести к инвалидности, а также пациентов, принявших эфгартигимод в остромначале, 18. Сбор информации о пациентах: Были зафиксированы демографические данные, включая возраст, пол, продолжительность заболевания и длину затронутых сегментов позвоночника.
Лечение и клиническая оценка
Группировать пациентов по соответствующим схемам лечения. Пациенты были разделены на две группы: группу лечения эфгартигимодом (n = 11) и группу традиционного лечения (n = 36). В группе эфгартигимода пациенты получали 400 мг эфгартигимода в течение 2 недель, а также внутривенную инфузию 1000 мг метилпреднизолона, смешанного с 500 мл раствора глюкозы 10%, введённой в течение двухнедельного периодалечения 16. В группе традиционного лечения пациентам проводили внутривенную инфузию 1000 мг метилпреднизолона, смешанного с 500 мл раствора глюкозы 10%, введённой в течение двухнедельного периодалечения 19.
Параметры клинической оценки пациентов
Инвалидность пациентов оценивалась с помощью ряда индексов, включая расширенную шкалу статуса инвалидности (EDSS) и клиническую шкалу хрупкости (CFS)20,21. Качество жизни пациентов оценивалось с помощью короткой формы-36 (SF-36), включая физическое функционирование (PF), психическое здоровье (MH), боль (PA), общее здоровье (GH), жизнеспособность (VT), социальное функционирование (SF), рольно-эмоциональное (RE) и роль-физическое (RP)22.
Измерение интерлейкина-6 (ИЛ-6), ИЛ-10 и ИЛ-41
Утром были собраны образцы крови натощак. Сыворотка была выделена из крови методом центрифугации 10 минут при 1000 x г и хранена при -80 °C для последующего анализа. Срок хранения всех образцов варьировался от 6 до 48 месяцев.
Уровни IL-6, IL-10 и IL-41 в сыворотке измерялись с помощью наборов иммуносусорбента, связанных с ферментами (ELISA), согласно инструкциям производителя (Таблица материалов). Уравновесьте все реагенты из набора ELISA до комнатной температуры за 20 минут до анализа. Использовались стандартные, образцовые и пустые скважины. В стандартные скважины добавляли 50 мкл стандартного раствора в различных концентрациях (0-100 пг/мл), 50 мкл образца сыворотки — в пробо, а 50 мкл разбавления образца — в пустые скважины. Промывочный буфер был подготовлен путём разведения концентрированного раствора с двойной дистиллированной водой в соотношении 1:24. Подготовленный буфер использовался в тот же день для обеспечения оптимальной эффективности мойки.
Рассчитан объём рабочего раствора на основе экспериментальных требований (100 мкл на скважину). За 15 минут до использования центрифугировали 100-кратное концентрированное биотинилированное антитело в 7 150 x g в течение 1 минуты и разбавляли с помощью буфера разбавления биотинилированных антител в соотношении 1:99 для достижения рабочей концентрации в 1x. Сразу же использовал подготовленное рабочее раствор для поддержания активности. Сопряжение ЗСР состояло из стрептавидина, конъюгованного с HRP. Рассчитан необходимый объём на основе экспериментальных требований (100 мкл на скважину), с дополнительной подготовкой 100–200 мкл для обеспечения достаточного количества. За 15 минут до использования центрифугировали концентрированный HRP-конъюгат 100x при 11 173 x g в течение 1 минуты, затем разбавили с буфером разбавления HRP в соотношении 1:99 для достижения рабочей концентрации 1x. Сразу использовал подготовленный рабочий раствор, чтобы сохранить его активность.
Подготовленные стандартные скважины (100 мкл разбавлённого стандарта), пустые скважины (100 мкл буфера разведения стандарта и образцов) и пробные скважины (100 мкл разбавлённого пробного образца) соответственно. После добавления растворов запечатайте пластину мембраной и инкубуйте при комнатной температуре в течение 1,5 часа. После инкубации удалите жидкость из колодцев без промывки. Затем в каждую скважину добавляли по 100 мкл рабочего раствора биотинилированных антител. Запечатать пластину и инкубировать при 37 °C в течение 1 часа, чтобы облегчить связывание биотинилированного антитела с комплексами антиген-антитела. После инкубации удалите жидкость из колодцев и промокните пластину чистой впитывающей бумагой. Заполните каждую колодцу 350 мкл буфера для промывки и дайте ей постоять 1 минуту. После удаления жидкости промокните пластину на впитывающей бумаге. Повторил эту процедуру промывания 4 раза.
После промывки добавьте в каждую скважину по 100 мкл ферментного рабочего раствора. Запечатайте пластину и инкубуйте при 37 °C в течение 30 минут, чтобы обеспечить полное связывание между конъюгатом HRP и биотинилированным антителом. После инкубации полностью удалите жидкость из колодец и промокните пластину чистой впитывающей бумагой. Повторите описанную выше процедуру промывания 5 раз, чтобы тщательно удалить несвязанные конъюгаты ферментов и минимизировать неспецифические реакции. После промывки добавьте в каждую скважину 90 мкл раствора субстрата. Запечатайте пластину и инкубуйте при 37 °C в темноте примерно 15 минут. Предварительно нагрейте считыватель микропластин на 15 минут для обеспечения точности обнаружения. После инкубации в каждую скважину добавляли 50 мкл стоп-раствора для прекращения цветообразования и ферментативной реакции. После завершения реакции немедленно измерялась оптическая плотность (OD) на 450 нм каждой скважины, а результаты записывались с помощью считывателя микропластин для последующего анализа и расчёта данных.
Статистический анализ
Статистический анализ проводился на SPSS 27.0 и GraphPad Prism 8.4.3. Для сравнения исходных данных между двумя группами использовались независимые выборки t-test и χ2-тест. Для сравнения клинических результатов и показателей качества жизни до и после лечения использовался парный образец T-тест или тест Уилкоксона. Кроме того, уровни сыворотки IL-6, IL-10 и IL-41 сравнивались до и после лечения с помощью парного образца T-теста. Сравнение между этими двумя группами проводилось с помощью независимого t-теста выборок. Коэффициент корреляции Пирсона использовался для измерения корреляции между уровнями факторов воспаления и EDSS. Различия считались статистически значимыми при p < 0,05.