Методическая статья

Пульсная доплеровская оценка диастолической дисфункции в модели лёгочной гипертензии у крыс ZSF-1 из-за заболевания левой части сердца

DOI:

10.3791/69341

22 мая 2026 г.

В этой статье

Краткое содержание

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Представлен протокол оценки диастолической функции с помощью допплеровской ультразвуковой работы в доклинической модели легочной гипертензии, вызванной болезнью левой части сердца.

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Диастолическая дисфункция и сердечная недостаточность с сохраненной фракцией выброса (HFpEF) являются значительными факторами легочной гипертензии (PH), вызванной заболеванием левого сердца. Стандартная оценка релаксационных аномалий in vivo в доклинических моделях включает двумерную (двумерную) эхокардиографию с доплеровской оценкой трансмитрального потока и релаксации тканей, что сложно, дорого и требует сложного эхокардиографического оборудования. Здесь ценный суррогатный метод оценки диастолической дисфункции при ЛГ, вызванной болезнью левого сердца, продемонстрирован в хорошо проверенной модели грызунов с использованием импульсно-волнового допплеровского ультразвука без двумерной эхокардиографии. Диастолический трансмитральный поток определяется по апикальному окну и коррелирует с одновременно записанной ЭКГ-трекингом. Собираются индексы диастолической функции, и их идентификация описывается в этом протоколе. Эта недорогая, легко применяемая методика выявляет соответствующие маркеры диастолической дисфункции, связанных с ЛГ, сердечно-сосудистыми заболеваниями и HFpEF. Кроме того, он воспроизводимо обнаруживает его прогрессирование со временем, когда двумерная эхокардиография не предпочтительна или недоступна. Основные ограничения этого метода связаны с отсутствием визуализации сердечных структур, возможностью неточностей из-за угловой зависимости доплеровского сигнала, а также с габитусом организма животного, который можно уменьшить, изменяя положение зонда и оптимизируя его выравнивание с кровотоком.

Введение

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Легочная гипертензия (РГ) — это смертельное заболевание без лечения, характеризующееся повышением лёгочного артериальногодавления 1. Заболевание левой сердца (ЛБГ) является самой распространённой причиной РГ во всем мире и связано с высокой стоимостью и значительной заболеваемостью 2,3. К сердечным причинам PH-LHD относятся различные формы, приводящие либо к систолическим, либо к диастолическим нарушениям, например, к сердечной недостаточности — многогранному клиническому синдрому, который продолжает оставаться одной из ведущих причин смертности во всёммире 4. Среди пациентов с сердечной недостаточностью HFpEF составляет более половины от числа госпитализаций, связанных синцидентами, 4,5. Диастолическая дисфункция определена как один из важнейших предшественников и фундаментальная особенность взаимодействия между HFpEF и PH из-за LHD (PH-LHD)6,7. Из-за отсутствия подходящих доклинических моделей, которые бы обобщали большинство клинических и субклинических признаков PH и HFpEF, понимание механизмов, лежащих в основе этих заболеваний,неполно 7.

Диастолическая дисфункция является характерной чертой PH-LHD и может быть оценена с помощью 2D и доплеровскойэхокардиографии 8. Двумерные и доплеровские методы оценки функции левого желудочка включают, среди прочего, пиковую раннюю диастолическую скорость E-волны, пиковую позднюю диастолическую A-волну, длительность A митрального клапана (интервал времени от начала A-волны до конца волны A при нулевой базовой линии), отношение E/A митрального клапана, время замедления E-волны (DT, интервал времени от пика E-волны экстраполирован до нулевой базовой линии). тканевое доплеровское изображение (TDI) кольца септального митрального клапана (e', эхокардиографический параметр расслабления тканей кольца митрального клапана) и IVRT (время изоволюмической релаксации, время между закрытием аортального клапана и открытием митрального клапана). Эхокардиографические маркеры нарушенной релаксации включают сочетание уменьшенного или обратного отношения E/A в условиях увеличения A-волны и уменьшения E-волны, удлинённого IVRT, уменьшения времени замедления E-волны, задержки тканевых доплеровских индексов (удлинённая e-скорость, повышенная средняя септальная E/e') и более низкое абсолютное значение глобального продольного напряжения (GLS)9. Исследования, сравнивающие эхокардиографические и инвазивные гемодинамические измерения, показали, что эхокардиографические и инвазивные измерения сопоставимы и являются надёжным методом оценки гемодинамикисердца 10. Однако двумерная эхокардиография сложна, дорогостоящая и требует сложного эхокардиографического оборудования и персонала. Эти факторы являются серьёзным ограничением для отслеживания прогрессирования заболевания у животных. В результате исследователи либо используют два показателя (начало и конец исследования) для лонгитюдных исследований или отдельные измерения в дизайне поперечного сечения.

Среди этих параметров диастолической дисфункции E, A, E/A, A продолжительность, DT и IVRT можно оценить с помощью импульсно-волновой доплеровской эхокардиографии, что исключает необходимость двумерной эхокардиографии. В этой статье продемонстрирован протокол доплеровской оценки диастолической функции в хорошо известной модели крыс ZSF-1 при PH-LHD11. Всего 25 (10 генетически ожиренных и 15 генетически худых) самцов-крыс ZSF1 были продолжены и оценены сонографически на предмет развития диастолической дисфункции в течение шестнадцати недель в возрасте от 8 до 24 недель. Одинаковые эхокардиографические параметры были оценены в двух когортах. Все животные были обследованы на начальном уровне (8 недель). Доплеровские признаки диастолической дисфункции проявились к 16 неделям возраста, когда проводились промежуточные измерения. Измерения конечной точки проводились в возрасте 24 недель. Хотя исследователь, проводивший сбор данных, не мог быть ослеплён из-за очевидного набора веса в когорте с ожирением, исследователь, проводивший анализ данных, был ослеплен к фенотипу животных. Хотя этот легко применяемый метод открывает путь для продольной оценки прогрессирования заболевания у грызунов, ограничениями этой техники являются угловая зависимость качественного доплеровского сигнала, что может быть сложно получить в зависимости от выравнивания зонда и размера животного.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все процедуры проводились в соответствии с одобрением Комитета по уходу и использованию животных Университета Джонса Хопкинса (ACUC) для протокола RA21M273. Ни одно животное не подвергалось дискомфорту для сбора данных или целей измерений. Реагенты и используемое оборудование перечислены в Таблице материалов.

1. Подготовка оборудования и животного

  1. Очистите камеру с этиловым спиртом 70% и протрите все поверхности.
  2. Наполните камеру одноразовым пеленным ковриком и бумажными полотенцами. Убедитесь, что отверстия для притока и выхода газа не заблокированы.
  3. Соблюдайте следующие меры безопасности и обращения с анестезией:
    1. Убедитесь, что станция анестезии расположена в хорошо проветриваемом помещении.
    2. Проверьте анестезиологическое оборудование на наличие протечек и неисправностей.
    3. Избегайте включения вапорайзера, пока цепь не будет подключена к животному.
    4. Поддерживайте непрерывный поток кислорода на протяжении всего эксперимента.
    5. Убедитесь, что система очистки соединена с системой анестезиологии.
    6. Закройте зазор между носовым конусом и носом животного кусочком скотча, чтобы уменьшить разлив анестетика и предотвратить выход загрязнителей воздуха в воздух.
    7. Снизить скорость потока свежего газа в системе анестезии во время поддерживающей фазы анестезии. Рекомендуется использовать минимальную максимальную скорость потока свежего газа.
    8. По завершении эксперимента продолжайте вводить кислород с высокой скоростью потока, чтобы промыть остатки анестетика и дыхательную систему.
  4. Откройте кислородный баллон (100%) и обеспечьте свободный поток кислорода в анестезирующую камеру.
  5. Откройте клетку для животных и поместите её в камеру для анестезии.
  6. Надёжно закрой камеру.
  7. Откройте испаритель изофлурана и дайте свободному потоку 2–3% изофлурана в анестезирующую камеру, смешанную с кислородом (2 л/мин).
  8. Позвольте животному вдыхать смесь кислорода и изофлурана до 3 минут или до достижения достаточной глубины общего наркоза.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Анестезия считается достаточной, если животное не реагирует на неядовительные или вредные раздражители до начала эксперимента, продолжая дышать спонтанно и без усиления.

2. Получение трассировки ЭКГ

  1. Включите планшет, подключённый к панели для отслеживания ЭКГ. Выберите RSMonitor из доступных приложений. Включите ЭКГ-панель, нажав круглую кнопку спереди.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Мигающий зелёный индикатор указывает на то, что ЭКГ-панель подключается к планшету. Постоянный зелёный индикатор указывает на завершение сопряжения.
  2. Нажмите НАСТРОЙКИ в правом нижнем углу интерфейса пользователя.
  3. Выберите PRESETS из выпадающего меню экспериментальных настроек.
  4. Нажмите на выпадающее меню в разделе «Сохраненные пресеты».
  5. Выберите Rat CV и нажмите OK в правом нижнем углу.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Площадка должна быть в режиме «Крыса», чтобы можно было обнаружить ЭКГ с помощью лап.
  6. Очистите ЭКГ-прокладку этиловым спиртом 70%, чтобы удалить остатки геля ЭКГ.
  7. Возьмите гель с высокопроводящим электродом для ЭКГ и водорастворимый гипоаллергенный ультразвуковой гель для доплера.
  8. Откройте поток газовой смеси к носовому конусу.
  9. Положите анестезированное животное на неинвазивную ЭКГ-прокладку, а нос — в соответствующий размер носовой конус. Установьте выходную мощность вапорайзера в диапазоне 1,5%-2% (поток кислорода при 1 л/мин). Обеспечьте свободный поток изофлурана в носовой конус.
  10. Отключите поток газа в сторону анестезирующей камеры.
  11. Нанесите небольшое количество электродного геля на спинную поверхность передних лап с помощью аппликатора с хлопковыми наконечниками и на подошвенную сторону задних лап. Закрепите лапы скотчем на контактной поверхности электрода ЭКГ-подушки и убедитесь, что гель электрода имеет достаточный контакт с ЭКГ-подушкой.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Мышам нужен меньший носовой конус по сравнению с крысами.
  12. Удаляйте волосы на груди и животе с помощью мягкого крема для депиляции для лучшего контакта с кожным зондом. Стирайте остаточный депиляторный крем, чтобы избежать раздражения кожи.
  13. Убедитесь, что изоэлектрическая базовая линия и форма сигнала P-QRS-T на трассировке ЭКГ отображаются на мониторе компьютера.
    ПРИМЕЧАНИЕ: В зависимости от частоты сердечных сокращений амплитуды P и T могут не отличаться от комплекса QRS, и волна R является самым важным элементом для определения времени формирования доплеровских волн.

3. Настройка компьютера

  1. Включи компьютер.
  2. Создайте папку на компьютере, идентифицирующую животное и интересующие данные. Снимки, сделанные во время эксперимента, будут сохранены в этой папке.
  3. Включите пульсный доплеровский трансивер спереди и сзади (большой синий блок).
  4. Включите Доплеровский сигнальный процессор (маленький чёрный ящик).
  5. Откройте значок рабочей станции обработки сигналов Доплера, чтобы запустить программу.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Начальные системные настройки следующие: 10 МГц или 20 МГц в системных настройках, частота дискретизации: 125 кГц, размер выборки: 512, низкочастотный фильтр: 150 кГц, что достаточно для большинства экспериментов.
  6. Нажмите на «Настройка » в левом верхнем углу.
  7. Выберите Настройка системы.
  8. Выберите подходящую частоту зонда для эксперимента (20 МГц для мышей и мелких крыс, 10 МГц для крупных крыс).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Интерфейс состоит из двух панелей: верхней панели для отображения доплеровских скоростных спектрограмм и нижней панели для отображения ЭКГ.
  9. Подключайте зонд на 20 МГц при исследовании молодой крысы или мыши. Используйте зонд на 10 МГц для пожилых, крупных или ожиренных крыс. Стоит отметить, что оба датчика можно подключить одновременно, а модуль доплеровского трансивера позволяет легко переключаться между частотами и зондами (переключатель спереди).
  10. Установите настройки Доплера на модуле трансивера:
    1. Убедитесь, что портативный датчик зонда настроен на канал розетки A или B.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Выбор розетки не повлияет на получение данных и не приведёт к изменениям в программном обеспечении.
    2. Выберите подходящий канал 10/20 МГц для управления портативным датчиком 10/20 МГц соответственно.
    3. Установите частоту повторения импульсов (PRF) на 62 кГц для оптимальной неоднозначности диапазона, чтобы увеличить максимальную скорость, которую можно обнаружить с помощью PW Доплера с самого близкого объёма выборки, минимизируя сглаживание.
    4. Установите переключатель DIRECTION на TWD , чтобы любой поток, идущий к зонду, в виде волны выше базовой линии с нулевым потоком.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Любой поток, удаляющийся от зонда, будет отображаться в виде волны ниже базовой линии нулевого потока.
    5. Отрегулируйте ДИАПАЗОН до 2,5 - 3,5 мм для мышей и 4-6 мм для крыс, чтобы выбрать глубину для размещения объёма образца.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Сердце крысы находится в пределах первых 1 см от лица преобразователя, а сердце мыши — в первых 0,5 см. Расстояние измеряется от интерфейса кожа-зонд до середины объёма образца, а диапазон для обнаружения трансмитрального потока зависит от размера, возраста и характера организма животного.
    6. Установите FILTER на 15 , чтобы сгладить выход фазовой скорости до «демпфированного», избежать переоценки или недооценки скоростей и обеспечить оптимальную оценку скоростей.
  11. Нажмите GO в левом верхнем углу экрана интерфейса пользователя. Появится всплывающее окно.
    1. В новом окне введите соответствующую информацию о приобретении (тип животного, пол, дата рождения, возраст на дату приобретения, вес и т.д.).
    2. Выберите желаемую заранее созданную папку из выпадающего меню в Directory (для создания папки, см. шаг 3.2) с идентификаторами животного и эксперимента.
    3. Нажмите OK.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Начальный номер файла установлен в _00.
    4. Отрегулируйте базовую линию ЭКГ, сдвинув её вверх или вниз с помощью шкалы слева (левый клик по оси и перетаскивание вверх или вниз), чтобы волны R были чётко видны.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Базовую линию можно сдвинуть за удержание курсора на панели ЭКГ, кликнуть правой кнопкой мыши и двигать мышь вперёд и назад.

4. Проведение доплеровских измерений

  1. Нанесите небольшое количество ультразвукового геля в подгрудинную/эпигастральную область груди и брюшной полости животного, чтобы облегчить передачу ультразвука между зондом и кожей.
  2. Разместите доплеровский зонд по средней линии под диафрагмой ниже грудины (чуть ниже и чуть левее ксифифа), голова направлена на голову к левому уху животного, и начните сканировать поток, медленно двигая зонд небольшим круговым движением с увеличением радиуса (по 1 мм за раз), используя тонкие движения руки.
  3. Всегда поддерживайте мягкое давление зонда на кожу под диафрагмой.
  4. Если митральный поток не обнаружен, регулировать RANGE по мере необходимости, поворачивая циферблат RANGE шагом на 0,5 мм для обнаружения трансмитральной формы сигнала (рисунок 1A), повторяя круговое сканирование с каждым поворотом циферблата.
    ПРИМЕЧАНИЕ: M-образный диастолический антеградный паттерн появляется выше нулевой базовой линии (когда переключатель направления установлен на «TWD» (напрямую)), что указывает на диастолический паттерн потока, который соответствует потоку через митральный клапан, возникающему при открытии митрального клапана. Стоит отметить, что большая часть потока должна находиться выше базовой линии для паттерна потока митрального клапана, тогда как асимметричная V-образная форма волны, расположенная преимущественно ниже базовой линии, указывает на систолический поток через другой клапан, например аортальный клапан. Если встречается волна, соответствующая аортальному потоку, слегка сдвините кончик вправо от животного и наклоните его вверх (требуется минимальное движение в один или два миллиметра). Все сигналы отображаются в реальном времени. Диастолический поток через трикуспидальный клапан будет проявляться в виде аналогичной M-образной формы волны выше базовой линии; однако из-за более низкого градиента давления между правым предсердием и правым желудочком пиковые скорости будут значительно ниже (рисунок 1B). Если встречается форма волны, соответствующая потоку трикуспидального клапана, слегка сдвиньте зонд влево от животного, не меняя его угла относительно кожи.
  5. Обеспечьте одновременное отображение доплеровской волны и ЭКГ на экране.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Скорость ЭКГ можно настроить до комфортного уровня, нажав на стрелки вверх/вниз в правом нижнем углу панели. 4-5 ударов, видимых на экране, — оптимально.

5. Получение данных с помощью доплеровской ультразвуковой работы

  1. Создайте снимки с помощью педали, когда определите правильный поток. Это можно повторять несколько раз по мере необходимости для оптимального качества данных.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Идеальное изображение будет показывать чёткое определение спектральных границ, отсутствие расширения спектра, отсутствие спектрального заполнения, отсутствие одновременного отображения прямого и обратного потока, а также одновременное отображение диастолических трансмитральных и систолических аортальных потоков. Снимки автоматически сохраняются при нажатии педали.
  2. Остановить сбор данных, если вы удовлетворены качеством данных, нажав кнопку STOP в правом верхнем углу интерфейса пользователя. Для надёжного представления средних скоростей и времени сжатия/релаксации требуется минимум 3 репликации пары ЭКГ и Допплера.
  3. Нажмите на меню «Файл » в верхней панели функций.
  4. Выберите «Открыть » в выпадающем меню.
  5. Выберите файл с самым высоким качеством данных из готовой папки для анализа.
  6. Нажмите на раздел «Анализ » в левом верхнем углу. Появится всплывающее окно.
    1. Выберите шаг 2: Общая настройка
      1. Тип данных: Доплер
      2. Сигнал: митральный поток
      3. Животное: Выберите подходящую модель для эксперимента.
      4. Установите «Все имена измерений» в разделе стандартных имен измерений.
  7. Перейдите и нажмите на Шаг 5: R peak editor из выпадающего меню Analysis Control. Выберите маркеры Display Beat и R peak markers. Выберите Auto Calculate.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Появятся зелёные маркеры пика R. Выровняйте зелёные маркеры с кончиком R-волн. Нежелательные маркеры битов можно удалить с панели, разместив курсор на маркере и быстро двигаясь вправо вперёд мышью, удерживая правый клик.
  8. Нажмите на шаг 6: Редактор битов из выпадающего меню Analysis Control. Выберите маркеры Display Beat и R Peak и нажмите Select all beats.
  9. Нажмите на шаг 7: Редактор маркеров из выпадающего меню Analysis Control. Нажмите на маркеры анализа отображения. Выберите желаемый параметр для измерения в разделе «Выбранный маркер текущего».
    1. Убедитесь, что для полноты данных требуются следующие параметры (рисунок 1):
      1. ES: ранний старт. Это начало восходящего движения раннего диастолического потока, измеряемого на базовой линии.
      2. EPV: ранний пик скорости. Первая пиковая скорость выше базовой линии отражает градиент давления левого предсердия (LA) — левого желудочка (LV) во время ранней диастолы (это пиковая скорость пассивного потока от LA в LV из-за ранее существующего градиента давления LA-LV).
      3. EEAS: ранний конец, предсердный старт. Отражает выравнивание давления и прекращение потока между LA и LV (диастаз).
      4. APV: пиковая скорость предсердий. Второй пик скорости выше базовой линии отражает градиент давления левого предсердия — левого желудочка во время поздней диастолы. Это пиковая скорость кровотока во время «предсердного удара».
      5. AE: предсердный конец. Отражает прекращение потока в конце поздней диастолы и выравнивание давления между LA-LV.
      6. IVCTE: окончание времени сжатия изоволюмии. Это интервал времени между закрытием митрального клапана и открытием аортального клапана в начале систолы.
      7. IVRT: начинается время изоволюмической релаксации. Это интервал времени между закрытием аортального клапана и открытием митрального клапана в начале диастолы.
    2. После выполнения вышеуказанных измерений выберите Шаг 8: Результаты измерения в выпадающем меню Analysis Control .
    3. Скопируйте данные в файл Excel, нажав на кнопку «Скопировать результаты в буфер обмена». Сохраните данные Excel.
    4. Закройте окно «Analysis Control».
    5. Нажмите на «Файл » в левом верхнем углу и выберите «Сохранить». Это позволит сохранить выполненные измерения.
    6. Выйдите из рабочей станции обработки доплеровских сигналов.

6. Завершение эксперимента

  1. Выключите изофлуран и снимите скотч с лап животного.
  2. Уберите животное с электродной площадки.
  3. Очистите остатки депиляторного крема и электродного геля.
  4. Поместите животное обратно в клетку с бесплатным доступом к воде и еде.
  5. Дайте животному восстановиться после анестезии под наблюдением в соответствии с институциональным протоколом.
  6. Отключите кислород.
  7. Очистите камеру анестезии.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Этот метод позволяет продольно оценивать диастолическую функцию при PH-LHD. Для наиболее точной оценки диастолической функции необходимо визуализировать антеградные и ретроградные паттерны потока, связанные с открытием и закрытием митрального и аортального клапанов, в рамках одного и того же сердечного цикла на протяжении нескольких циклов (см. рисунок 1). Закрытие аортального клапана знаменует начало диастолы, самой ранней фазой которой является изоволюмиче...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

В этой статье суррогатный метод оценки диастолической дисфункции при PH-LHD демонстрируется в хорошо известной модели грызунов с использованием импульсно-волнового допплеровского ультразвука без двумерной эхокардиографии. Диастолический трансмитральный паттерн потока определяется по апикальному окну и коррелирует с одновременно записанной ЭКГ-трассировкой, которая позволяет определить показатели диастолической функции. Этот недорогой метод определяет маркеры диастолической функции и дисф...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы не имеют финансовых отношений с производителями используемых материалов.

Благодарности

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эта работа была поддержана премией Американской кардиологической ассоциации для MB (24CDA1267633), наградой NHLBI R56 для JS (1R56HL169285) и наградой NHLBI для LS (R01HL14811201).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Установка анестезиологииVetEquip Inc.901806
КомпьютерDell7420 Plus
Ватная палочкаПуританская компания по производству медицинских продуктов806-WC
Крем-депилятор и нбс;  Черч и Дуайт300725
Доплеровский зонд 10 и 20 МГцINDUS InstrumentsNA
Доплеровская установкаINDUS InstrumentsNA
ЭКГ-панельINDUS InstrumentsNA
Электродный гельЛаборатории Паркера45993
Испаритель с изофлураном VetEquip Inc.911103
Гель для ультразвукаЛаборатории Паркера45659
Вентилируемая анестезирующая индукционная камераVetEquip Inc.942102

Ссылки

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Simonneau, G., et al. Haemodynamic definitions and updated clinical classification of pulmonary hypertension. Eur Respir J. 53 (1), 1801913(2019).
  2. Ghoreishi, M., et al. Pulmonary hypertension adversely affects short- and long-term survival after mitral valve operation for mitral regurgitation: Implications for timing of surgery. J Thorac Cardiovasc Surg. 142 (6), 1439-1452 (2011).
  3. Charalampopoulos, A., et al. Pathophysiology and diagnosis of pulmonary hypertension due to left heart disease. Front Med (Lausanne). 5, 174(2018).
  4. Dunlay, S. M., Roger, V. L., Redfield, M. M. Epidemiology of heart failure with preserved ejection fraction. Nat Rev Cardiol. 14 (10), 591-602 (2017).
  5. Savarese, G., et al. Global burden of heart failure: A comprehensive and updated review of epidemiology. Cardiovasc Res. 118 (17), 3272-3287 (2023).
  6. Thenappan, T., et al. Clinical characteristics of pulmonary hypertension in patients with heart failure and preserved ejection fraction. Circ Heart Fail. 4 (3), 257-265 (2011).
  7. Bauer, M., Gadkari, M., Martinez Yus, M., Santhanam, L., Steppan, J. Sexual dimorphism in animal models of heart failure with preserved ejection fraction. J Appl Physiol (1985). 138 (6), 1449-1473 (2025).
  8. Cameron, D. M., Mclaughlin, V. V., Rubenfire, M., Visovatti, S., Bach, D. S. Usefulness of echocardiography/Doppler to reliably predict elevated left ventricular end-diastolic pressure in patients with pulmonary hypertension. Am J Cardiol. 119 (5), 790-794 (2017).
  9. Nagueh, S. F., et al. Recommendations for the evaluation of left ventricular diastolic function by echocardiography and for heart failure with preserved ejection fraction diagnosis: An update from the American Society of Echocardiography. J Am Soc Echocardiogr. 38 (7), 537-569 (2025).
  10. Yavuz, Y. E., Soylu, A., Gurbuz, A. S. The relationship of systemic and pulmonary arterial parameters with HFPEF scores (h(2) fpef, hfa-peff) and diastolic dysfunction parameters in heart failure patients with preserved ejection fraction. J Clin Ultrasound. 52 (1), 39-50 (2024).
  11. Villalba-Orero, M., Garcia-Pavia, P., Lara-Pezzi, E. Noninvasive assessment of HFPEF in mouse models: Current gaps and future directions. BMC Med. 20 (1), 349(2022).
  12. Watson, L. E., Sheth, M., Denyer, R. F., Dostal, D. E. Baseline echocardiographic values for adult male rats. J Am Soc Echocardiogr. 17 (2), 161-167 (2004).
  13. Kass, D. A. Assessing and interpreting diastolic function in animal models of heart disease. J Mol Cell Cardiol. 197, 1-4 (2024).
  14. Schnelle, M., et al. Echocardiographic evaluation of diastolic function in mouse models of heart disease. J Mol Cell Cardiol. 114, 20-28 (2018).
  15. Westenberg, J. J. Cmr for assessment of diastolic function. Curr Cardiovasc Imaging Rep. 4 (2), 149-158 (2011).
  16. Robinson, S., et al. The assessment of left ventricular diastolic function: Guidance and recommendations from the British Society of Echocardiography. Echo Res Pract. 11 (1), 16(2024).
  17. Del Buono, M. G., et al. Heart failure with preserved ejection fraction diagnosis and treatment: An updated review of the evidence. Prog Cardiovasc Dis. 63 (5), 570-584 (2020).
  18. Little, W. C., Oh, J. K. Echocardiographic evaluation of diastolic function can be used to guide clinical care. Circulation. 120 (9), 802-809 (2009).
  19. Reddy, Y. N. V., Carter, R. E., Obokata, M., Redfield, M. M., Borlaug, B. A. A simple, evidence-based approach to help guide diagnosis of heart failure with preserved ejection fraction. Circulation. 138 (9), 861-870 (2018).
  20. Ram, R., Mickelsen, D. M., Theodoropoulos, C., Blaxall, B. C. New approaches in small animal echocardiography: Imaging the sounds of silence. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 301 (5), H1765-H1780 (2011).
  21. Anavekar, N. S., Oh, J. K. Doppler echocardiography: A contemporary review. J Cardiol. 54 (3), 347-358 (2009).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи