Протокол исследования на животных был утверждён Комитетом по уходу за животными и использованию Пекинского университета китайской медицины. Реагенты и используемое оборудование перечислены в Таблице материалов.
1. Подготовка
- Получить 216 самцов крыс рода Sprague-Dawley (SD) без специфических патогенов (SPF) весом 300-320 г.
- Привыкните крыс к жилищной среде на неделю до эксперимента.
- Поддерживайте условия проживания на 23 ± 3 °C, влажности 45% ± 5% и 12-часовой цикл света и темноты (свет включается в 8:00, выключается в 20:00).
- Держите по пять крыс в каждой клетке с иммиграционным доступом к стерильному стандартному корму и воде.
ПРИМЕЧАНИЕ: Минимизировать количество используемых животных и уменьшить страдания с помощью мягкого обращения и оптимизированных процедур (например, регулируемых ремней для предотвращения подавления дыхания).
2. Операция по окклюзии средней церебральной артерии (MCAO)
ПРИМЕЧАНИЕ: На этом этапе описывается установление модели MCAO/реперфузии (MCAO/R), модифицированной по Бедерсону и др. 6.
- Подготовьте крыс к операции.
- Постите крыс ночью (12 часов) перед операцией (без ограничения воды).
- Анестезия крыс с помощью внутрибрюшнической инъекции пентобарбитала 1% натрия (50 мг/кг).
ПРИМЕЧАНИЕ: Дополнительные анальгетики не применялись, так как пентобарбитал натрия использовался исключительно как анестетик.
ВНИМАНИЕ: Пентобарбитал натрия — контролируемый анестетик. Держите в вытяжном контейнере, носите перчатки и очки, храните в запертом шкафу согласно институциональным нормам.
- Закрепите и подготовьте место операции.
- Поместите наркозированных крыс в положение на спине и закрепите их конечности.
- Сбрийте шерсть на шее и продезинфицируйте кожу соответствующим дезинфицирующим средством (например, 75% этанолом).
- Обнажите и подготовьте сосуды шеи.
- Сделайте разрез по центральной линии 2-3 см на коже шеи, затем тупо вскрыть подкожные железы и фасцию. Отдельте общую сонную артерию (ККА), внутреннюю сонную артерию (ИКА) и внешнюю сонную артерию (ЭКА), которые образуются ветвями ККК.
- Найдите CCA, положите под него два шва в резерв, один перевяжите у сердечного конца и завяжите живой узел рядом с разделением CCA с другим.
- Используйте артериальный зажим, чтобы закрыть дистальный конец CCA возле бифуркации.
- Найдите ЭКА и перевяжите его швом.
- Введите шов, чтобы закрыть MCA.
- Аккуратно вырежьте разрез на стенке между местом перевязки проксимального конца CCA и зажимом артериального клипса, затем введите в этот разрез специальный резьбовой пробку (монофиламентный шов).
- Откройте артериальный клипс и вставьте пробку резьбы в ICA от вилки, пока не почувствуете небольшое сопротивление, затем остановитесь (рисунок 1).
ПРИМЕЧАНИЕ: Длина шва (18 мм ± 2 мм) критически важна для стабильной окклюзии MCA; Немного отрегулируйте в зависимости от веса крысы (300-320 г).
- Вызвать ишемию и реперфузию.
- Поддерживайте ишемию в течение 2 часов (строго фиксируйте секундомером).
- Через 2 часа аккуратно вытащите шов, чтобы восстановить кровоток MCA, срежьте лишний шов и снимите артериальный клипс.
- Закройте место операции и следите за восстановлением.
- Промыйте разрез стерильным физиологическим раствором, затем зашвите подкожную ткань и кожу.
- Поместите крыс в клетку для восстановления (поддерживайте при температуре 25 ± 1 °C), пока они не придут в сознание; Следите за кровотечением или стрессом в течение 24 часов.
- Создайте фиктивную оперативную группу.
- Проведите ту же диссекцию шеи и экспозицию сосудов, что и в шагах 2.1–2.3.
- Введите шов в CCA всего на 5 мм, затем немедленно его удалите; Наложите швы на разрез без окклюзии MCA.
3. Группировка животных
- Случайным образом разделите крыс на шесть групп (первоначально n = 36 на группу) для неврологического оценки.
- Группа инсульта: только MCAO, без поведенческих ограничений или лечения лекарствами.
- Группа PSD: MCAO + поведенческое ограничение + изоляция, без медикаментозного лечения.
- Группа FXT: MCAO + поведенческое сдержанное средство + изоляционное помещение + гидрохлоридная флуоксетина.
- Группа YNJYP: MCAO + поведенческое ограничение + изоляционное жильё + рецепт Yi-nao-jie-yu (YNJYP).
- Пустая группа: операция не проводилась.
- Фиктивная операционная группа: нет закупорки средней мозговой артерии.
- Исключайте крыс с баллом 0 или 4 или тех, кто умер после операции.
- Проведите нейрологическую оценкуLonga 7 через 24 часа после MCAO для отбора квалифицированных крыс.
- Используйте 5-балльную шкалу Лонги: 0 = отсутствие дефицита; 1 = сгибание передней конечности при подъёме хвостом; 2 = круговое движение к паретической стороне; 3 = падающая в сторону паретической стороны; 4 = потеря сознания или неспособность ходить.
4. Введение гидрохлорида флуоксетина (FXT) и YNJYP
- Подготовьте YNJYP и FXT.
ПРИМЕЧАНИЕ: YNJYP содержит шесть китайских лекарственных веществ: циуцззя (корни Acanthopanax senticosus ) 30 г, юцзинь (корневища Curcuma longa ) 10 г, увэйцзы (плоды Schisandra chinensis ) 15 г, чиззи (плоды Gardenia jasminoides ) 10 г, даньшэнь (корни Salvia miltiorrhiza ) 15 г и чуаньсюн (Ligusticum chuanxiong ) корневища) 15 г (предоставлено кафедрой фармации Третьей аффилированной больницы Пекинского университета китайской медицины). Согласно предыдущимисследованиям 8, доза внутрижелудочного введения составляла 9,92 г/(кг·д).
- Растворите капсулы с гидрохлоридом флуоксетина в дистиллированной воде для достижения концентрации 0,233 г/л при использовании. Исходя из дозировки для взрослых, умноженной на семь, установите дозировку для крыс на уровне 2,33 мг/(кг·д).
- Вводите лекарства через гаваж.
- Начинайте гаваж с первого дня после MCAO и продолжайте до конца эксперимента, при этом процедура регулярно проводится утром во всех группах.
- Вводите FXT в группу FXT в дозе 2,33 мг/(кг·д), YNJYP в группу YNJYP при 9,92 г/(кг·д) и 0,9% нормального физиологического раствора (10 мл/кг) в группы инсульта и PSD.
ПРИМЕЧАНИЕ: Используйте иглу для гавада на 1 мл; Убедитесь, что игла введена в желудок (а не в трахею), чтобы избежать аспирации.
5. Хронический лёгкий стресс (поведенческие ограничения) в сочетании с изоляционным жильём
- Начинайте процедуру поведенческих ограничений и изоляционное содержание на 7-й день после MCAO (чтобы избежать фазы острого инсульта).
- Подготовьте индивидуальную T-образную платформу для фиксации.
- Платформа состоит из основания (20 см × 10 см × 2,8 см) и зоны крепления (22 см × 6,6 см).
- Зона фиксации содержит прорези для крепления головы и конечностей крысы, а также три регулируемых ремня для разных размеров крыс (рисунок 2, рисунок 3 и рисунок 4).
ПРИМЕЧАНИЕ: Платформа модифицирована по сравнению с Chen3 иTian 4, с добавленными слотами для передних конечностей для имитации паретической позы пациентов с инсультом.
- Соблюдайте ежедневные ограничения.
- Случайным образом выбирайте двухчасовое окно каждый день (например, с 9:00 до 11:00 или с 14:00 до 16:00), чтобы избежать циркадного смещения.
- Закрепите каждую крысу на платформе с помощью прорезей и ремней; Регулировать сжатость, чтобы предотвратить трудности, но не подавлять дыхание.
- Сохраняйте ограничение в течение 2 часов непрерывно в течение 7 дней подряд.
- Домашние крысы в изоляции.
- Переместить крыс в группах PSD, FXT и YNJYP из группового содержания (по пять крыс в клетке) в одиночные клетки в начале действия поведенческих ограничений.
- Сохраняйте одиночное жилье до завершения соблюдения поведенческих ограничений (после 14-го дня MCAO).
6. Тест на потребление сахарозы (SCT)
ПРИМЕЧАНИЕ: Случайным образом выберите шесть крыс из каждой группы через 2, 4 и 8 недель после MCAO. Проверьте всех крыс в порядке SCT, OFT и FST.
- Подготовьте крыс к тесту.
- Быстро и лишьте крыс воды за 24 часа до теста.
- Убедитесь, что температура в тестовой комнате (23 ± 2 °C) и освещение соответствуют условиям помещения.
- Проведите тест.
- Поставьте в каждую клетку по две бутылки (по 150 мл каждая): одна с водопроводной водой, другая — с раствором сахарозы 1%.
- После часа свободного питья записывайте объёмы сахарозного раствора и потребленной воды.
- Рассчитайте предпочтения сахарозы.
- Используйте формулу: предпочтение сахарозы (%) = (объём употребленного раствора сахарозы / общий объём потребления) × 100%.
- Поменяйте места между двумя бутылками в середине периода питья, чтобы устранить смещение позиции.
7. Тест на открытом поле (OFT)
ПРИМЕЧАНИЕ: Выберите одну и ту же партию крыс из каждой группы, используемую для FST, на 2, 4 и 8 недель. Постите и лишьте крыс воды в течение 24 часов до теста, чтобы поддерживать стабильные физиологические условия.
- Подготовьте оборудование для открытого поля.
- Используйте чёрный квадратный квадрат с полом, разделённым на 25 равных сеток.
- Держите тестовую комнату тихой и слабо освещенной.
- Проведите тест.
- Поместите каждую крысу в центральную сетку коробки и запустите таймер на 5 минут.
- Фиксировать горизонтальную активность (количество пересечений сетки с тремя четвертями лап в новой сетке) и вертикальную активность (количество задних с двумя четвертями лап над полом, вручную наблюдая с помощью ручных счетчиков).
- Записывайте время, проведённое в центральной сетке, и частоту груминга (по желанию, для дополнительной поведенческой информации).
8. Тест на принудительное плавание (FST)
ПРИМЕЧАНИЕ: Выберите одну и ту же партию крыс из каждой группы, используемую для FST, на 2, 4 и 8 недель. Постите и лишьте крыс воды в течение 24 часов до теста, чтобы поддерживать стабильные физиологические условия.
- Подготовьте тестовое оборудование.
- Наполните стеклянный цилиндр соответствующим объёмом воды, убедившись, что уровень воды достаточно высок, чтобы крыса не могла поддерживать себя, касаясь ногами о дно.
- Отрегулируйте температуру воды на 25 ± 1 °C.
- Проведите тест.
- Поместите каждую крысу в цилиндр и дайте ей поплавать 5 минут.
- Запишите общее время неподвижности за 5 минут.
- Определите «неподвижность» как пассивное плавание (минимальные движения, чтобы нос оставался над водой), а «активность» — как гребля конечностями или царапание стены.
- Ухаживайте за крысами после теста.
- Вынимите крысу из цилиндра через 5 минут, высушите полотенцем и поместите под нагревательную лампу (30 ± 2 °C) на 30 минут, чтобы избежать переохлаждения (рисунок 5).
9. Статистический анализ
- Организуйте данные по среднему ± стандартному отклонению (среднее ± SD).
- Анализируйте данные с помощью программного обеспечения SPSS версии 20.0.
- Перед проведением параметрических тестов проверьте данные на нормальность (с помощью теста Шапиро-Уилка) и однородность дисперсий (с использованием теста Левина). Данные каждой группы соответствуют нормальному распределению и удовлетворяют однородности дисперсии.
- Используйте односторонний анализ дисперсии (односторонний ANOVA) для сравнения выборочных средних между группами, в сочетании с тестами наименее значимой разницы (LSD) и тестами Студента-Ньюмана-Кюлса (SNK). Используйте тест Уэлча, когда дисперсии неравны.
- Установите статистическую значимость на p < 0,05.