Моделирование животных
Это исследование было одобрено Этическим комитетом Второй аффилированной больницы Фуцзянского университета традиционной китайской медицины (Одобрение No FJPSPH-IAEC2024114) и проводились в соответствии с руководящими принципами по благополучию животных. Самцы крыс Спраг-Доули весом 180-200 г содержались в контролируемых условиях при 22-26°C и влажности 40-70%. ТСМ был индуцирован методом Аллена с понижениемвеса 10: 3-4% ингаляционная анестезия с изофлураном, разрез средней линии при T10, экспозиция сегментов T9-T11, ламинэктомия (твердая твердость сохранилась) и импактация (кончик 2 мм, скорость 0,5 м/с, глубина 1,3 мм, длительность 1 с). Фиктивные крысы проходили ламинэктомию без воздействия. Критерии включения: балл BBB < 8 через 24 часа после операции; Критерии исключения: инфекция, пересечение спинного мозга. Послеоперационный уход: обезболивание (бупренорфин, 0,1 мг/кг с жидкостью, каждые 12 часов в течение 3 дней), экспрессия мочевого пузыря (каждые 6 часов в течение 1 недели) и уход за стерильными ранами. Успешные модельные крысы были случайным образом распределены в модельную группу: группы GLGZ с высокой дозой (2,32 г/кг, n = 10), средней (1,16 г/кг, n = 10), низкой дозой (0,58 г/кг, n = 10).
Анализ моторных функций
Бассо, Бити и Бреснахан (BBB) записывали музыку слепо. Крыс наблюдали на открытом поле в течение 5 минут, отмечая движение задних конечностей, нагрузку, походку и координацию.
Эластография сдвиговых волн для измерения жёсткости прямой мышцы бедра
Использовалась доплеровская ультразвуковая система с линейным антенным зондом (18L6). Крыс помещали в боковое лежащее положение (мышцы расслаблены). SWE проводилась с зондом, расположенным под углом 90° к мышце, на глубине 1–2 см. Область интереса (ROI) была установлена на уровне 0,5 × 0,5 см, и за каждый измерение было получено десять кадров. Итоговое значение жесткости представляло среднее значение трёх действительных измерений. Фиксировалась скорость сдвиговой волны (SWV); Зелёный контроль качества показывал действительные изображения11.
МРТ-обследование
МРТ проводилось с использованием сканера 7.0T с последовательностью с подавлением жира T2 и животно-специфической катушкой. Параметры захвата были следующими: время повторения (TR) 3 800 мс, время эхо (TE) 72 мс, толщина среза 1 мм, размер вокселей 0,1 × 0,1 × 1 мм, матрица 256 × 256, поле зрения (FOV) 25,6 × 25,6 мм, четыре средние значения сигнала и респираторная система. Область поражения измерялась с помощью программного обеспечения для обработки изображений.
Гистологическое окрашивание
HE окрашивание проводилось через последовательную депарафинизацию, регидратацию, окрашивание гематоксилином в течение 5 минут, промывание в проточной воде, дифференцировку в 1% соляной кислоты-этаноле в течение 30 секунд, окрашивание эозином в течение 2 минут, обезвоживание, очистку и монтаж. В качестве визуального контрольного пункта окрашенные участки показывали синие ядра и красную цитоплазму.
Окрашивание Nissl проводилось путём депарафинизации, регидратации, инкубации в толуидиновой синей температуре 0,1% при температуре 50-60 °C в течение 30 минут, затем промывания дистиллированной водой, дифференцировки этанола, обезвоживания, очистки и монтажа. В качестве визуального контрольно-пропускного пункта в фиктивной группе явно наблюдались тёмно-синие тела Nissl.
Быстрое окрашивание Luxol в сине-кресил-фиолетовый цвет проводилось путём депарафинизации, регидратации, инкубации в Luxol fast blue при 60 °C в течение 2 час, промывания 95% этанола, дифференцировки в карбонате лития в течение 30 секунд, затем дифференцировки 70% этанола, контрокрашивания кресил-фиолетовой в течение 10 минут, обезвоживания, очистки и монтажа. Рабочая концентрация кресил-фиолетовой составляла 0,1%. В качестве визуального контрольного пункта в фиктивной группе наблюдался тёмно-синий миелин.
Мультиплексное иммунофлуоресцентное окрашивание проводилось, начиная с депарафинизации, регидратации и забора антигена с использованием цитратного буфера (pH 6,0) при 95 °C в течение 20 минут. Срезы обрабатывались перекисью водорода 3% в течение 10 минут, затем блокировали 5% BSA при 37 °C в течение 1 часа. Первичные антитела инкубировали ночью при 4 °C (ASC: 1:500; Каспаза-8: 1:400; RIPK3: 1:500). После промывания PBS-T (0,1% Tween-20, 3 x 5 минут) секции инкубировали с вторичными антителами, маркированными HRP (1:1000) при 37 °C в течение 1 часа. Затем применялась маркировка флуорохромом: YTR520 Plus для ASC, TYR570 Plus для Caspase8 и TYR690 Plus для RIPK3 (30 мин), после чего DAPI — ядерное окрашивание в течение 5 минут. Были установлены слайды, а визуализация проводилась с использованием флуоресцентного микроскопа, установленного на экспозиции 500 мс, усилении 1,0, увеличении ×200, с фильтрами, соответствующими соответствующим флюорохромам.
Для ксилола и этанола все операции проводились в выхлопной вытяжке, а во время использования носили перчатки и очки. Для окрашивающих реагентов прямой контакт с кожей строго избегался. Все реагенты для отходов утилизировались в специально отведённых контейнерах для опасных отходов. Для биологических опасных материалов перед окончательной утилизацией проводилась тщательная стерилизация автоклава, чтобы предотвратить потенциальное биологическое загрязнение.
Статистический анализ
Односторонний ANOVA с пост-хок тестом ЛСД использовался для сравнения групп. P < 0,05 считался статистически значимым.