Методическая статья

Нейтрофилов Изоляция протокола

DOI:

10.3791/745

⸱

23 июля 2008 г.

 ,  , 
1Institute for Medicine and Engineering, University of Pennsylvania

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Нейтрофилы являются одними из первых клеток, чтобы прибыть на место воспалительного иммунного ответа, а также их функции и механизмы хорошо изучены в лабораторных условиях. Мы демонстрируем стандартный градиент плотности метод разделения, чтобы изолировать нейтрофилов человека из цельной крови с использованием коммерчески доступных раздела сред.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Нейтрофилов полиморфноядерных гранулоцитов (PMN) являются наиболее распространенными лейкоцитов в организме человека и одним из первых клетках, чтобы прибыть на место воспалительного иммунного ответа. Из-за их ключевую роль в воспалении, нейтрофилов функции, такие как передвижение, продукции цитокинов, фагоцитоз, и опухоль боевой ячейки хорошо изучена. Чтобы охарактеризовать специфические функции нейтрофилов, чистый, быстрый и надежный метод, отделяющий их от других клеток крови желательно в лабораторных исследованиях, тем более, что нейтрофилы являются короткоживущими и должны быть использованы в течение 2-4 часов после сбора. Здесь мы демонстрируем стандартный градиент плотности метод разделения, чтобы изолировать нейтрофилов человека из цельной крови с использованием коммерчески доступных разделение средств массовой информации, что представляет собой смесь натрия и metrizoate Декстран 500. Процедура состоит из слоев цельной крови в среднесрочной градиента плотности, центрифугирование, отделение слоя нейтрофилов, и лизиса остаточных эритроцитов. Затем клетки промывают, рассчитывали, и ресуспендировали в буфере для желаемой концентрации. При правильном выполнении этого метода было показано, что выход образцы> 95% нейтрофилов с> 95% жизнеспособность.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Нейтрофилов Изоляция протокола

  1. Довести все реагенты до комнатной температуры.
  2. Сбор 5,0 мл нейтрофилов изоляции СМИ в центрифуге трубки. Тщательно слой 5,0 мл крови за разделение средств массовой информации. Данный шаг следует выполнять медленно и осторожно, и с кончика пипетки близко к поверхности, средств массовой информации, чтобы избежать смешивания крови и средств массовой информации.
  3. Центрифуга при 500 RCF в течение 35 минут при температуре 20-25 ° C. Кровь должна выделить на 6 отдельных полос: плазма, моноцитов, изоляция СМИ, нейтрофилы, больше СМИ изоляции и красных клеток крови гранул (рис. 1). Если эти группы не ясны, процесс разделения не было чистым и необходимо будет повторить.
  4. Аккуратно снимите верхнюю три слоя (плазма, моноциты, и изоляции средств массовой информации) с помощью пипетки. Утилизация этих слоев.
  5. Тщательно пипеткой слой нейтрофилов и все средства массовой информации изоляции под нейтрофилов. Место раствор в чистую пробирку центрифуги.
  6. Развести нейтрофилов решение до 10 мл HBSS без Са 2 + / Mg 2 +. Обратить трубку несколько раз, чтобы приостановить клеток.
  7. Центрифуга нейтрофилов решение при 350 RCF течение 10 минут. Красный шарик должен присутствовать на дне пробирки, содержащие нейтрофилов и остаточной красных кровяных телец (эритроцитов). Удалить супернатант с пипеткой осторожно, чтобы шарик не нарушается.
  8. Для лизиса остаточных эритроцитов, добавляют 2 мл красного буфера лизиса клеток к трубе. Для ресуспендирования гранул, вихревые флаконе установка 3-4. Избегайте увеличения вихревой настройки выше 4, так как это может привести к активации нейтрофилов. Это может быть необходимо, чтобы вихрь в течение нескольких секунд, или "пульс" вихрь, чтобы растворить гранулы.
  9. Центрифуга трубке при 250 RCF в течение 5 мин. Удалить супернатант с пипеткой. Повторите лизировать процесс, если требуется.
  10. Добавить 500 мкл HBSS без Са 2 + / Mg 2 + в каждую пробирку. Опять же, вихрь для ресуспендирования гранул в установке 3-4. Развести в 10 мл HBSS без Са 2 + / Mg 2 +.
  11. Центрифуга труб при 250 RCF в течение 5 мин. Аспирируйте супернатант и выбросьте.
  12. Ресуспендируют осадок в 250 мкл HBSS / HSA Решение (2% HSA). Ячейки могут быть посчитаны и доводят до нужной концентрации.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Разделение градиента плотности метод используется для изоляции нейтрофилов человека из цельной крови с использованием смеси натрия metrizoate и Декстран 500. Этот метод основан на мононуклеарных лейкоцитов метод разделения Boyum (1968), который был модифицирован для нейтрофилов разделения Ферранте и стринги (1980).

После сбора от донора, кровь может быть антикоагулянтом ЭДТА, цитрат или гепарин. Так как они недолговечны, нейтрофилов следует использовать в течение 2-4 часов после сбора. Процедура состоит из слоев цельной крови в сред...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Финансирование из NIH R01 HL56621.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Лимфоцитарный Poly(R)РеагентCedarlane LabsPolymorphprepTM может быть использован в качестве альтернативы
Хэнк’Сбалансированный солевой раствор без хлорида кальцияРеагентInvitrogen
Альбумин сыворотки крови человекаРеагентZLB Bioplasma
Буфер для лизиса эритроцитовРеагентГруппа Roche
ЦентрифугаИнструмент
Вортекс (смеситель типа «вортекс»)Инструмент
Пипетки Пастера и грушиИнструмент
PolymorphprepTMРеагентAxis-ShieldАльтернативный реагент вместо Lymphocyte-Poly (R)
Шприцевой фильтрПрочееEMD MilliporeSLGV033RSMillex-GV, 0,22 μм, ПВДФ, 33 мм, стерилизуемый гамма-излучением
Хэнк’Сбалансированный солевой раствор с хлоридом кальцияРеагентInvitrogen

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Boyum, A. Separation of leucocytes from blood and bone marrow. Scand. J. Clin. Invest. 21, Suppl 97. 77-83 (1968).
  2. England, J. M., Rowan, R. M. The assignment of values to fresh blood used for calibrating automated blood cell counters. Clin. Lab. Haemat. 10, 203-212 (1988).
  3. Garcia, A. Comparison of two leukocyte extraction methods for cytomegalovirus antigenemia assay. J. Clin. Microbiol. 34, 182-184 (1996).
  4. Ferrante, A., Thong, Y. H. Optimal conditions for simultaneous purification of mononuclear and polymorphonuclear leucocytes from human peripheral blood by the Ficoll-Hypaque method. J. Immunol. Methods. 36, 109-109 (1980).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

HBSS

Похожие статьи