Рекомендации по хирургии грызунов

1. Предоперационное планирование

Хотя рекомендации не требуют, чтобы операции с грызунами проводились в специализированном хирургическом учреждении, используемая область должна быть продезинфицирована соответствующим дезинфицирующим средством с твердой поверхностью, которое следует использовать в соответствии с указанными производителем концентрациями и временем контакта. Помещение также должно быть свободным от беспорядка, и не находиться на прямой линии приточного и вытяжного каналов, так как сквозняки могут способствовать переохлаждению животного. Доступ в помещение должен быть ограничен при проведении хирургических процедур. Зона для хирургической подготовки (особенно для удаления шерсти животного), а также для послеоперационного восстановления и ухода также должна быть выделена в непосредственной близости, если не в пределах операционной. В целом, если операции регулярно проводятся в определенной области, эта область не должна использоваться для других видов деятельности.

Предоперационная подготовка должна включать физический осмотр хирургического пациента для выявления любых основных состояний здоровья, которые могут помешать операции. Поскольку у грызунов такая высокая скорость метаболизма и очень ограниченные жировые запасы, их не следует голодать перед операцией. Состояние гидратации животного должно быть оценено с помощью теста на эластичность кожи. Кожа над плечами мягко подтягивается. У нормально гидратированного животного кожа быстро вернется на место, в то время как у обезвоженного животного кожа не сразу вернется в свое нормальное положение. Также следует отметить общий внешний вид, такой как осанка и состояние шерсти. Животное, которое демонстрирует сгорбленную осанку или имеет неопрятную шерсть, может быть носителем болезни. Осмотр должен быть проведен непосредственно перед введением анестезии, а любые отклонения от нормы должны быть отмечены в карте животного. ² Наконец, при подготовке крысы или мыши к операции необходимо учитывать анатомию и физиологию крысы или мыши.

2. Платформа

Оба вида имеют высокое отношение площади поверхности к объему тела, что делает их восприимчивыми к гипотермии во время хирургических процедур, особенно когда хирургия обнажает полость тела. Меры по предотвращению переохлаждения включают использование хирургической платформы с подогревом.

Платформа, используемая для хирургии грызунов, которая обычно изготавливается из нержавеющей стали или твердого пластика, должна быть покрыта изоляционным материалом или дополнительным источником тепла, чтобы предотвратить утечку тепла тела животного во время процедуры. К дополнительным источникам тепла относятся грелки с циркуляцией воды, одеяла с принудительным подогревом воздуха, тепловые лампы или слой поролоновой прокладки, покрывающий хирургическую платформу. Хирургические платформы со встроенным источником тепла доступны в продаже. Все платформы должны быть изготовлены из материала, который легко дезинфицируется и непроницаем для влаги.

Другие методы предотвращения гипотермии включают использование массовых изоляторов, размещение изолирующих материалов между животным и хирургической платформой, а также использование внешних источников тепла. ³ Массовые изоляторы захватывают воздух внутри волоконной матрицы, производя «неподвижный воздух», который окружает животное. Под пациентом можно использовать циркулирующие одеяла с горячей водой. Это оборудование доступно в различных размерах от грызунов до лошадей и обеспечивает точную тепловую поддержку с помощью встроенных термостатов.

Химически активированные источники тепла могут быть как одноразовыми, так и многоразовыми. Один вид состоит из пластикового мешочка, наполненного химическим раствором и металлического диска, который при нажатии создает экзотермическую реакцию. Это приводит к тому, что жидкость затвердевает и выделяет тепло. Как правило, они имеют ограниченное количество тепла и подходят только для коротких процедур. Другие химические источники нагрева доступны в виде твердых тел при комнатной температуре, но при нагревании они становятся жидкими. Когда животное помещается на подушку, жидкость выделяет тепло, а содержимое подушки затвердевает по мере охлаждения. Они могут выделять тепло в течение гораздо более длительного периода времени. В качестве преимущества они не могут превышать температуру активации (~39°C), что устраняет необходимость в термостате.

Пакеты для воды доступны в виде бутылок с горячей водой, состоящих из резинового или силиконового мешка с пробкой. Пакеты наполняются горячей водой, которая затем выделяет тепло на внешнюю поверхность. Пакет будет постепенно терять тепло по мере охлаждения воды. Более современный вариант состоит из пластикового листа с приклеенной сверху водопроницаемой тканью. Пространство между ними заполнено гидрофильным порошком, который впитывает воду и набухает. Его можно использовать как в качестве источника тепла, так и в качестве источника охлаждения. В зависимости от качества материалов, его можно использовать повторно и разогреть в микроволновой печи или замочить в горячей воде.

Необходимо соблюдать меры предосторожности при использовании внешних источников тепла. Температуру тела следует контролировать либо с помощью ректального зонда, либо с помощью термометра, помещенного рядом с животным на источнике тепла. Перед использованием все внешние источники тепла должны быть проверены на наличие дефектов.

3. Удаление волос

Место операции должно быть подготовлено, чтобы свести к минимуму загрязнение разреза. Волосы должны быть плотно подстрижены или удалены химическим кремом для депиляции, который растворяет волос в месте фолликула. ^2,3 Несмотря на то, что стрижка волос иногда может быть выполнена на животном, находящемся в сознании, с помощью ручного удержания, нанесение крема для депиляции следует проводить только на животном, находящемся под наркозом, чтобы предотвратить проглатывание продукта, повреждение глаз и удаление лишних волос. Бритье бритвой является вариантом, если нет альтернативы. Этот метод требует технических навыков, дополнительного времени и терпения, чтобы предотвратить рваные раны на коже. Операционное поле должно быть достаточно большим, чтобы можно было сделать разрез и наложение швов без включения шерсти в операционную рану, но как можно меньше, чтобы избежать обострения гипотермии.

1. газетная вырезка
   1. Волосы можно стричь с помощью проводных электрических машинок для стрижки или машинок с питанием от батареек, предпочтительно с помощью хирургического лезвия A40. Следует учитывать ширину лезвия. Стандартное лезвие 2 дюйма можно использовать для крыс, в то время как лезвие 1/2-1 дюйм больше подходит для мышей.
   2. Волосы подстригаются против направления роста. Растягивайте кожу, чтобы стабилизировать ее, так как у грызунов кожа имеет слабое прикрепление к основной мышце.
   3. Необходимо соблюдать осторожность, чтобы не поцарапать или не порезать кожу. Плоский конец лезвия кладется на кожу при стрижке волос. Лезвие никогда не следует использовать с зубьями, перпендикулярными коже.

Рисунок 1. Правильное положение машинки для стрижки волос во время бритья.

2. Химические кремы или лосьоны для депиляции
   1. Нанесите изделие на область операционного участка.
   2. Через 10 минут кожу необходимо полностью промыть и очистить от всех следов депилятора, чтобы избежать раздражения или химических ожогов кожи.

4. Хирургический скраб

Хирургические скрабы, которые следует использовать, должны: 1) значительно уменьшать количество микробов, присутствующих на коже, и содержать противомикробный препарат, не вызывающий раздражения; 2) обладают широким спектром антимикробных свойств; 3) быть быстродействующим; и 4) имеют постоянную, кумулятивную активность.

Два часто используемых очищающих скраба - это хлоргексидины и йодофоры. Растворы хлоргексидина эффективны против бактерий и вирусов даже в присутствии органических веществ. Напротив, йодофоры обладают широким спектром микробицидного действия, но их эффективность снижается в присутствии органического материала; Остаточная активность меньше, чем у хлоргексидинов.

Ополаскиватели между скрабами либо стерильные, либо спиртовые. Спиртовые растворы, содержащие 60-95% спирта, обладают большим антимикробным действием за счет денатурации белков. ² Тем не менее, алкоголь может быть сильным раздражителем кожи. Стерильная вода эффективна для промывания участка, но при этом не обладает противомикробными свойствами.

1. Используйте смоченную марлевую губку для удаления грубых загрязнений, включая волосы и перхоть.
2. Антисептический очищающий раствор, смоченный на марлевой тампон, наносится на кожу, начиная с места разреза. Дезинфекция должна начинаться по линии разреза и распространяться наружу по круговой схеме.
3. Затем наносится антисептическое полоскание, начиная с места разреза. Кожа протирается по круговой схеме, идущей по спирали от линии разреза к периферии операционного поля, чтобы удалить очищающий раствор.
4. Это повторяется три раза.
5. После окончательного полоскания на операционное поле кладут стерильную марлевую салфетку. Такую марлю можно смочить либо спиртом, либо йодом. Марля будет снята после транспортировки животного и помещена на операционную платформу или хирургический стол/скамейку.

Области тела, где стандартные методы хирургического скрабирования не используются, включают глаза, рот и анальную область. Поскольку при использовании скрабов поверхность глаза может быть повреждена, хирургическое скрабирование проводится только на веках после закапывания защитной мази в глаз. В некоторых ситуациях физиологически сбалансированный солевой раствор используется для промывания глаза, чтобы удалить грубый мусор и разбавить любые бактерии до уровня, приемлемого для проведения операции. Ротовую полость также трудно очистить достаточно для хирургического вмешательства. Его можно промыть физиологически сбалансированным солевым раствором, чтобы разбавить любые бактерии; Тем не менее, важно избегать использования слишком большого количества физиологического раствора, который может вызвать аспирацию жидкости. Десны, зубы и язык можно протирать нетоксичным антисептиком. Однако нанесение растворов на слизистые оболочки может привести к системной абсорбции. Операции в анальной области, такие как хирургическое уменьшение пролапса прямой кишки, не считаются чистыми операциями. Использование некоторых антисептических растворов может увеличить повреждение тканей и предотвратить или продлить заживление. Использование физиологически сбалансированного солевого раствора для очистки участка от крупного мусора является предпочтительным методом хирургической подготовки. ^2,4

5. Позиционирование

Позиционирование пациента для процедур на брюшной полости включает в себя закрепление конечностей лежащего животного на платформе с помощью ленты или лигатуры. При использовании лигатуры для разгибания конечностей необходимо соблюдать осторожность, чтобы не допустить нарушения кровообращения в ногах, избежать чрезмерного напряжения конечностей и чрезмерного растяжения конечностей, которое может нарушить работу суставов, а также избежать затруднения дыхания. Стяжки должны быть быстрорасстегивающимися, с петлей только наполовину через ветку. Некоторые коммерчески доступные платформы поставляются со встроенным втягиванием конечностей, которое состоит из крючков или петель из проволоки из нержавеющей стали или шаровой цепи, которые можно регулировать в соответствии с размером животного. Если используется скотч, его необходимо приклеить к сухим поверхностям.

6. Драпировка

После того, как животное подготовлено и помещено на хирургическую платформу, хирургические простыни используются для предотвращения загрязнения шовного материала и поддержания стерильного поля в месте операции. Простыни могут быть многоразовым тканевым материалом, бумажным одноразовым материалом или одноразовым пластиковым клеевым материалом.

Одноразовые бумажные простыни имеют тканую волокнистую матрицу для прочности, которая позволяет резать любую форму или размер, включая вырезание остекления или отверстия в драпировке, без разрыва или изнашивания обрезанных краев. Они также обладают влагоотталкивающими свойствами. Одноразовые простыни можно приобрести в расфасованном и простерилизованном виде различных размеров и форм. Тканевые простыни не предназначены для разрезания хирургом для создания фенестрации. Они приобретаются с предварительно срезанным и связанным краевым остеклением. Тканевые портьеры требуют стирки и стерилизации. При правильном уходе тканевые портьеры могут прослужить долгие годы, что делает их экономичным вложением.

Как бумажные, так и тканевые портьеры удерживаются на месте с помощью зажимов для полотенец через кожу животного, если это более крупный грызун, например, взрослая крыса. У мелких грызунов драпировка не прикрепляется к коже, что требует бдительности и осторожности со стороны хирурга, чтобы не сместить или не сдвинуть драпировку после того, как она была установлена на животном.

Клейкие простыни бывают прозрачными или непрозрачными. Прозрачные простыни предпочтительны для операций на грызунах, так как они позволяют напрямую визуализировать животное. Некоторые пластиковые простыни представляют собой комбинацию пластика и бумаги, при этом пластиковая область находится непосредственно над животным, а бумажная область определяет расширенное стерильное поле. Часть простыни, которая находится непосредственно над местом хирургического разреза, предназначена для прилегания к области разреза. Затем хирург может разрезать непосредственно пластик при выполнении разреза кожи. Стерилизованная полиэтиленовая пленка была признана экономичным и полезным материалом для операций на грызунах. Необходимо соблюдать осторожность, чтобы избежать стеснения движений для дыхания, когда повязка надевается на пациента. Обертывание сохранит тепло тела, позволит визуализировать пациента и обеспечит барьер для влаги между стерильным полем и животным. Он также может служить для помощи в позиционировании и удержании животного во время операции вместо фиксации конечностей.

Шторы любого типа должны быть аккуратно развернуты, чтобы избежать контакта с нестерильными помещениями, оборудованием и персоналом; их никогда не следует разворачивать, встряхивая или размахивая.

1. Бумажные шторы: При использовании одинарной драпировки драпировка разворачивается так, чтобы можно было разрезать остекление, если оно не было предварительно разрезано.
   1. Хирург наложит простыню на животное, держа руки на той стороне простыни, которая не будет касаться пациента.
   2. Драпировка регулируется таким образом, чтобы операционное поле было видно через остекление.
   3. Драпировка удерживается на месте с помощью зажимов для полотенец через кожу животного в случае более крупных крыс.
2. Бумажные или пластиковые с клейким окошком
   1. Драпировка с адгезивным окном требует отклеивания бумажной области, чтобы клейкая область прилипла к операционному полю
   .
   2. При развертывании стерильной простыни адгезивная область, как правило, является самой верхней областью и легко доступна для хирурга.
   3. После того, как клей открыт, драпировку осторожно разворачивают и поворачивают так, чтобы липкая сторона была обращена к животному.
   4. Крайне важно, чтобы простыня была размещена правильно, так как после контакта клея с животным ее невозможно будет отрегулировать.
   5. Хирург должен аккуратно прижать клей к операционному полю, чтобы создать уплотнение с кожей.
3. Тканевые портьеры
   1. Фенестрированные тканевые простыни не должны быть разрезаны, поэтому хирург обязан выбрать простыню с достаточно большим отверстием, чтобы адекватно обнажить операционную область, но не настолько большим, чтобы можно было обнажить любые небритые и неподготовленные поверхности тела.
   2. Драпировка тщательно разворачивается, чтобы открыть остекление.
   3. Хирург наложит простыню на животное, держа руки на той стороне простыни, которая не будет касаться пациента.
   4. Драпировка регулируется таким образом, чтобы операционное поле было видно через остекление.

Рисунок 2. Операционное поле видно через остекление правильно размещенной простыни.

4. Клеевые простыни: экономичный и полезный материал для операций на грызунах. ⁵
   1. Драпировка должна быть оттянута от рулона таким образом, чтобы используемая секция оставалась стерильной.
   2. Ассистент хирурга открывает коробку и вытягивает накидку наружу, стараясь не прикасаться к коробке или любой другой поверхности.
   3. Хирург захватывает бинт с каждой стороны, а ассистент отрезает конец, который они держат подальше (примерно 3-4 дюйма).
   4. Отбросив срезанный край, помощник также отрезает секцию от остальной части рулона.
   5. Хирург захватывает одну сторону бинта и надевает его на животное.
   6. Свойства пленки позволяют ей прилипать ко всем поверхностям.
   7. Хирург прижимает пленку к животному и создает стерильное поле.
   8. Нет необходимости использовать зажимы для полотенец или переживать, что портьера сместится.
   9. Необходимо соблюдать осторожность, чтобы избежать стеснения движений для дыхания. Обертывание сохранит тепло тела, позволит визуализировать пациента и обеспечит барьер для влаги между стерильным полем и животным.

7. Интраоперационный мониторинг

Пациенты под наркозом должны контролироваться на предмет температуры тела, дыхания и частоты сердечных сокращений до полного выздоровления.

Температуру тела можно контролировать прямо или косвенно. Для прямого мониторинга необходимо использовать ректальный зонд, разработанный специально для грызунов. Ректальные термометры мелких животных, ртутные или цифровые, слишком велики для использования у мышей и крыс без повреждения анального сфинктера и тканей прямой кишки. У восприимчивых штаммов их использование может спровоцировать пролапс прямой кишки. Косвенный мониторинг предполагает размещение термометра рядом с животным или под телом на внешнем источнике отопления. Хотя это не дает точной температуры тела, это может указать на эффективность источника тепла и позволить внести коррективы для уменьшения или увеличения тепла по мере необходимости.

Трудно аускультировать частоту сердечных сокращений и подсчитать дыхание на мелких грызунах без специализированного оборудования.

Большинство мониторинга является визуальным и указывает только на наличие или отсутствие грудного или брюшного дыхания. Частота сердечных сокращений оценивается как присутствующая или отсутствующая с помощью пальпации или визуального наблюдения за мелкими движениями грудной стенки. Во время операции это может быть невозможно из-за драпировки и небольшого размера животного.

Дополнительный мониторинг может быть выполнен с помощью электрокардиограммы (ЭКГ) и пульсоксиметра. ЭКГ оценивают сердечный статус грызуна во время анестезии и хирургического вмешательства. Пульсоксиметр использует преломление красного и инфракрасного света для измерения кислорода в артериальной крови. Эта технология была адаптирована для использования у грызунов с помощью хвоста или лапы. Оба типа неинвазивных текущих измерений жизненно важных показателей пациента легко доступны с минимальным нарушением операционного поля.

8. Послеоперационный мониторинг

Следует рассмотреть возможность использования грелки под клеткой восстановления после операции. Кроме того, по возможности следует проводить упреждающее и послеоперационное обезболивание. Обезболивание наиболее эффективно для снижения интенсивности болевой стимуляции, если оно проводится до болезненного события. Преимущества упреждающего использования анальгетиков включают снижение интенсивности болевой стимуляции, повышение уровня комфорта животного после операции, уменьшение количества анестезии, необходимой для поддержания операционной плоскости, и более плавное восстановление после анестезии после завершения процедуры. Обычно используемые упреждающие и послеоперационные препараты приведены в таблице 1. ⁶

Класс лекарственных средств	имя	дозировка	частота
Нестероидный противовоспалительный препарат (неконтролируемое вещество)	Кетопрофен	2-5 мг/кг мышей<бр/> 5 мг/кг ск крыс	каждые 12–24 часа<чел. /> каждые 12–24 часа
Нестероидный противовоспалительный препарат (неконтролируемое вещество)	Флуниксин меглумин	2,5 мг/кг подкожных мышей	каждые 12–24 часа
Нестероидный противовоспалительный препарат (неконтролируемое вещество)	Мелоксикам	5-10 мг/кг ПО мышам или 1-2 мг/кг СК мышам<бр/> 5-10 мг/кг перорально или 1-2 мг/кг ск или перорально крысы	каждые 12–24 часа<чел. /> каждые 24 часа<чел. /> каждые 12–24 часа<чел/> каждые 24 часа
Нестероидный противовоспалительный препарат (неконтролируемое вещество)	Ацетаминофен	50 мг/кг СК/ВП или 100 мг/кг перорально крыс	каждые 8–12 часов
Опиоид (контролируемое вещество)	Буторфанол	0,5-3,0 мг/кг п/к или 0,2-2 мг/кг IP-мышей<бр/> 2,0 мг/кг SC 0,2-2 мг/кг IP-крыс	каждые 4 часа<чел/> каждые 2–4 часа<чел/> каждые 4 часа<чел/> каждые 2–4 часа
Опиоид (контролируемое вещество)	Бупренорфин	0,05-2,5 мг/кг SC или IP мышей 0,01 – 0,5 мг/кг подкожных крыс	каждые 6–12 часов <чел/> каждые 8–12 часов
Опиоид (контролируемое вещество)	Оксиморфон	0,2-0,5 мг/кг мышей<бр/> 0,2-0,5 мг/кг подкожных крыс	каждые 6–12 часов<чел. /> каждые 6–12 часов

Таблица 1. Обычно используются упреждающие и послеоперационные препараты.