RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Источник: Кей Стюарт, RVT, RLATG, CMAR; Валери А. Шредер, RVT, RLATG. Университет Нотр-Дам, Индиана
Введение компаунда часто является неотъемлемым компонентом исследования на животных. Чтобы убедиться в правильной подаче компаунда, необходимо оценить множество факторов. Способ введения влияет на механизмы всасывания. Характеристики вводимого вещества (pH, вязкость и концентрация) могут диктовать, какой способ введения будет выбран.1,2,3
1. Местное применение

Рисунок 1. Местное применение у мышей.
2. Пероральное дозирование
3. Процедура зондажа
20-25 калибра x 1,5 в прямых или изогнутых дозирующих иглах используются для мышей. Для крыс используются иглы 18-20 калибра х 2-3 в прямых или изогнутых дозирующих иглах. Они доступны в виде многоразовых игл из нержавеющей стали или в виде одноразовых игл. Одноразовые иглы могут иметь металлический или гибкий пластиковый стержень с силиконовым наконечником.

Рисунок 2. Оральный зонд у мышей (слева) и крыс (справа).
Многие эксперименты требуют, чтобы соединение вводилось животному перорально или местно, чтобы метод лучше имитировал естественное поступление экспериментального вещества.
Для перорального приема соединение можно растворять в питьевой воде или добавлять в пищу, которую потребляют животные. Другим, более точным методом перорального дозирования является пероральный зонд, при котором с помощью большой иглы соединение вводится непосредственно в желудок. С другой стороны, средство для местного применения может быть нанесено непосредственно на поверхность кожи и, как правило, предназначено для воздействия только на область, на которую оно наносится. Каждая из этих стратегий имеет свои преимущества и ограничения, о которых мы поговорим в этом видео. После этого мы продемонстрируем, как выполнять эти методы введения соединений на лабораторных животных, а также некоторые из их применений.
Прежде чем углубиться в протоколы, давайте рассмотрим соображения, преимущества и недостатки этих методов. Пероральное дозирование таблеток, капсул или жидкости является наиболее часто используемым методом введения лекарств у людей. Тем не менее, таблетки и капсулы непрактичны для грызунов, поэтому обычное пероральное дозирование достигается путем растворения соединения в питьевой воде или пище.
При дозировании через питьевую воду в воду часто добавляют сахарозу для улучшения вкусовых качеств. Тем не менее, он должен быть тонко сбалансирован, чтобы способствовать нормальному потреблению воды и не чрезмерному употреблению из-за сладкого вкуса. Хорошее правило – начинать с 10% раствора сахарозы, а затем корректировать в зависимости от приема. Еще один способ перорального введения дозы животному – через специализированный корм. Существует коммерчески доступный корм, в состав которого входят обычно дозированные соединения, такие как фенбендазол. Компании, производящие корма для грызунов, также могут создавать специализированные тестовые рационы для удовлетворения экспериментальных требований.
Преимущества этой формы перорального дозирования заключаются в том, что она неинвазивна, вводит соединение непрерывно и имитирует пероральное введение лекарственного препарата человеком. Тем не менее, ему не хватает точности, потому что потребление компаунда зависит от приема пищи или воды, стабильности компаунда и количества животных, присутствующих в клетке. Если точное дозирование не имеет критического значения для эксперимента, этот неинвазивный метод лучше всего подходит для благополучия животных.
Для более точного перорального приема можно использовать пероральный зонд, который откладывает соединение непосредственно в желудок в определенное время и в указанном объеме. Однако для выполнения этой техники требуется надлежащая подготовка, потому что если их не удерживать должным образом, у животного может произойти серьезное повреждение.
Что касается средств местного действия, то к ним относятся кремы, лосьоны, мази, спреи и гели. Как правило, средства местного применения предназначены для воздействия только на ту область, на которую они наносятся. Тем не менее, они также могут всасываться в кровоток, что может быть преднамеренным или непреднамеренным. Эта абсорбция зависит от: состояния кожи, используемой площади поверхности, концентрации вещества, продолжительности контакта и растворимости в липидах вещества.
Теперь, когда мы рассмотрели предысторию пероральных и местных методов введения, давайте узнаем протоколы, начиная с перорального введения с кормом или водой.
Для расчета дозировки сначала необходимо знать предполагаемую дозу, которую необходимо вводить. Во-вторых, вы должны определить массу тела. Если не указано иное, вместо взвешивания отдельных животных вы можете использовать средний вес мыши или штамма крысы для расчетов. В-третьих, вы должны быть в курсе количества животных в клетке, а в-четвертых, вам нужно знать среднесуточное потребление воды или пищи на одну клетку.
Помните, что приготовленный корм или питьевая вода с растворенным соединением могут нуждаться в замене чаще, чем стандартный корм или вода, из-за нестабильности состава. Некоторые соединения могут быть светочувствительными или со временем выпадать в осадок.
Теперь давайте узнаем, как перорально вводить точные дозы, выполняя пероральный зондометр у мышей и крыс.
Первым делом необходимо выбрать подходящую иглу для проведения процедуры. Они бывают либо многоразовыми, изготовленными из нержавеющей стали, либо одноразовыми с гибким пластиковым стержнем и силиконовым наконечником. Для мышей подходят прямые или изогнутые дозирующие иглы 20-25 калибра длиной 1,5 дюйма. Для крыс выбирайте прямые или изогнутые дозирующие иглы 18-20 калибра длиной 2-3 дюйма. Правильный выбор иглы и шприца также зависит от объема и вязкости. Просмотрите видео Compound Administration I, чтобы понять влияние этих факторов. Для дозирования густых жидкостей предпочтительнее использовать шприц с замком Люэра.
После выбора прикрепите шприц к игле таким образом, чтобы градуировки на стволе можно было прочитать без поворота иглы. Это важно, так как после того, как игла была введена в пищевод, любое вращение может разорвать стенку пищевода, что приведет к смерти животного. Затем наполните шприц правильным объемом вводимого раствора.
Этот метод всегда следует выполнять на животных в сознании с неповрежденными глотательными рефлексами, чтобы предотвратить случайное попадание в трахею. Использование правильной техники удержания имеет решающее значение для этой процедуры. Для мыши возьмите кожу у основания головы и крепко держите загривок. Это гарантирует, что голова имеет минимальную возможность для движений из стороны в сторону. Также следите за тем, чтобы тело было подвешено по прямой линии от головы к хвосту; Любое перекручивание будет препятствовать введению иглы в пищевод. Задние конечности также должны быть стабилизированы, чтобы предотвратить вращение тела.
Чтобы удержать крысу, обхватите ее за плечи, используя указательный и средний пальцы с каждой стороны шеи. Это не позволит крысе поворачивать голову из стороны в сторону. Большой, третий и четвертый пальцы обхватывают грудь, чтобы животное не двигалось вперед или назад.
После того, как вы правильно удерживаете животное, расположите иглу изгибом вниз и на одной линии с естественным изгибом шеи. Затем введите иглу в рот с правой или левой стороны, через диастематы и между резцами и коренными зубами под углом к задней части глотки. Теперь, когда игла помещена в ротовую полость, с ее помощью наклоните голову назад, пока нос не будет направлен вверх. В этот момент игла должна легко скользить в пищевод. После того, как игла будет размещена в желудке, аккуратно внесите состав. Затем извлеките иглу из животного, следя за тем, чтобы не вращать ее. Важно НЕ опускать иглу вниз с силой. Если вы чувствуете какое-либо сопротивление, устраните его и повторите попытку. Во время процедуры, если у животного проявляются признаки цианоза или дыхательного дистресса, или если изо рта вытекает раствор, дозирующую иглу следует немедленно удалить и выпустить животное в клетку.
Наконец, давайте рассмотрим процедуры местного применения у лабораторных животных. Начните с обезболивания животного. Обычно это делается с помощью быстродействующего ингалянта, который позволяет животному быстро восстановиться. Для получения более подробной информации о введении анестезии, пожалуйста, посмотрите другое видео из этой коллекции.
Далее с помощью машинки для стрижки волос удалите весь мех с области нанесения. Чтобы избежать порезов, приложите плоскую поверхность машинки для стрижки к коже и брейтесь в направлении, противоположном направлению роста волос. Затем промойте кожу водой и высушите ее марлевым салфеткой. Теперь с помощью аппликатора с ватным наконечником нанесите вещество непосредственно на кожу. Для достижения наилучшего результата наносите мазь или крем несколькими тонкими слоями, в отличие от одноразового нанесения толстым слоем. Чтобы предотвратить случайное проглатывание местного состава в связи с грумингом, наденьте небольшой ошейник или щиток, чтобы животное не дотянулось до пораженной части тела. Кроме того, чтобы предотвратить аллогруминг со стороны соседей по клетке, животных следует размещать отдельно.
Теперь, когда у вас есть представление об этих альтернативных путях введения, давайте посмотрим, как они используются в биомедицинских исследованиях сегодня.
Одним из важных применений перорального зонда является точное введение веществ для изучения их прямого влияния на желудочно-кишечный тракт. Здесь исследователи использовали этот метод для доставки преобразованных пробиотических дрожжей непосредственно в желудок животного. А затем они препарировали пейеровы пятна, которые представляют собой организованные лимфатические узелки из тонкой кишки, чтобы изучить адгезию доставленного микроорганизма.
Неинвазивный оральный путь может быть использован для имитации естественного способа развития инфекции пищевого происхождения. В этом эксперименте ученый разработал модель оральной передачи Listeria monocytogenes у мышей при употреблении зараженной пищи. После заражения исследователи извлекали различные органы, такие как тонкая кишка, толстая кишка, селезенка, печень и желчный пузырь, чтобы проанализировать распространение инфекции на эти ткани.
Наконец, некоторые исследователи заинтересованы в изучении механизма, с помощью которого ультрафиолетовое излучение может привести к солнечным ожогам. Здесь ученые использовали местный способ применения фармакологического вещества, которое индуцирует выработку эпидермального меланина – УФ-защитного агента. После этого они использовали протокол, аналогичный исследованиям на людях, для изучения защитного эффекта местного препарата против эритемы, вызванной ультрафиолетовым излучением.
Вы только что посмотрели вторую статью JoVE о методах введения составных соединений, посвященных пероральному и местному применению. Теперь вы должны понять, как можно перорально дозировать животное с помощью корма или воды, и как можно выполнять более точное пероральное введение зондажа. Наконец, вы должны знать соображения и методы местного применения, а также применение этих различных методов. Как всегда, спасибо за просмотр!
Многие эксперименты требуют, чтобы соединение вводилось животному перорально или местно, чтобы метод лучше имитировал естественное поступление экспериментального вещества.
Для перорального приема соединение можно растворять в питьевой воде или добавлять в пищу, которую потребляют животные. Другим, более точным методом перорального дозирования является пероральный зонд, при котором с помощью большой иглы соединение вводится непосредственно в желудок. С другой стороны, средство для местного применения может быть нанесено непосредственно на поверхность кожи и, как правило, предназначено для воздействия только на область, на которую оно наносится. Каждая из этих стратегий имеет свои преимущества и ограничения, о которых мы поговорим в этом видео. После этого мы продемонстрируем, как выполнять эти методы введения соединений на лабораторных животных, а также некоторые из их применений.
Прежде чем углубиться в протоколы, давайте рассмотрим соображения, преимущества и недостатки этих методов. Пероральное дозирование таблеток, капсул или жидкости является наиболее часто используемым методом введения лекарств у людей. Тем не менее, таблетки и капсулы непрактичны для грызунов, поэтому обычное пероральное дозирование достигается путем растворения соединения в питьевой воде или пище.
При дозировании через питьевую воду в воду часто добавляют сахарозу для улучшения вкусовых качеств. Тем не менее, он должен быть тонко сбалансирован, чтобы способствовать нормальному потреблению воды и не чрезмерному употреблению из-за сладкого вкуса. Хорошее правило – начинать с 10% раствора сахарозы, а затем корректировать в зависимости от приема. Еще один способ перорального введения дозы животному – через специализированный корм. Существует коммерчески доступный корм, в состав которого входят обычно дозированные соединения, такие как фенбендазол. Компании, производящие корма для грызунов, также могут создавать специализированные тестовые рационы для удовлетворения экспериментальных требований.
Преимущества этой формы перорального дозирования заключаются в том, что она неинвазивна, вводит соединение непрерывно и имитирует пероральное введение лекарственного препарата человеком. Тем не менее, ему не хватает точности, потому что потребление компаунда зависит от приема пищи или воды, стабильности компаунда и количества животных, присутствующих в клетке. Если точное дозирование не имеет критического значения для эксперимента, этот неинвазивный метод лучше всего подходит для благополучия животных.
Для более точного перорального приема можно использовать пероральный зонд, который откладывает соединение непосредственно в желудок в определенное время и в указанном объеме. Однако для выполнения этой техники требуется надлежащая подготовка, потому что если их не удерживать должным образом, у животного может произойти серьезное повреждение.
Что касается средств местного действия, то к ним относятся кремы, лосьоны, мази, спреи и гели. Как правило, средства местного применения предназначены для воздействия только на ту область, на которую они наносятся. Тем не менее, они также могут всасываться в кровоток, что может быть преднамеренным или непреднамеренным. Эта абсорбция зависит от: состояния кожи, используемой площади поверхности, концентрации вещества, продолжительности контакта и растворимости в липидах вещества.
Теперь, когда мы рассмотрели предысторию пероральных и местных методов введения, давайте узнаем протоколы, начиная с перорального введения с кормом или водой.
Для расчета дозировки сначала необходимо знать предполагаемую дозу, которую необходимо вводить. Во-вторых, вы должны определить массу тела. Если не указано иное, вместо взвешивания отдельных животных вы можете использовать средний вес мыши или штамма крысы для расчетов. В-третьих, вы должны быть в курсе количества животных в клетке, а в-четвертых, вам нужно знать среднесуточное потребление воды или пищи на одну клетку.
Помните, что приготовленный корм или питьевая вода с растворенным соединением могут нуждаться в замене чаще, чем стандартный корм или вода, из-за нестабильности состава. Некоторые соединения могут быть светочувствительными или со временем выпадать в осадок.
Теперь давайте узнаем, как перорально вводить точные дозы, выполняя пероральный зондометр у мышей и крыс.
Первым делом необходимо выбрать подходящую иглу для проведения процедуры. Они бывают либо многоразовыми, изготовленными из нержавеющей стали, либо одноразовыми с гибким пластиковым стержнем и силиконовым наконечником. Для мышей подходят прямые или изогнутые дозирующие иглы 20-25 калибра длиной 1,5 дюйма. Для крыс выбирайте прямые или изогнутые дозирующие иглы 18-20 калибра длиной 2-3 дюйма. Правильный выбор иглы и шприца также зависит от объема и вязкости. Просмотрите видео Compound Administration I, чтобы понять влияние этих факторов. Для дозирования густых жидкостей предпочтительнее использовать шприц с замком Люэра.
После выбора прикрепите шприц к игле таким образом, чтобы градуировки на стволе можно было прочитать без поворота иглы. Это важно, так как после того, как игла была введена в пищевод, любое вращение может разорвать стенку пищевода, что приведет к смерти животного. Затем наполните шприц правильным объемом вводимого раствора.
Этот метод всегда следует выполнять на животных в сознании с неповрежденными глотательными рефлексами, чтобы предотвратить случайное попадание в трахею. Использование правильной техники удержания имеет решающее значение для этой процедуры. Для мыши возьмите кожу у основания головы и крепко держите загривок. Это гарантирует, что голова имеет минимальную возможность для движений из стороны в сторону. Также следите за тем, чтобы тело было подвешено по прямой линии от головы к хвосту; Любое перекручивание будет препятствовать введению иглы в пищевод. Задние конечности также должны быть стабилизированы, чтобы предотвратить вращение тела.
Чтобы удержать крысу, обхватите ее за плечи, используя указательный и средний пальцы с каждой стороны шеи. Это не позволит крысе поворачивать голову из стороны в сторону. Большой, третий и четвертый пальцы обхватывают грудь, чтобы животное не двигалось вперед или назад.
После того, как вы правильно удерживаете животное, расположите иглу изгибом вниз и на одной линии с естественным изгибом шеи. Затем введите иглу в рот с правой или левой стороны, через диастематы и между резцами и коренными зубами под углом к задней части глотки. Теперь, когда игла помещена в ротовую полость, с ее помощью наклоните голову назад, пока нос не будет направлен вверх. В этот момент игла должна легко скользить в пищевод. После того, как игла будет размещена в желудке, аккуратно внесите состав. Затем извлеките иглу из животного, следя за тем, чтобы не вращать ее. Важно НЕ опускать иглу вниз с силой. Если вы чувствуете какое-либо сопротивление, устраните его и повторите попытку. Во время процедуры, если у животного проявляются признаки цианоза или дыхательного дистресса, или если изо рта вытекает раствор, дозирующую иглу следует немедленно удалить и выпустить животное в клетку.
Наконец, давайте рассмотрим процедуры местного применения у лабораторных животных. Начните с обезболивания животного. Обычно это делается с помощью быстродействующего ингалянта, который позволяет животному быстро восстановиться. Для получения более подробной информации о введении анестезии, пожалуйста, посмотрите другое видео из этой коллекции.
Далее с помощью машинки для стрижки волос удалите весь мех с области нанесения. Чтобы избежать порезов, приложите плоскую поверхность машинки для стрижки к коже и брейтесь в направлении, противоположном направлению роста волос. Затем промойте кожу водой и высушите ее марлевым салфеткой. Теперь с помощью аппликатора с ватным наконечником нанесите вещество непосредственно на кожу. Для достижения наилучшего результата наносите мазь или крем несколькими тонкими слоями, в отличие от одноразового нанесения толстым слоем. Чтобы предотвратить случайное проглатывание местного состава в связи с грумингом, наденьте небольшой ошейник или щиток, чтобы животное не дотянулось до пораженной части тела. Кроме того, чтобы предотвратить аллогруминг со стороны соседей по клетке, животных следует размещать отдельно.
Теперь, когда у вас есть представление об этих альтернативных путях введения, давайте посмотрим, как они используются в биомедицинских исследованиях сегодня.
Одним из важных применений перорального зонда является точное введение веществ для изучения их прямого влияния на желудочно-кишечный тракт. Здесь исследователи использовали этот метод для доставки преобразованных пробиотических дрожжей непосредственно в желудок животного. А затем они препарировали пейеровы пятна, которые представляют собой организованные лимфатические узелки из тонкой кишки, чтобы изучить адгезию доставленного микроорганизма.
Неинвазивный оральный путь может быть использован для имитации естественного способа развития инфекции пищевого происхождения. В этом эксперименте ученый разработал модель пероральной передачи Listeria monocytogenes у мышей через употребление зараженной пищи. После заражения исследователи извлекали различные органы, такие как тонкая кишка, толстая кишка, селезенка, печень и желчный пузырь, чтобы проанализировать распространение инфекции на эти ткани.
Наконец, некоторые исследователи заинтересованы в изучении механизма, с помощью которого ультрафиолетовое излучение может привести к солнечным ожогам. Здесь ученые использовали местный способ применения фармакологического вещества, которое индуцирует выработку эпидермального меланина – УФ-защитного агента. После этого они использовали протокол, аналогичный исследованиям на людях, для изучения защитного эффекта местного препарата против эритемы, вызванной ультрафиолетовым излучением.
Вы только что посмотрели вторую статью JoVE о методах введения составных соединений, посвященных пероральному и местному применению. Теперь вы должны понять, как можно перорально дозировать животное с помощью корма или воды, и как можно выполнять более точное пероральное введение зондажа. Наконец, вы должны знать соображения и методы местного применения, а также применение этих различных методов. Как всегда, спасибо за просмотр!
Related Videos
Lab Animal Research
192.6K Просмотры
Lab Animal Research
30.5K Просмотры
Lab Animal Research
38.4K Просмотры
Lab Animal Research
60.0K Просмотры
Lab Animal Research
28.2K Просмотры
Lab Animal Research
110.6K Просмотры
Lab Animal Research
34.8K Просмотры
Lab Animal Research
57.5K Просмотры
Lab Animal Research
189.0K Просмотры
Lab Animal Research
81.8K Просмотры
Lab Animal Research
55.2K Просмотры
Lab Animal Research
24.2K Просмотры
Lab Animal Research
63.3K Просмотры
Lab Animal Research
36.6K Просмотры