-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Science Education
Advanced Biology
Создание колонны Виноградского: способ обогащения видов микробов в пробе отложений
Создание колонны Виноградского: способ обогащения видов микробов в пробе отложений
JoVE Science Education
Microbiology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Science Education Microbiology
Creating a Winogradsky Column: A Method to Enrich the Microbial Species in a Sediment Sample

6.1: Создание колонны Виноградского: способ обогащения видов микробов в пробе отложений

136,160 Views
08:08 min
April 30, 2023
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

Источник: ЭлизабетСатер 1, Кристофер Корбо1, Джонатан Блейз1
1 Факультет биологических наук, Колледж Вагнера, 1 Campus Road, Статен-Айленд, Нью-Йорк, 10301

Колонна Виноградского - это миниатюрная замкнутая экосистема, используемая для обогащения сообществ микроорганизмов осадочных пород, особенно тех, которые участвуют в круговороте серы. Колонка была впервые использована Сергеем Виноградским в 1880-х годах и с тех пор применяется для изучения многих разнообразных микроорганизмов, участвующих в биогеохимии, таких как фотосинтезаторы, окислители серы, сульфатные восстановители, метаногены, окислители железа, циклеры азота и многое другое (1,2).

Большинство микроорганизмов на Земле считаются некультивируемыми, что означает, что они не могут быть выделены в пробирке или на чашке Петри (3). Это связано со многими факторами, в том числе с тем, что микроорганизмы зависят от других в отношении определенных продуктов метаболизма. Условия в колонке Виноградского точно имитируют естественную среду обитания микроорганизмов, включая их взаимодействие с другими организмами, и позволяют выращивать их в лаборатории. Таким образом, этот метод позволяет ученым изучать эти организмы и понимать, насколько они важны для биогеохимических циклов Земли, не выращивая их в изоляции.

Окружающая среда Земли полна микроорганизмов, которые процветают во всех типах сред обитания, таких как почвы, океанская вода, облака и глубоководные отложения. Во всех местах обитания микроорганизмы зависят друг от друга. По мере роста микроорганизм потребляет определенные субстраты, в том числе богатые углеродом виды топлива, такие как сахара, а также питательные вещества, витамины и дыхательные газы, такие как кислород. Когда эти важные ресурсы заканчиваются, различные микроорганизмы с различными метаболическими потребностями могут цвести и процветать. Например, в колонне Виноградского микробы сначала потребляют добавленный органический материал, истощая кислород в нижних слоях колонны. Как только кислород израсходован, анаэробные организмы могут захватывать и потреблять различные органические материалы. Это последовательное развитие различных микробных сообществ с течением времени называется сукцессией (4). Сукцессия микробов важна в колонне Виноградского, где микробная активность изменяет химический состав осадка, который затем влияет на активность других микробов и так далее. Многие микроорганизмы в почвах и отложениях также живут вдоль градиентов, которые являются переходными зонами между двумя различными типами местообитаний на основе концентраций субстратов (5). В правильном месте градиента микроб может получать оптимальное количество различных субстратов. По мере развития колонны Виноградского она начинает имитировать эти естественные градиенты, особенно по кислороду и сульфидам (рис. 1).

Figure 1
Рисунок 1: Представление градиентов кислорода (O2) и сульфида (H2S), которые развиваются в колонне Виноградского.

В колонке Виноградского грязь и вода из пруда или водно-болотных угодий смешиваются в прозрачной колонке и инкубируются, как правило, на свету. В колонну добавляются дополнительные субстраты, чтобы дать сообществу источники углерода, обычно в виде целлюлозы и серы. Фотосинтезаторы обычно начинают расти в верхних слоях осадка. Эти фотосинтезирующие микроорганизмы в основном состоят из цианобактерий, которые выделяют кислород и имеют вид зеленого или красно-коричневого слоя (рис. 2, табл. 1). В то время как фотосинтез производит кислород, кислород не очень растворяется в воде и уменьшается ниже этого слоя (рис. 1). Это создает градиент кислорода, варьирующийся от высокой концентрации кислорода в верхних слоях до нулевой концентрации кислорода в нижних слоях. Насыщенный кислородом слой называется аэробным слоем, а слой без кислорода называется анаэробным слоем.

В анаэробном слое может размножаться множество различных микробных сообществ в зависимости от типа и количества доступных субстратов, источника исходных микробов и пористости осадка. В нижней части колонны могут процветать организмы, которые анаэробно расщепляют органические вещества. В результате микробной ферментации образуются органические кислоты в результате распада целлюлозы. Эти органические кислоты затем могут быть использованы восстановителями сульфатов, которые окисляют эти органические вещества с помощью сульфата и производят сульфид в качестве побочного продукта. Активность сульфатных восстановителей проявляется, если осадок становится черным, потому что железо и сульфид вступают в реакцию с образованием черных железо-сульфидных минералов (рис. 2, табл. 1). Сульфид также диффундирует вверх, создавая другой градиент, при котором концентрации сульфидов высоки в нижней части колонны и низки в верхней части колонны (рис. 1).

Ближе к середине колонки окислители серы используют подачу кислорода сверху и сульфида снизу. При правильном количестве света в этих слоях могут развиваться фотосинтетические окислители серы. Эти организмы известны как зеленые и фиолетовые серные бактерии и часто проявляются в виде зеленых, фиолетовых или пурпурно-красных нитей и пятен (рис. 2, таблица 1). Зеленые серные бактерии имеют более высокую толерантность к сульфидам и обычно развиваются в слое непосредственно под фиолетовыми серными бактериями. Над фиолетовыми серными бактериями также могут развиваться фиолетовые несерные бактерии. Эти организмы фотосинтезируют с использованием органических кислот в качестве доноров электронов вместо сульфидов и часто проявляются в виде красного, фиолетового, оранжевого или коричневого слоя. Нефотосинтезирующие окислители серы могут развиваться над фиолетовыми несерными бактериями, и они обычно проявляются в виде белых нитей (рис. 2, таблица 1). Кроме того, пузыри могут образовываться и в колонне Виноградского. Пузырьки в аэробных слоях указывают на выработку кислорода цианобактериями. Пузырьки в анаэробных слоях, вероятно, связаны с активностью метаногенов, организмов, которые анаэробно расщепляют органические вещества и образуют метан в качестве побочного продукта.

Позиция в столбце Функциональная группа Примеры организмов Визуальный индикатор
Вверх Фотосинтезаторы Цианобактерии Зеленый или красновато-коричневый слой. Иногда пузырьки кислорода.
Нефотосинтезирующие окислители серы Beggiatoa, Thiobacilus Белый слой.
Фиолетовые несерные бактерии Rhodomicrobium, Rhodospirilum, Rhodopseuodmonas Красный, фиолетовый, оранжевый или коричневый слой.
Фиолетовые серные бактерии Хроматий Фиолетовый, или пурпурно-красный слой.
Зеленые серные бактерии Хлоробий Зеленый слой.
Сульфатредуцирующие бактерии Десульфовибрио, Десульфотоматакулум, Десульфобактер, Десульфомонас Черный слой.
дно Метаногены Methanococcus, Methanosarcina Иногда пузыри метана.

Таблица 1: Основные группы бактерий, которые могут появиться в классической колонке Виноградского, сверху вниз. Приведены примеры организмов из каждой группы, а также перечислены визуальные индикаторы каждого слоя организмов. Основано на Perry et al. (2002) и Rogan et al. (2005).

Procedure

1. Настройка

  1. Чтобы создать колонну Виноградского, вам понадобятся некоторые основные припасы:
    • Лопата, ведро и бутылка для сбора проб в поле
    • Вертикальный прозрачный сосуд, такой как градуированный цилиндр или пластиковая бутылка для воды объемом около 1 л
    • Полиэтиленовая пленка и резинки
    • Большие миски для смешивания и большая ложка для перемешивания
    • Источник серы (яичный желток или сульфат кальция)
    • Источник органического углерода (целлюлоза, в виде измельченной газеты)
    • Источник света (солнечное окно или настольная лампа)
    • Почва или грязь, собранные в болоте, водно-болотных угодьях, прудах или ручьях
    • Вода из одной и той же среды обитания
    • Для некоторых необязательных экспериментов, описанных в этом протоколе, потребуется следующее:
      • Соль поваренная
      • Разноцветный целлофан
      • Источник железа (например, гвоздь или стальная вата)
      • Холодильник с источником света
      • Радиатор рядом с источником света
  2. Если вы используете пластиковую бутылку из-под воды, отрежьте область горлышка так, чтобы колонна имела цилиндрическую форму. Снимите все обертки, чтобы свет мог проникать через пластик.
  3. Сырые яйца могут содержать сальмонеллу, и с ними следует обращаться осторожно. Следует соблюдать правильную технику мытья рук. В качестве альтернативы можно использовать вареное яйцо. Кроме того, нет никакого способа узнать наверняка, загрязнена ли грязь или осадок сточными водами или другими вредными веществами. Перчатки следует использовать при замешивании грязи и установке колонны.

2. Сборка колонны Виноградского

  1. С помощью лопаты выкопайте и соберите грязь в ведро. Осадочные породы должны находиться у кромки воды и полностью пропитаться водой. Вам понадобится достаточно грязи, чтобы заполнить каждую колонну Виноградского. Наберите немного воды из того же источника в бутылку для образца (требуется примерно 3000 мл на колонку).
  2. В лаборатории налейте достаточно грязи в первую чашу для смешивания, чтобы заполнить ~75% объема колонны объемом 1 литр. Затем просейте их, чтобы удалить крупные камни, ветки или листья, а ложкой разбивайте комки.
  3. Добавьте немного воды, которую вы собрали, в миску для смешивания во время помешивания. Добавляйте до тех пор, пока консистенция водно-грязевой смеси не станет похожей на молочный коктейль. Продолжайте следить за тем, чтобы на улице не было комочков.
  4. Переложите примерно 1/3 водно-грязевого молочного коктейля во вторую миску. Добавьте яичный желток и горсть измельченной газеты и перемешайте.
  5. Добавьте смесь грязи, яичного желтка и газеты в колонку, пока колонка не заполнится примерно на 1/4.
  6. Добавляйте в колонку обычную водно-грязевую смесь до тех пор, пока колонка не заполнится примерно на 3/4.
  7. Добавьте в колонну дополнительную воду, оставив только небольшое пространство (~ 1/2 дюйма) воздуха сверху.
  8. Накройте колонку полиэтиленовой пленкой и закрепите резинкой.
  9. Инкубируйте колонку на свету при комнатной температуре.
  10. В течение следующих 4-8 недель отслеживайте изменения в столбце Виноградского на предмет развития разноцветных слоев и образования пузырьков, как описано в таблице 1. Кроме того, вы должны записывать время, необходимое для развития различных слоев.

3. Необязательные модификации классической колонны Виноградского

  1. Добавьте в собранную грязь 25-50г соли из расчета на 1л колонки Виноградского перед добавлением воды и перемешиванием (шаг 2.3). Добавление соли отбирает галофильные (солелюбивые) бактерии.
  2. Альтернативные субстраты, такие как железо, в виде гвоздя или стальной ваты, могут быть добавлены в колонку вместе с яичным желтком и измельченной газетой (шаг 2.4). Это обогатит железоокисляющие бактерии, такие как галлионелла, и будет выглядеть как слой цвета ржавчины.
  3. Вместо комнатной температуры (шаг 2.9) колонку можно инкубировать возле радиатора для отбора на теплофильные (теплолюбивые) бактерии или в холодильнике с источником света для отбора на психрофильные (холодолюбивые) бактерии.
  4. Количество света, получаемого колонной во время инкубации (шаг 2.9), также можно варьировать, размещая разные колонны при ярком освещении, слабом освещении или в темноте.
  5. Длину волны входящего света можно ограничить, накрыв колонну целлофанами с разным затенением во время инкубации (шаг 2.9), чтобы определить, какие цвета выбирают для различных бактериальных групп.

4. Анализ данных

  1. Через 1-3 недели должна быть видна некоторая зеленая окраска на вершине грязевого слоя классической колонны Виноградского (рис. 2А). Это первые признаки роста слоя цианобактерий.
  2. Со временем продолжайте следить за появлением и эволюцией различных слоев, каждый из которых указывает на различные типы бактерий. подсказка: Обратитесь к Понятиям и Таблице 1, чтобы понять, какие бактерии вносят свой вклад в различные слои.

Figure 2A
Рисунок 2А: Фото классической колонны Виноградского, которая инкубировалась при комнатной температуре в течение 21 дня. Обратите внимание на зеленый осадок, указывающий на цианобактерии, в верхней части колонки.

  1. Если также были подготовлены модификации классической колонны Виноградского, сравните результаты каждой колонны.
    1. Понаблюдайте за слоями в каждой из измененных колонн Виноградского. Обратите внимание на следующее:
      • Имеют ли колонны одинаковое количество слоев?
      • Слои одинакового цвета и толщины?
      • Залегают ли слои на одной и той же глубине?
      • Сколько времени ушло на разработку каждой колонки?
      • Развивалась ли одна колонна медленнее остальных?

Большинство микроорганизмов Земли не могут быть культивированы в лаборатории, часто потому, что они зависят от других микробов в своих родных сообществах. Колонна Виноградского, названная в честь ее изобретателя Сергея Виноградского, представляет собой миниатюрную замкнутую экосистему, которая обогащает микробные сообщества в образце отложений, позволяя ученым изучать многие микробы, играющие жизненно важную роль в биогеохимических процессах Земли, без необходимости выделять и культивировать их по отдельности.

Как правило, грязь и вода из экосистемы, такой как пруд или болото, смешиваются. В качестве факультативного эксперимента в эту смесь может быть добавлена соль для обогащения различных видов галофилов. Далее небольшая порция смеси дополняется углеродом, обычно в виде целлюлозы из газеты, и серой, обычно из яичного желтка. В качестве еще одного необязательного эксперимента в эту смесь можно добавить ноготь, чтобы обогатить некоторые виды Gallionella. Затем эту новую смесь добавляют в прозрачную колонну так, чтобы колонна была заполнена на одну четверть. Наконец, остальная грязевая смесь и еще больше воды добавляются в колонну, пока она не заполнится до полного заполнения.

Сукцессию, которая относится к последовательному развитию различных микробных сообществ с течением времени, можно наблюдать в режиме реального времени с помощью колонки Виноградского. По мере того, как микробы растут внутри колонны, они потребляют определенные субстраты и изменяют химический состав окружающей среды. Когда их субстраты истощаются, исходные микробы отмирают, и микробы с различными метаболическими потребностями могут процветать в измененной среде. Со временем начинают формироваться заметно различимые слои, каждый из которых содержит части бактериального сообщества с различными потребностями в микросреде.

Например, фотосинтезирующие микробы, в основном состоящие из цианобактерий, образуют зеленые или красно-коричневые слои в верхней части колонны. Поскольку фотосинтез производит кислород, часто наблюдаемый в виде пузырьков в верхней части столба, образуется градиент с самой высокой концентрацией кислорода в верхней части и самой низкой в нижней части. В зависимости от доступных субстратов в анаэробном придонном слое могут расти различные микробные сообщества. Пузырьки в этом слое могут указывать на наличие метаногенов, которые создают газ метан в результате брожения. Здесь микробная ферментация целлюлозы приводит к образованию органических кислот. Сульфатные восстановители окисляют эти кислоты с образованием сульфидов, а их активность проявляется в черном осадке. Сульфид диффундирует вверх по колонне, создавая еще один градиент, где концентрации сульфидов наиболее высоки ближе к нижней части колонны и самые низкие ближе к верху. Ближе к середине колонны окислители серы утилизируют кислород сверху и сульфид снизу. При достаточном освещении развиваются фотосинтезирующие окислители серы, такие как зеленые и фиолетовые серные бактерии. Зеленые серные бактерии хорошо переносят более высокие концентрации сульфидов. Таким образом, они растут непосредственно под фиолетовыми серными бактериями. Непосредственно над этим слоем фиолетовые несерные бактерии образуют красно-оранжевый слой. О нефотосинтезирующих окислителях серы свидетельствует наличие белых нитей.

Такие условия, как освещение и температура, также могут варьироваться для обогащения других сообществ. В этом видео вы узнаете, как построить колонну Виноградского, а также варьировать условия выращивания и субстраты для обогащения конкретных микробных сообществ.

Во-первых, найдите подходящую водную экосистему, например, пруд или болото. Образцы отложений должны поступать из области у кромки воды и быть полностью насыщены водой. Затем с помощью лопаты и ведра соберите один-два литра пропитанной грязи. Затем возьмите примерно три литра пресной воды из того же источника и вернитесь в лабораторию с полевыми образцами.

В лаборатории наденьте соответствующие средства индивидуальной защиты, включая лабораторный халат и перчатки. Теперь перелейте примерно 750 миллилитров грязи в миску для смешивания. Затем просейте грязь, чтобы удалить большие камни, ветки или листья, и с помощью ложки разбейте любые комки. Далее добавьте немного свежей воды в миску для смешивания и перемешайте большой ложкой. Добавляйте воду до тех пор, пока консистенция водно-грязевой смеси не станет похожей на молочный коктейль. Продолжайте следить за тем, чтобы на улице не было комочков.

В качестве дополнительного эксперимента выберите галофильные бактерии, добавив от 25 до 50 миллиграммов соли в грязевую смесь.

Затем переложите примерно 1/3 водно-грязевой смеси во вторую миску для смешивания. Добавьте в миску один яичный желток и горсть измельченной газеты. Далее добавляем эту смесь в столбик, пока она не заполнится примерно на 1/4. Далее добавьте водно-грязевую смесь без яйца и газеты в колонку, пока она не заполнится примерно на 3/4. Затем добавьте еще воды в колонну, оставив сверху пространство 1/2 дюйма. Накройте колонку полиэтиленовой пленкой и закрепите ее резинкой.

Инкубируйте столбик на свету возле окна при комнатной температуре в течение следующих четырех-восьми недель. На протяжении всего инкубационного периода не реже одного раза в неделю следите за изменениями в столбике Виноградского на предмет развития разноцветных слоев и образования пузырьков. Кроме того, запишите время, необходимое для проявления различных слоев.

Еще одна модификация, которую можно сделать, — это инкубация колонны возле радиатора для отбора термофильных бактерий или в холодильнике для отбора психрофильных бактерий. Изменяйте условия освещения, размещая разные колонны при ярком освещении, слабом освещении или в темноте для инкубации. В качестве альтернативы можно ограничить длину волны входящего света, покрыв колонку целлофаном разных оттенков, чтобы определить, какие цвета выбирают для разных бактериальных групп. Для еще одного необязательного эксперимента, чтобы обогатить железоокисляющие бактерии, добавьте гвоздь в смесь грязи и воды перед добавлением газеты и яичного желтка.

Через одну-две недели о росте слоя цианобактерий свидетельствует зеленая или красно-коричневая пленка поверх грязевого слоя классической колонны Виноградского. С течением времени наблюдается внешний вид и эволюция различных слоев, каждый из которых указывает на различные типы присутствующих бактерий. Сравнивая колонну, выращенную в темноте, с традиционной колонной Виноградского, мы видим, что темная обработка дает черный слой в нижней части колонны, что указывает на сульфатредуцирующие бактерии.

Темная колонна также может давать другие несушки, в зависимости от других условий инкубации. Кроме того, темный столбец не дает ни зеленого слоя цианобактерий, ни красного, фиолетового или зеленого слоев, указывающих на фиолетовые несерные, фиолетовые серные и зеленые серные бактерии соответственно. Рост этих групп зависит от света.

Transcript

Большинство микроорганизмов Земли не могут быть культивированы в лаборатории, часто потому, что они зависят от других микробов в своих родных сообществах. Колонна Виноградского, названная в честь ее изобретателя Сергея Виноградского, представляет собой миниатюрную замкнутую экосистему, которая обогащает микробные сообщества в образце отложений, позволяя ученым изучать многие микробы, играющие жизненно важную роль в биогеохимических процессах Земли, без необходимости выделять и культивировать их по отдельности.

Как правило, грязь и вода из экосистемы, такой как пруд или болото, смешиваются. В качестве факультативного эксперимента в эту смесь может быть добавлена соль для обогащения различных видов галофилов. Далее небольшая порция смеси дополняется углеродом, обычно в виде целлюлозы из газеты, и серой, обычно из яичного желтка. В качестве еще одного необязательного эксперимента в эту смесь можно добавить ноготь, чтобы обогатить некоторые виды Gallionella. Затем эту новую смесь добавляют в прозрачную колонну так, чтобы колонна была заполнена на одну четверть. Наконец, остальная грязевая смесь и еще больше воды добавляются в колонну, пока она не заполнится до полного заполнения.

Сукцессию, которая относится к последовательному развитию различных микробных сообществ с течением времени, можно наблюдать в режиме реального времени с помощью колонки Виноградского. По мере того, как микробы растут внутри колонны, они потребляют определенные субстраты и изменяют химический состав окружающей среды. Когда их субстраты истощаются, исходные микробы отмирают, и микробы с различными метаболическими потребностями могут процветать в измененной среде. Со временем начинают формироваться заметно различимые слои, каждый из которых содержит части бактериального сообщества с различными потребностями в микросреде.

Например, фотосинтезирующие микробы, в основном состоящие из цианобактерий, образуют зеленые или красно-коричневые слои в верхней части колонны. Поскольку фотосинтез производит кислород, часто наблюдаемый в виде пузырьков в верхней части столба, образуется градиент с самой высокой концентрацией кислорода в верхней части и самой низкой в нижней части. В зависимости от доступных субстратов в анаэробном придонном слое могут расти различные микробные сообщества. Пузырьки в этом слое могут указывать на наличие метаногенов, которые создают газ метан в результате брожения. Здесь микробная ферментация целлюлозы приводит к образованию органических кислот. Сульфатные восстановители окисляют эти кислоты с образованием сульфидов, а их активность проявляется в черном осадке. Сульфид диффундирует вверх по колонне, создавая еще один градиент, где концентрации сульфидов наиболее высоки ближе к нижней части колонны и самые низкие ближе к верху. Ближе к середине колонны окислители серы утилизируют кислород сверху и сульфид снизу. При достаточном освещении развиваются фотосинтезирующие окислители серы, такие как зеленые и фиолетовые серные бактерии. Зеленые серные бактерии хорошо переносят более высокие концентрации сульфидов. Таким образом, они растут непосредственно под фиолетовыми серными бактериями. Непосредственно над этим слоем фиолетовые несерные бактерии образуют красно-оранжевый слой. О нефотосинтезирующих окислителях серы свидетельствует наличие белых нитей.

Такие условия, как освещение и температура, также могут варьироваться для обогащения других сообществ. В этом видео вы узнаете, как построить колонну Виноградского, а также варьировать условия выращивания и субстраты для обогащения конкретных микробных сообществ.

Во-первых, найдите подходящую водную экосистему, например, пруд или болото. Образцы отложений должны поступать из области у кромки воды и быть полностью насыщены водой. Затем с помощью лопаты и ведра соберите один-два литра пропитанной грязи. Затем возьмите примерно три литра пресной воды из того же источника и вернитесь в лабораторию с полевыми образцами.

В лаборатории наденьте соответствующие средства индивидуальной защиты, включая лабораторный халат и перчатки. Теперь перелейте примерно 750 миллилитров грязи в миску для смешивания. Затем просейте грязь, чтобы удалить большие камни, ветки или листья, и с помощью ложки разбейте любые комки. Далее добавьте немного свежей воды в миску для смешивания и перемешайте большой ложкой. Добавляйте воду до тех пор, пока консистенция водно-грязевой смеси не станет похожей на молочный коктейль. Продолжайте следить за тем, чтобы на улице не было комочков.

В качестве дополнительного эксперимента выберите галофильные бактерии, добавив от 25 до 50 миллиграммов соли в грязевую смесь.

Затем переложите примерно 1/3 водно-грязевой смеси во вторую миску для смешивания. Добавьте в миску один яичный желток и горсть измельченной газеты. Далее добавляем эту смесь в столбик, пока она не заполнится примерно на 1/4. Далее добавьте водно-грязевую смесь без яйца и газеты в колонку, пока она не заполнится примерно на 3/4. Затем добавьте еще воды в колонну, оставив сверху пространство 1/2 дюйма. Накройте колонку полиэтиленовой пленкой и закрепите ее резинкой.

Инкубируйте столбик на свету возле окна при комнатной температуре в течение следующих четырех-восьми недель. На протяжении всего инкубационного периода не реже одного раза в неделю следите за изменениями в столбике Виноградского на предмет развития разноцветных слоев и образования пузырьков. Кроме того, запишите время, необходимое для проявления различных слоев.

Еще одна модификация, которую можно сделать, — это инкубация колонны возле радиатора для отбора термофильных бактерий или в холодильнике для отбора психрофильных бактерий. Изменяйте условия освещения, размещая разные колонны при ярком освещении, слабом освещении или в темноте для инкубации. В качестве альтернативы можно ограничить длину волны входящего света, покрыв колонку целлофаном разных оттенков, чтобы определить, какие цвета выбирают для разных бактериальных групп. Для еще одного необязательного эксперимента, чтобы обогатить железоокисляющие бактерии, добавьте гвоздь в смесь грязи и воды перед добавлением газеты и яичного желтка.

Через одну-две недели о росте слоя цианобактерий свидетельствует зеленая или красно-коричневая пленка поверх грязевого слоя классической колонны Виноградского. С течением времени наблюдается внешний вид и эволюция различных слоев, каждый из которых указывает на различные типы присутствующих бактерий. Сравнивая колонну, выращенную в темноте, с традиционной колонной Виноградского, мы видим, что темная обработка дает черный слой в нижней части колонны, что указывает на сульфатредуцирующие бактерии.

Темная колонна также может давать другие несушки, в зависимости от других условий инкубации. Кроме того, темный столбец не дает ни зеленого слоя цианобактерий, ни красного, фиолетового или зеленого слоев, указывающих на фиолетовые несерные, фиолетовые серные и зеленые серные бактерии соответственно. Рост этих групп зависит от света.

Explore More Videos

Виноградская колонна виды микробов проба отложений микробные сообщества экосистема биогеохимические процессы культура микроорганизмов метод обогащения виды галофилов добавка углерода добавка серы виды Gallionella прозрачная колонка сукцессия микробных сообществ

Related Videos

Серийные разведения и осаждение: микробиологическое перечисление

Серийные разведения и осаждение: микробиологическое перечисление

Microbiology

334.0K Просмотры

Обогащение культур: культивирование аэробных и анаэробных микробов на селективных и дифференциальных средах

Обогащение культур: культивирование аэробных и анаэробных микробов на селективных и дифференциальных средах

Microbiology

139.2K Просмотры

Чистые культуры и покрытие полос: выделение одиночных колоний бактерий из смешанной пробы

Чистые культуры и покрытие полос: выделение одиночных колоний бактерий из смешанной пробы

Microbiology

176.7K Просмотры

Секвенирование 16S рРНК: метод идентификации видов бактерий на основе ПЦР

Секвенирование 16S рРНК: метод идентификации видов бактерий на основе ПЦР

Microbiology

205.1K Просмотры

Кривые роста: построение кривых роста с использованием колониеобразующих единиц и измерений оптической плотности

Кривые роста: построение кривых роста с использованием колониеобразующих единиц и измерений оптической плотности

Microbiology

325.3K Просмотры

Тестирование чувствительности к антибиотикам: эпсилометрические тесты для определения значений МПК двух антибиотиков и оценки синергии антибиотиков

Тестирование чувствительности к антибиотикам: эпсилометрические тесты для определения значений МПК двух антибиотиков и оценки синергии антибиотиков

Microbiology

98.0K Просмотры

Микроскопия и окрашивание: окрашивание по Граму, капсулам и эндоспорам

Микроскопия и окрашивание: окрашивание по Граму, капсулам и эндоспорам

Microbiology

384.1K Просмотры

Анализ бляшек: метод определения титра вируса в виде единиц образования бляшек (БОЕ)

Анализ бляшек: метод определения титра вируса в виде единиц образования бляшек (БОЕ)

Microbiology

196.5K Просмотры

Трансформация клеток <em>E. coli</em> с использованием адаптированной процедуры с хлоридом кальция

Трансформация клеток <em>E. coli</em> с использованием адаптированной процедуры с хлоридом кальция

Microbiology

91.2K Просмотры

Конъюгация: метод передачи резистентности к ампициллину от донора к реципиенту <em>E. coli</em>

Конъюгация: метод передачи резистентности к ампициллину от донора к реципиенту <em>E. coli</em>

Microbiology

42.0K Просмотры

Фаговая трансдукция: метод передачи резистентности к ампициллину от донора к реципиенту <em>E. coli</em>

Фаговая трансдукция: метод передачи резистентности к ампициллину от донора к реципиенту <em>E. coli</em>

Microbiology

32.4K Просмотры

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code