30 января 2007 г.
Это видео демонстрирует два способа приготовления и укладки бусы, которые были покрыты фактора роста, на эксплантатов развивающихся коры головного мозга. Эти шарики могут быть использованы, чтобы вызвать пространственно ограниченных экспрессии генов на развитие нервной ткани, такие как передний мозг эксплантов. Методы даны для использования как Affi-Gel бисером и гепарин acryllic бисером.
Это первый тип гранул, которые я буду использовать. Это синие гелевые гранулы. Они мягкие.
Таким образом, мне потребуется использовать стеклянную пипетку с закругленным концом, прикрепленную к ротовой пипетке, чтобы поместить эти бусины на Xs. Второй тип бусин, который я продемонстрирую, — это гепарин-акриловые бусины. Это жесткие бусины, и я буду помещать их на экспланты X с помощью вольфрамовой иглы. Перед этим я расплавлю с помощью горелки Бунзена данные стеклянные капиллярные трубки.
Затем я вытяну их, чтобы создать более тонкий кончик. Для этого я держу капиллярную трубку в центре пламени и вращаю её по мере плавления. Я чувствую, как трубка размягчается.
Я вынимаю трубку из пламени и вытягиваю её. Теперь я процарапаю линию поперек капиллярной трубки этим пером с алмазным наконечником, чтобы получить ровный срез. Затем я проведу оплавление концов для их очистки.
Я проведу капилляр через пламя, чтобы зашлифовать конец и сузить отверстие, чтобы он мог захватить бусину, а не пропустить её сквозь себя. Важно отметить, что капиллярную трубку не следует долго удерживать в пламени. Это должно быть очень быстрое движение, иначе отверстие затянется.
Обычно я изготавливаю несколько таких изделий, так как во многих из них кончик оказывается запаянным из-за воздействия пламени. Этим процессом трудно управлять, поэтому приходится делать несколько заготовок. Перед вами пример образца с запаянным кончиком.
Это пример использования качественного дозатора. Я перенесла 250 µL агарозных бусин в эту пробирку типа «эппендорф» и теперь собираюсь промыть их пять раз с использованием 1 mL PBS, чтобы удалить раствор AZI, в котором они находились. Я подожду около трех минут, чтобы бусины осели, затем аспирирую излишки PBS и повторю эту процедуру еще четыре раза.
Гранулы еще не успели полностью осесть; когда они осядут, я аспирирую избыток PBS и повторю эту процедуру четыре раза. В конце я добавлю 300 µL PBS и приступлю к работе с гранулами. Это стандартная ротовая пипетка, я возьму подготовленный капилляр и введу его примерно на одну треть ее длины.
Сначала заполните пипетки раствором PBS. Обычно заполнение происходит за счет капиллярного эффекта. Перед нами крышка от 30-миллиметровой культуральной чашки, на которую я поместил каплю синих бусин.
Рядом с ней находится маленькая капля PBS. А в этой лунке находится капля белкового раствора объемом 5 µL. В данном случае это B and P four, но с помощью дозатора можно использовать любой выбранный вами белок.
Я перенесу бусину из этого синего круга, однократно промою ее в капле PBS. Затем с помощью ротового дозатора я возьму бусину, помещу ее в каплю белкового раствора и проинкубирую либо при комнатной температуре в течение примерно одного часа, либо при 4 °C в течение нескольких часов. Таким образом, перед вами пул бусин в PBS, и мне необходимо отобрать бусины подходящего размера.
Если они будут слишком малы, они просто пройдут сквозь ротовую пипетку. Они должны просто остаться на конце. Таким образом, теперь вы видите, что я выбрал несколько бусин: три более крупных и три более мелких.
В эксперименте я буду использовать более крупные бусины. Сейчас я перенесу одну крупную бусину из капли PBS в каплю раствора белка. Для этого я осторожно оттяну язык от ротовой пипетки.
Это не всасывающее движение, а просто создание отрицательного давления. Затем я перенесу его и фактически снова прижму язык к отверстию. Головка трубки — не выдувание, а просто создание положительного давления, чтобы вытолкнуть бусину с конца.
Теперь в капле раствора белка находятся пять бусин; я буду инкубировать их при температуре 4 °C в течение нескольких часов или, как вариант, при комнатной температуре от получаса до одного часа. Перед нами чашка Петри с мембраной, плавающей в среде вместе с уже препарированными эксплантами. С помощью наконечника пипетки я сейчас заберу часть среды.
Я промою гранулы в капле среды всего один раз непосредственно перед тем, как поместить гранулу на плоскость X. Это вольфрамовые иглы, которые я буду использовать для захвата и размещения акриловых гранул. Вот вольфрамовая игла, сейчас она находится в своем держателе.
И вот отличные пинцеты под углом 45 градусов. Я буду использовать вольфрамовую иглу в пинцете, чтобы поднять бусину из этого объема PBS и перенести ее в каплю белкового раствора.
Как я сделал с гелевыми бусинами. Подобно гелевым бусинам, я пять раз промыл эти акриловые бусины в PBS и перенес каплю на этот планшет. Затем я использую вольфрамовую иглу в пинцете, чтобы перенести бусину в каплю белка и инкубировать её точно так же, как я делал с гелевыми бусинами.
Таким образом, осуществляется подъем микросферы. Я плотно прижимаю правую руку к столу, а левым указательным пальцем фиксирую иглу при погружении в жидкость; я слегка касаюсь микросферы иглой и медленно поднимаю ее из жидкости. Иногда микросфера соскальзывает с иглы, в таком случае следует просто повторить процедуру для другой микросферы.
Теперь в левой руке я держу пинцет под углом 45 градусов. Опустив кончики вниз, я касаюсь ими бусины и иглы в жидкости. Используйте кончик пинцета, чтобы аккуратно сдвинуть ее.
Теперь у меня пять бусин с белком. Итак, в правой руке я держу вольфрамовую иглу в бусине, а в левой — снова пинцет концом вниз, точно так же, как я сбрасывал четыре предыдущие; я повторю это здесь на примере. Инкубируйте при 37 °C, время зависит от конкретного анализа.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данном видео продемонстрированы два метода подготовки и размещения микросфер с покрытием из фактора роста на эксплантах развивающейся коры головного мозга. Такие микросферы могут индуцировать пространственно ограниченную экспрессию генов в развивающейся нервной ткани, например, в эксплантах переднего мозга.
Пространственно контролируемая доставка факторов роста в нейральные эксплантаты позволяет проводить точный анализ путей сигнального развития, что способствует валидации мишеней на ранних этапах нейробиологических исследований. Количественное размещение покрытых микросфер облегчает проведение гипотетических исследований локальной экспрессии генов, снижая механистическую неопределенность при анализе сигнальных путей. Данный подход повышает достоверность прогнозов для последующего скрининга и трансляционных исследований моделей нарушений нейропсихического развития.
Данный метод размещения микросфер интегрируется в начальный этап процесса открытий, связывая проверку гипотез, валидацию мишеней и разработку анализов для нейробиологических исследований.