4 июня 2009 г.
В этом видео мы представляем микрожидкостных зонд 1 (МФУ). Мы подробно объяснить, как собрать МФУ, смонтировать его на вершине инвертированного микроскопа, и выровнять его относительно поверхности подложки, и, наконец, показать, как использовать его для обработки поверхности подложки погружен в буферный раствор.
В данной процедуре показано, как собрать и использовать микрофлюидный зонд (MFP). Микрофлюидные компоненты MFP включают газонепроницаемые шприцы, стеклянные капиллярные трубки, герметичные соединители Upchurch и головку MFP. В этом видео будут представлены основные этапы сборки и юстировки.
После сборки MFP можно использовать с широким спектром подложек и реагентов для структурирования и обработки поверхности. Здравствуйте, меня зовут Сесиль Перо. Я постдок в лаборатории Дэвида Йейкера на кафедре биомедицинской инженерии Университета Макгилла в Монреале, Канада.
Здравствуйте, я Мохаммад Касим. Я аспирант в лаборатории Дэвида Й. на кафедре биомедицинской инженерии Университета Макгилла. Здравствуйте, я Дэвид Йокер.
Я старший преподаватель кафедры биомедицинской инженерии, и я рад приветствовать вас сегодня на нашей демонстрации микрофлюидного зонда. Сегодня мы покажем вам процедуру эксплуатации и использования микрофлюидного зонда. Мы применяем эту процедуру в нашей лаборатории для обработки и структурирования поверхности.
Итак, приступим к выполнению данного протокола. Пластиковые шприцы и иглы используются для заполнения газовых стеклянных шприцев реагентами, чтобы исключить появление пузырьков воздуха. Как правило, для инъекции мы используем шприц объемом от 1 до 10 µL, а для аспирации — шприц с объемом в 5–10 раз больше.
Затем с помощью наносоединений с малым dead volume шприцы соединяют с капиллярными трубками. После этого капилляры заполняют и проверяют на наличие пузырьков воздуха под микроскопом. Чип MFP предварительно заполняют буферным раствором, чтобы предотвратить попадание пузырьков при подключении капилляров.
Наконец, капилляры вставляются в соединительный элемент из PDMS в микроизготовленной головке зонда. После сборки MFP можно приступать к ее настройке. Подложка помещается в самодельный держатель.
Оно закреплено на предметном столике микроскопа. Зазор между MFP и подложкой имеет критическое значение для процессов формирования структур на поверхности. С помощью трехточечной опоры, образованной микрометрическими винтами, горизонтальное выравнивание регулируется с микронной точностью.
Это необходимо, так как подложка обрабатывается путем сканирования под MFP. Для начала настройки MFP зондовая головка зажимается в держателе зонда и устанавливается на зондовой станции поверх инвертированного микроскопа. Затем шприцы помещаются в высокоточные шприцевые насосы.
Затем с помощью пары гониометров выполняется юстировка стола MFP относительно подложки по кольцам Ньютона, также известным как интерференционные полосы. Они появляются при прикосновении MFP к подложке; точка контакта и частота колец служат индикаторами наклона. Когда MFP выровнен по поверхности, одно интерференционное кольцо распространяется по всей ее площади.
Эта мера также служит для калибровки зазора между MFP и подложкой. После настройки MFP можно переходить к его эксплуатации. В процессе работы MFP дозирование контролируется с помощью программного обеспечения LabVIEW.
Работа устройства контролируется визуально и с помощью CCD-камеры. Перед началом непосредственной аспирации введите небольшое количество жидкости, чтобы убедиться в правильной ориентации шприца для аспирации и отсутствии пузырьков воздуха. Затем MFP погружают в буфер.
Теперь можно начать впрыскивание жидкости, контролируя ограничение потока бусин. Соотношение впрыскивания и аспирации варьируется от 1:3 до 1:10 в зависимости от диффузионной способности реагента в окружающем буфере и требуемого геометрического профиля потока. В завершение сформированный зонд можно использовать для различных приложений.
Показанные здесь поверхностные паттерны были созданы с помощью MFP с использованием флуоресцеиново-меченого биотина на стрептавидине на стеклянных предметных стеклах с гидрогелем, покрытым ENC. Скорость подачи была равна 1 нл/с, а скорость аспирации — 10 нл/с с использованием шприцев объемом 10 мкл и 50 мкл соответственно. Зазор между поверхностью и зондом составлял 5 мкм.
MFP также может быть использован для локального окрашивания и обработки клеток и тканей. Ограничение потока препятствует диффузии реагента и позволяет проводить точное химическое окрашивание клеток. Как показано здесь, монослой фибробластов был окрашен с использованием 100 µg/mL dai.
Таким образом, мы продемонстрировали работу с микрофлюидным зондом. При выполнении данной процедуры необходимо убедиться в отсутствии пузырьков воздуха в системе, а также проследить, чтобы поверхность микрофлюидного зонда была параллельна подложке. На этом всё.
Благодарим за просмотр и желаем удачи в ваших экспериментах.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данном видео демонстрируются сборка и использование микрофлюидного зонда (MFP). В нем представлены критические этапы совмещения MFP с инвертированным микроскопом и обработки поверхностей подложки, погруженных в буферный раствор.
Микрофлюидный зонд обеспечивает точную локализованную подачу реагентов для обработки поверхности без необходимости использования закрытых микрофлюидных каналов, что способствует созданию масштабируемых и воспроизводимых анализов. Эта возможность расширяет возможности валидации мишеней и фенотипического скрининга, позволяя создавать контролируемые микросреды для клеточных и молекулярных взаимодействий. Он представляет собой многоразовую платформу для формирования поверхностных структур с высоким разрешением, что снижает расход реагентов и повышает производительность экспериментов в рабочих процессах раннего поиска.
Микрофлюидный зонд интегрируется в весь цикл разработки — от ранней валидации мишеней и разработки анализа до доклинического скрининга, обеспечивая итерационные циклы проектирования и тестирования.