-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Пластиковые вложения и секционирования Xenopus laevis Эмбрионы
Пластиковые вложения и секционирования Xenopus laevis Эмбрионы
JoVE Journal
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
Plastic Embedding and Sectioning of Xenopus laevis Embryos

Пластиковые вложения и секционирования Xenopus laevis Эмбрионы

Full Text
13,850 Views
14:39 min
April 29, 2007

DOI: 10.3791/188-v

Souichi Ogata1, Shimako Kawauchi1, Anne Calof2, Ken W.Y. Cho1

1Department of Developmental and Cell Biology,University of California, Irvine (UCI), 2University of California, Irvine (UCI)

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Пластиковые разделы сохранить истинный морфологии ткани в тонких срезов тканей, которые могут быть immunostained с люминесцентными вторичными антителами, что делает этот метод более полезным, чем парафин или замороженных срезов для многих типов тканей. Метод окрашивания, пластик вложение и секционирования показано в этом видео.

Transcript

Здравствуйте, меня зовут Сочи ота. Я являюсь научным сотрудником в лаборатории доктора Кена Чо на факультете биологии развития и клеточной биологии Калифорнийского университета. Ирв I Сегодня я покажу вам приготовление простого среза эмбриона ксенопуса.

Эта процедура включает в себя бисекцию эмбриона лягушки на поздней стадии газа, окрашивание антителом против исследуемой молекулы, инфильтрацию в пластик и создание такого же пластического сечения размером пять микрон. Эта процедура может быть использована для изучения иммунофлуоресценции, иммуногистохимии или гибридизации in situ с изображением с очень высоким разрешением. Хорошо, это маленькие удобные инструменты, которые я использую для пластического разрезания эмбриона 10 и более эмбрионов.

Это металлический пинцет с дельта-кончиком, а этот, номер один, с его помощью можно ориентировать зародыш в пластике. И во-вторых, это можно использовать вместе с этой кистью для переноса эмбриона из микротома на монтажную поверхность. Это изолятор из силиконовой резины, который я помещаю на поверхность предметного стекла и который создает водяную тягу, куда я могу установить ломтики пластиковых рассеченных эмбрионов.

Теперь я показываю, как разделить эмбрион пополам, фиксированный эмбрион для анализа, такого как гибридизация или обнаружение иммунофлуоресценции. А чтобы разрезать зародыш пополам, я использую эту очень тонкую пустынную сетку, которую можно купить в продуктовом магазине. Я думаю, что да, есть фиксированные эмбрионы, фиксирующие клетки на 3,7% формального максимума за ночь.

И то, как вы это исправите, зависит от цели. Это устраняется в одночасье. С целью инцизионной гибридизации можно пойти на ночную фиксацию, но для обнаружения иммунофлюоресценции, при которой вы обнаруживаете белок внутри эмбриона, я не рекомендовал слишком длительную фиксацию.

И я предпочитаю фиксировать высоту формы 3,7% в течение всего двух часов, чтобы свести к минимуму влияние на субклеточную локализацию белка, а также избежать чрезмерной фиксации, чтобы обеспечить хорошее проникновение антитела на этапе обнаружения. Хорошо, теперь я препарирую этот эмбрион через стену взрыва, разрезая левую и правую сторону. Итак, теперь я вижу, что это эмбрион 11 стадии, где PO проходит весь путь от дорсальной стороны до вентральной стороны, но у него есть эмбрион.

И давайте посмотрим на эту правую руку. Вы видите взрыв как на дорсальной, так и на вентральной стороне, но дорсальная сторона очевидна, потому что эта инвагинация явно проникает в самую глубокую, глубокую внутреннюю часть эмбриона по сравнению с вентральной стороной. Так что это хороший кусок, хороший кусок пополам для изучения как дорсальной, так и вентральной стороны.

Внутри эмбриона, этого препарированного эмбриона, я собираюсь использовать иммунофлуоресцентное обнаружение белка, экспрессируемого внутри эмбриона. А для иммунофлюоресценции или иммуногистохимии вы используете специфические антитела для обнаружения. Но проблема в том, что антитела не очень хорошо проникают внутрь эмбриона.

Так что, если вы используете целую гору, целую гору эмбриона, вы не можете знать. Вы не можете изучить характер экспрессии белков у эмбриона. Но с помощью этого предварительно разделенного пополам эмбриона вы можете изучить, каков паттерн экспрессии в клетке глубоко внутри эмбриона.

, окрашенный в пятна эмбрион уже зафиксирован на 3,7%. Формальдегид обезвожен в этанол и проник в пластик, который называется техно 7, 100. И этот набор состоит из трех частей, которая является основной частью жидкости и этого порошка, который называется отвердителем. И называется эта жидкость отвердителем два.

Сначала я смешиваю эту основную часть и отвердитель с соотношением 100 к одному, что даст вам эту смесь для проникновения. И вот что есть, то есть жидкость, в которую я проникаю этим эмбрионом. И это еще жидкость, чтобы она еще не застыла.

И вот эти образцы эмбрионов оставляют в этой инфильтрационной смеси на ночь, чтобы убедиться, что образец эмбриона полностью обобщен в этом пластике. Теперь я беру этот образец эмбриона с помощью трансферной пипетки и переношу в тонкостенную пробирку 0,5 MPCL, которую я использую в качестве формы для встраивания. Затем из этого зародыша удаляю лишнюю жидкость.

И теперь этот зародыш, этот зародыш уже готов к встраиванию в затвердевающий пластик. Чтобы сделать затвердевающий пластик, вы смешиваете эту инфильтрационную смесь с этой затвердевающей трубкой в соотношении 15 к одному. Так, например, если я возьму 750 микролитров этой инфильтрационной смеси для основания трубки, то я должен добавить 50 микролитров этого отвердителя, чтобы инициировать полимеризацию пластика после его добавления, ой, закройте крышку и затем аккуратно перемешайте вот так.

И не стоит делать вихрь, потому что кислород является ингибитором реакции полимеризации. Добавьте к зародышу примерно 250 микролитров этой смеси. И этот этап полимеризации занимает почти четыре часа, которые вы должны, вам совсем не нужно спешить.

После добавления этого полимеризующего пластика сначала вы можете трубить вверх и вниз, чтобы зародыш плавал в пластике. И теперь я беру этот металлический пинцет, чтобы надавить на эмбрион, чтобы сориентировать его так, чтобы режущая поверхность эмбриона доходила до дна этой формы для встраивания. Затем закройте крышку, потому что кислород является ингибитором реакции отверждения, и оставьте ее на четыре часа, чтобы дать возможность реакции отверждения.

После этого это уже стадо в образце HUD. Вы наносите клей на этот образец, чтобы убедиться, что эта пластиковая твердая часть не выйдет из этой формы. Это, это еще один пластик, который работает как клей для этой цели, называется техно 30 40.

И я смешиваю этот порошок и жидкость с 2, 2, 1 вот 0,6 грамма этого порошка. Итак, я собираюсь добавить 300 микролитров этой жидкости, затем быстро перемешать ее, и этот пластик довольно быстро становится твердым. Итак, это часть, вы должны быть немного жестче, а затем налить это к этому уже услышанному образцу.

Этого достаточно. Закройте крышку. Я выгляжу так.

И это займет примерно от 30 до 60 минут, чтобы стать твердым. И это тот, который готов к действию. Сначала я вырезаю кончик формы картонным ножом, эту часть кончика снимаю с этой формы.

Так что теперь эти внедренные эмбрионы обнажены. И еще я отрезал этот колпачок, потому что он мне не нужен. Теперь я беру эту иглу tain Roy, я имею в виду не лезвие tain Roy, которое тверже, чем обычное лезвие для окрашивания, используемое для разрезания parin.

Я кратко погружаю его в Синь, чтобы сделать его чистым. Установите это на держатель лезвия и сотрите излишки заина. И иногда я убираю эту область с помощью зайна, потому что чистота этой области абсолютно важна.

Теперь он готов к секционированию. Перед началом секционирования я настраиваю монтажную камеру. Итак, это слайд-стекло.

И вдобавок ко всему, я вставляю силиконовую резину и толкаю фермера до упора, чтобы не было, не было никакой утечки. И ставим это на горку грелку и заливаем этой чистой лечебной водой, чтобы сделать наш бассейн. И налейте столько воды, сколько вы получите, пока не получите поверхность поверхностных вод затопления.

И это важно, потому что эта поверхность паводковых вод обеспечивает равномерное распределение поверхностного натяжения воды, что важно для равномерного расширения участка. Сейчас я делаю секции, но перед этим я надеваю эту маску, потому что каждая секция такая легкая, такая легкая и моя, моя грудь может сдуться со сцены. Поэтому я ношу эту маску.

А теперь приступаем к секционированию. После того, как вы получаете какое-то количество секций на сцене, вы берете их кистью и медленно перемещаетесь по вершине этой горной камеры и стучите этой кистью, чтобы эти детали попали в воду под действием силы тяжести. И как только они приземляются на воду, они расширяются, образуя круглый кусок на поверхности воды.

Как этот свет после ночного высыхания. Теперь это выглядит вот так и вот так. Теперь образец готов к контакту с DPI для ядерной ДНК.

А потом можно изучать под микроскопом. Сегодня я показал вам приготовление пластикового среза с использованием эмбриона лягушки на поздней газовой стадии. Эта процедура весьма полезна для изучения субклеточной или локализации белка, которая не может быть изучена с помощью метода встраивания парен, а также в целом даже для остаточной гибридизации.

Этот пластиковый срез также дает вам даже для остаточной гибридизации, эта процедура может дать вам гораздо более высокий уровень изображения, чем скобочный или замороженный образец среза.

Explore More Videos

Биология развития выпуск 3 эмбрион Xenopus рассечение

Related Videos

Микроинъекции Xenopus ооцитов Laevis

12:10

Микроинъекции Xenopus ооцитов Laevis

Related Videos

23.5K Views

Live-камера и цифровой обработки изображений Количественный анализ эмбриональных эпителиальных клеток в Xenopus laevis

06:51

Live-камера и цифровой обработки изображений Количественный анализ эмбриональных эпителиальных клеток в Xenopus laevis

Related Videos

15.3K Views

Поляризованные транслокации флуоресцентных белков в Xenopus Эктодермы в ответ на Wnt сигнализации

06:55

Поляризованные транслокации флуоресцентных белков в Xenopus Эктодермы в ответ на Wnt сигнализации

Related Videos

11K Views

Нейронных культур эксплантов от Xenopus Хепориз

10:05

Нейронных культур эксплантов от Xenopus Хепориз

Related Videos

12.9K Views

Трансплантация лица в Xenopus Laevis Эмбрионы

09:08

Трансплантация лица в Xenopus Laevis Эмбрионы

Related Videos

10.5K Views

Рассечение Xenopus Laevis Нервного гребня для В пробирке Эксплантата Культура или В естественных условиях Трансплантация

09:07

Рассечение Xenopus Laevis Нервного гребня для В пробирке Эксплантата Культура или В естественных условиях Трансплантация

Related Videos

13.6K Views

Использование конфокальной Анализ Xenopus Laevis По расследованию модуляторы Wnt и Shh морфогена градиентов

08:10

Использование конфокальной Анализ Xenopus Laevis По расследованию модуляторы Wnt и Shh морфогена градиентов

Related Videos

11.7K Views

Стволовых клеток, как Xenopus Эмбриональные эксплантов для изучения раннего развития, особенности нейронных In Vitro И В Vivo

11:13

Стволовых клеток, как Xenopus Эмбриональные эксплантов для изучения раннего развития, особенности нейронных In Vitro И В Vivo

Related Videos

8.2K Views

Оценка первичного нейрогенеза в Xenopus Эмбрионы Использование Иммунологическое

06:47

Оценка первичного нейрогенеза в Xenopus Эмбрионы Использование Иммунологическое

Related Videos

9.9K Views

Флуоресцентные изображения кальция и последующей на месте гибридизации для нейрональной характеристики прекурсоров в Xenopus laevis

09:07

Флуоресцентные изображения кальция и последующей на месте гибридизации для нейрональной характеристики прекурсоров в Xenopus laevis

Related Videos

8.3K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code