26 апреля 2010 г.
Мы представляем протокол для гибки нитевидные клетки бактерий придает покрытие скольжения поверхности с оптической ловушки для измерения сотовой жесткость на изгиб.
Для определения жесткости на изгиб отдельных клеток E. coli сначала вырастите бактерии до экспоненциальной фазы, а затем закрепите их на поверхности химически обработанного покровного стекла. Позвольте уже прикрепившимся к поверхности клеткам расти дальше, чтобы у них сформировались гибкие концы. Затем введите поток диэлектрических бусин, захватите одну бусину и пригните ее к гибкому кончику клетки.
Заключительным этапом процедуры является изгиб клетки с помощью оптической ловушки и измерение полученных данных о вынужденном смещении. Жесткость изгиба клетки может быть рассчитана путем линейной аппроксимации данных о вынужденном смещении. Здравствуйте, я Стивен Вонг из лаборатории профессора Джошуа Шира в Институте интегративной геномики имени Луи Сиклера и на кафедре физики Принстонского университета.
Сегодня мы продемонстрируем процедуру изгиба отдельных клеток E. coli и измерения жесткости клеток. Мы используем этот метод в нашей лаборатории для изучения вклада различных внутриклеточных структур в механическую целостность бактериальных клеток. Итак, приступим.
Для начала данной процедуры вырастите три миллилитра любых клеток e coli в среде LB до экспоненциальной фазы. Когда оптическая плотность клеток при 600 нм достигнет значения от 0.2 до 0.4, добавьте в культуру цефалексин в концентрации 50 мкг/мл на 15 минут для индукции филаментозного роста. В течение этих 15 минут изготовьте проточную камеру.
Прикрепите два кусочка двухстороннего скотча к предметному стеклу с зазором в 3 mm между ними, а сверху закрепите покровное стекло. Зазор между кусочками скотча образует канал для протока жидкости. Покройте покровное стекло PEI, введя с помощью микропипетки 10 µL 1% полиэтилена, разведенного в воде, в проточную камеру, и инкубируйте в течение пяти минут.
Затем промойте камеру, пропустив 200 µL воды с одного конца и собирая ее с другого конца с помощью вакуума. После 15 минут культивирования бактерий в присутствии цефалексина центрифугируйте один мл клеток в микроцентрифуге и ресуспендируйте их в 200 µL LV с цефалексином. Затем снова, используя микропипетку с одного конца и вакуум с другого, введите 50 µL концентрированной клеточной культуры в камеру с покрытым покровным стеклом и инкубируйте в течение трех минут.
Затем промойте 50 µL среды Vel B с добавлением цефалексина. Для удаления неприкрепившихся клеток инкубируйте камеру при 37 °C от 30 минут до одного часа, чтобы прикрепившиеся клетки могли вырасти, прежде чем поместить их в установку для оптического захвата во время инкубации. Приготовьте бусины с полилизинным покрытием, инкубируя 3 µL полистирольных бусин диаметром 0,5 µm в 0,1% Polylysine, разведенном в воде, в течение 30 минут.
После завершения инкубации бусин промойте их трижды, центрифугируя в микроцентрифуге и повторно суспендируя в одном миллилитре воды, затем приступите к связыванию бусин с бактериями и измерению жесткости связывания клеток. Самым сложным аспектом данного протокола является способность обнаружить, локализовать и распознать подходящую клетку для измерения жесткости изгиба. Подходящей считается клетка с четко определенным закрепленным и свободным концами.
В проточной камере под микроскопом найдите клетку с четко зафиксированным концом. Некоторые клетки прикреплены только одним концом, и тогда изгибающая сила, приложенная к другому концу, приводит к повороту всей клетки, а не к ее изгибу. Чтобы найти подходящую клетку, быстро согните каждую клетку с помощью ловушки, используя движение предметного столика, управляемого джойстиком.
При обнаружении подходящей клетки разведите раствор микросфер в два раза в среде LB с цефалексином; с помощью пипетки внесите 30 µL раствора микросфер в один конец проточной камеры и аккуратно вытесните жидкость с другого конца, используя салфетку Kimwipe. С помощью оптической ловушки захватите свободно плавающую микросферу и прижмите ее к свободному концу клетки. Повторно промойте камеру с помощью микропипетки и салфетки Kimwipe, используя 50 µL цефалексина в LB для удаления неприкрепленных микросфер. Затем запустите специально написанную программу LabVIEW для приложения изгибающих сил к клетке и записи данных о вынужденном смещении.
Сначала откалибруйте отклик детектора путем сканирования прикрепленной микросферы по RA внутри луча детектирующего лазера и записи трехмерных сигналов напряжения PSD. Затем определите продольную ось клетки на изображении с микроскопа. После определения продольной оси перемещайте клетку ступенями в направлении, перпендикулярном этой оси, одновременно записывая пройденное расстояние и смещение микросферы относительно центра оптической ловушки.
Наконец, переведите значения смещения в приложенную силу, используя ранее измеренную жесткость ловушки, и сохраните результат. Смещение и сила кончика, сохраненные в файл, представляют собой данные о принудительном смещении одной клетки. Наклон этой прямой соответствует изгибной жесткости клетки.
Мы только что продемонстрировали вам, как совместить изгибную жесткость e coli с оптической ловушкой. При использовании данной процедуры важно помнить о необходимости подобрать подходящую клетку с четко определенными закрепленным и свободным концами. На этом все.
Благодарим за просмотр и желаем успехов в ваших экспериментах.
В данной статье представлен протокол измерения жесткости на изгиб нитевидных бактериальных клеток с помощью методов оптического захвата. Метод включает выращивание клеток E. coli, их закрепление на покровном стекле и приложение изгибающих сил для оценки их механических свойств.
Измерение жесткости бактериальных клеток обеспечивает количественную оценку структурной целостности, что может быть использовано для валидации мишеней при поиске новых противомикробных средств. Данный биофизический анализ позволяет снизить механистические риски, связывая генетические или химические возмущения с функциональными механическими фенотипами. Метод поддерживает тестирование гипотез на ранних этапах, когда изменения жесткости на изгиб отражают нарушения биосинтеза клеточной стенки или организации цитоскелета.
Данный анализ вписывается в континуум поиска лекарственных средств — от валидации мишени до оптимизации ведущих соединений, предоставляя ортогональные механические данные, дополняющие биохимические анализы и анализы, основанные на оценке роста.