RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
- Поместите интересующие эмбрионы в фенилтиомочевину, PTU, раствор Рингера для подавления образования пигмента, которое начинается через 24 часа после оплодотворения. Это делает развивающуюся анатомию более заметной, что необходимо для проведения данной процедуры. Перенесите эмбрион под наркозом трикаина в камеру визуализации. Поместите сверху предметное стекло и рассмотрите его под микроскопом. Сосредоточьтесь на травмируемом аксоне, который виден под 488-нанометровым лазером, потому что он трансгенетически экспрессирует GFP.
Сделайте предварительное изображение сайта. Затем посмотрите на аксон с помощью лазера с яркостью 910 нанометров, который заставляет GFP флуоресцировать красным цветом. Увеличьте интенсивность этого лазера, чтобы травмировать целевую область, не затрагивая окружающие ткани. Этот процесс называется аксотомией. Сделайте новый снимок с помощью первого лазера, чтобы подтвердить аксотомию, которая выглядит как разбросанные обломки. В следующем протоколе мы выполним аксотомию периферических сенсорных аксонов у эмбрионов рыбок данио-рерио с помощью двухфотонного лазера.
- Если в вашей лаборатории нет специально изготовленного двухфотонного эндоскопа, конфокальный двухфотонный микроскоп Zeiss 510 также можно использовать для разрыва аксонов. Мы начинаем с того, что помещаем установленный эмбрион на сцену и фокусируем его с помощью 25-кратного водяного объектива. Затем включите два фотонного и аргонового лазера в режиме многодорожечности, чтобы можно было переключаться с одного на другой.
Хотя оба лазера используются для обнаружения GFP, двухфотонное излучение визуализируется красным цветом, а излучение аргонового лазера — зеленым, чтобы различать их. Используйте аргоновый лазер, чтобы определить аксон, который нужно ранить. В разделе «Настройки Z» отметьте первый и последний оптические участки, сделайте конфокальное изображение и создайте максимальную проекцию стека Z.
Выключите аргоновый лазер и включите двухфотонный лазер. Сканируйте с интенсивностью пропускания около 9%, чтобы убедиться, что аксон все еще находится в фокусе. Нажмите кнопку «Стоп», чтобы инструмент «Обрезка» был доступен. Используйте инструмент «Обрезка» для увеличения области интереса. Обычно мы увеличиваем масштаб примерно до 70 раз. Выберите область аксона, которую нужно травмировать, и сфокусируйте внимание на этой области. Масштаб можно проверить на вкладке Режим.
Затем на вкладке Каналы измените интенсивность двух фотонов с примерно 9% пропускания на 15% или 30%. Чтобы активировать новые настройки, нажмите кнопку «Быстрый XY», а затем нажмите «Быстро остановить», чтобы избежать избыточного урона. Аксон следует рассматривать как разбросанный мусор, если процедура сработала. Наконец, чтобы убедиться, что аксон действительно был поврежден, переключитесь обратно на аргоновый лазер с 488 нанометровым напряжением. Возьмите еще одно конфокальное изображение и создайте максимальную проекцию стеков Z.
Related Videos
06:36
Related Videos
24.8K Views
11:19
Related Videos
12K Views
10:29
Related Videos
8.1K Views