JoVE Encyclopedia of Experiments
Биология
0 просмотров • 3:42 мин • April 30th, 2023
- Начните с помещения записывающей камеры, содержащей образец в растворе для ванны, состав которого соответствует физиологической внеклеточной среде или цитоплазме, на предметный столик микроскопа. Продвигайте записывающую микропипетку, пипетку, содержащую серебряный электрод, погруженный в раствор электролита, который имитирует внутриклеточные условия, к нейрону, оказывая положительное давление, и установите контакт с клеточной мембраной.
Осторожно переключайтесь с положительного на отрицательное давление, чтобы образовать плотное уплотнение между мембраной и пипеткой. Установите удерживающий потенциал на усилителе, чтобы поддерживать постоянное напряжение ячейки. Затем разорвите клеточную мембрану внутри микропипетки с помощью отсасывания.
Как только клеточная мембрана разрывается, удерживающий потенциал вызывает поток ионов через потенциал-зависимые ионные каналы, создавая мембранный потенциал, который регистрируется записывающим электродом. Немедленно зарегистрируйте потенциал мембраны. Записывающий электрод передает сигнал на усилитель обратной связи, который вычитает мембранный потенциал из удерживающего потенциала — осциллограф, который визуально отображает мембранный потенциал, и компьютер. В следующем протоколе мы выполним измерение клеточного зажима на клетке Маутнера в эмбрионе рыбки данио.
- Чтобы подготовиться к наложению пластыря, начните с вытягивания нескольких пипеток с патч-хомутом с тонкостенным боросиликатным стеклом в горизонтальном съемнике. Диаметр наконечника пипетки составляет от 0,2 до 0,4 микрометра после огневой полировки до гладкого края, а длина конуса хвостовика составляет около 4 миллиметров.
Заполните наконечник пипетки внутриклеточным раствором, погрузив наконечник во внутриклеточную жидкость. Затем вставьте иглу шприца в пипетку и аккуратно вытолкните внутриклеточный раствор из шприца, чтобы закончить заполнение пипетки. Прикрепите пипетку к головному столику усилителя в электрофизиологической установке. Важно, чтобы головной столик находился под углом примерно 45 градусов к горизонтальной оси, так как это обеспечивает угол входа в пипетку, подходящий для формирования высокопрочных уплотнений с помощью ячейки Маутнера.
Непосредственно перед тем, как пипетка опустится в раствор для ванны, надавите на пипетку с небольшим положительным давлением, чтобы снизить вероятность блокировки наконечника. Продолжайте приближаться к М-клетке с небольшим количеством положительного давления в пипетке. Положительное давление мягко толкает клетку из стороны в сторону, а при расположении непосредственно над клеткой образует небольшую ямочку на клеточной мембране.
Теперь оставьте пипетку на месте на несколько секунд, чтобы аккуратно очистить поверхность клетки, чтобы между пипеткой и мембраной образовалось прочное уплотнение. Затем сбросьте положительное давление в пипетке, чтобы начать запечатывание. Небольшое отрицательное давление в сочетании с отрицательным потенциалом пипетки приводит к образованию гигаомных уплотнений в течение нескольких секунд.
Впоследствии измените удерживающий потенциал в усилителе на минус 60 милливольт. Разорвите клеточную мембрану серией коротких импульсов всасывания. Затем немедленно регистрируются мембранные потенциалы и минимизируются артефакты емкости. Компенсация емкости ячейки и сопротивления доступа от 70% до 85%.
Сопротивление доступа следует контролировать каждые 30 секунд или минуту, и если происходит изменение на 20% или более, прервать эксперимент. Как только эксперимент закончится и будет получено достаточно данных, пожертвуйте эмбрионом, удалив задний мозг с помощью пары щипцов.
В данной статье подробно описан протокол проведения измерений методом локальной фиксации потенциала (patch clamp) на клетке Маунтнера в эмбрионе zebrafish. В ней изложены необходимые подготовительные этапы и шаги для достижения высокого сопротивления контакта (seal) и точной регистрации мембранного потенциала.
Электрофизиологический метод патч-кламп в конфигурации «целая клетка» (whole-cell) позволяет напрямую измерять электрическую активность нейронов, предоставляя критически важные данные для валидации мишеней при поиске новых лекарственных препаратов в области нейронаук. Путем количественной оценки функции ионных каналов и возбудимости мембран в нейрональных моделях, релевантных конкретным заболеваниям, данный метод позволяет на ранних этапах разработки снизить риски, связанные с механизмом действия терапевтических гипотез. Применение этого метода на эмбрионах данио-рерио обеспечивает масштабируемую и генетически доступную систему для доклинической оценки мишеней и сопоставления биомаркеров.
Данный метод интегрируется в непрерывный процесс разработки: от ранней валидации мишени через идентификацию соединений-лидеров до доклинических исследований, что особенно актуально для портфелей препаратов, направленных на ЦНС и требующих функциональных данных о нейронах.
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Последнее обновление: 29 августа 2026