$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
- Для начала разведите изолированные циркулирующие опухолевые клетки или ЦОК до необходимой концентрации с помощью раствора, препятствующего связыванию, который защищает клетки от сдвига жидкости и повреждения давлением. Затем соберите предметное стекло микроскопа с полилизиновым покрытием и карту фильтра цитоцентрифуги в узел воронки цитоцентрифуги. Перенесите клеточную суспензию в воронкообразный порт сборки с последующим цитоцентрифугированием.
Центробежная сила концентрирует и наносит монослой ячеек на круглую область на предметном стекле. Изолируйте участок с клетками с помощью силиконового изолятора. После высыхания зафиксируйте клетки с помощью параформальдегида. Затем инкубируйте клетки с подходящим блокирующим раствором, содержащим белки, которые легко связываются с любыми неспецифическими сайтами связывания на поверхности клетки.
Теперь пометьте клетки флуоресцентным раствором антител, представляющим интерес. Помеченные флуорофорами антитела распознают и связываются с определенными молекулами-мишенями на поверхности клетки. Промойте образец, чтобы удалить все несвязанные антитела. Добавьте монтажный раствор, чтобы подготовить образец к визуализации.
Используйте флуоресцентный микроскоп для обнаружения света, излучаемого конъюгатами антитело-флуорофор, связанными с целевыми антигенами на ЦОК. В этом протоколе мы проведем иммунофлуоресцентный анализ ЦОК в образцах пациентов с немелкоклеточным раком легкого.
- Для иммунофлуоресцентного окрашивания подсчитайте клетки в гемоцитометре и разбавьте обогащенный образец до 1 умножения на 10 до пятой клетки на 100 микролитров 0,2% концентрации антисвязывающего раствора. Затем с помощью ватного тампона, смоченного 50 микролитрами раствора против связывания, увлажните контур камеры образца и поместите в камеру образца предметное стекло из полилизина.
Закройте камеру и трижды проведите пипеткой вверх и вниз, чтобы покрыть наконечник микропипетки связующим раствором, прежде чем повторно суспендировать образец в последних 100 микролитрах надосадочной жидкости. Перенесите клеточный раствор в камеру для образца и цитоспинируйте образец в специальной центрифуге со скоростью 400 оборотов в минуту в течение 4 минут при низком ускорении.
По окончании центрифугирования поместите силиконовый изолятор вокруг области осаждения и дайте предметному стеклу высохнуть под шкафом для микробиологической безопасности в течение двух минут. Затем зафиксируйте образец цитоспина 100 микролитрами 4% параформальдегида в течение 10 минут при комнатной температуре, после чего последует три 2-минутных промывки 200 микролитрами PBS на промывку при комнатной температуре.
После последней промывки блокируйте любое неспецифическое связывание 30-минутной инкубацией в блокирующем реагенте при комнатной температуре с последующим мечением 100 микролитрами исследуемого раствора антитела. Поместите маркированное предметное стекло в чашку Петри размером 100 на 15 миллилитров на лист впитывающей бумаги, смоченный 2 миллилитрами стерильной воды, и поместите чашку закрытой при температуре 4 градуса Цельсия на ночь, защищенную от света.
На следующее утро трижды промойте образец PBS, как показано на рисунке, и установите образец с 10 микролитрами подходящего монтажного раствора и стеклянной крышкой. Затем заклейте крышку прозрачным лаком для ногтей.