RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
- В 3D-кокультурах несколько типов клеток выращиваются вместе в матрицах, таких как матрица базальной мембраны, которая имитирует естественное микроокружение внеклеточного матрикса, способствуя межклеточному взаимодействию и взаимодействию между клетками. Для создания встроенной 3D кокультуры готовят однородную суспензию из ассоциированных с раком фибробластов или CAF и клеток рака легких, взятых в соотношении два к одному, в матрице базальной мембраны. Удерживайте суспензию на льду, чтобы предотвратить затвердевание матрицы при температуре окружающей среды.
Перенесите соответствующий объем суспензии в планшет для клеточной культуры. Инкубируйте при температуре 37 градусов Цельсия в течение необходимого времени для совместного встраивания клеток в матрикс. Чтобы создать наложенную 3D-кокультуру, приготовьте суспензию клеток рака легких в матриксе базальной мембраны с желаемой плотностью клеток. Поддерживайте подвеску на льду. Пипеткой введите соответствующий объем этой суспензии клеточного матрикса в планшет для культивирования клеток. Инкубируйте при 37 градусах Цельсия, чтобы создать монокультуру встроенных раковых клеток.
Затем перенесите желаемый объем CAF, взвешенных в предпочтительных питательных средах, над внедренными раковыми клетками. В 3D-кокультурах CAF усиливают образование сфероидов раковыми клетками и привлекают раковые клетки, что приводит к образованию каплевидных структур. В рамках этого протокола мы будем совместно культивировать клетки рака легких TUM622 и CAF для изучения их взаимодействия.
- После приготовления клеточных суспензий TUM622 и CAFs, как описано ранее, подсчитайте плотность клеток CAF, смешав 10 микролитров клеточной суспензии с 10 микролитрами трипанового синего. Добавьте по 10 микролитров смеси в каждую из двух камер на гемоцитометре для подсчета и расчета плотности клеток. Чтобы совместно встроить клетки TUM622 и CAF в матрицу базальной мембраны, сначала рассчитайте желаемое количество ячеек, используемых для покрытия, на основе информации о плотности клеток. CAF высеваются в соотношении клеток TUM622 в соотношении 2 к 1. Переведите расчетный объем TUM622, а также суспензию клеток CAF, в ту же центрифужную пробирку. Вращаем вниз и аспирируем все средние. Повторно суспендируйте в базальную мембранную матрицу и планшет по 310 микролитров смеси в каждую лунку 24-луночного планшета. Для иммунофлюоресценции перенесите 60 микролитров смесей TUM622 и CAF на предметные стекла камеры, как описано ранее.
Для совместного культивирования TUM622 с наложенными CAF в матрице базальной мембраны сначала создали монокультуру TUM622, как описано ранее. Перелейте удвоенное количество суспензии CAF в центрифужную пробирку и вращайте со скоростью 300 «g» в течение пяти минут при комнатной температуре. Аспирируйте надосадочную жидкость и ресуспендируйте CAF в одном миллилитре 3D-питательной среды. Перелейте одну миллилитровую суспензию CAF в лунку, содержащую встроенные клетки TUM622.
Related Videos
11:31
Related Videos
36.3K Views
08:39
Related Videos
17.6K Views
07:21
Related Videos
7.7K Views