Анализ тракционной цитометрии: метод количественной оценки силы тракции, оказываемой раковыми клетками на ЭКМ

0 views • 2:44 min • April 30th, 2023

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

- Клетки генерируют механические силы, которые действуют на внеклеточный матрикс. Эта сила называется тяговой силой. Клетки оказывают тяговое усилие для выполнения различных задач, таких как миграция и пролиферация.

Метастатические раковые клетки оказывают большее тяговое усилие, чем здоровые клетки, поэтому мы проводим анализ тракционной цитометрии для измерения тяговых сил, оказываемых клетками на эластичные субстраты. Начните с посева желаемого количества клеток рака толстой кишки на полиакриламидный гидрогель, гель, который имитирует ECM in vitro. Гель содержит белки фибронектина, которые помогают клеткам прилипать к поверхности, и флуоресцентные шарики, которые действуют как маркер для изменения положения.

Инкубируйте клетки в течение нужного срока. Клетки прилипают к гелю и оказывают тяговое усилие, что вызывает смещение флуоресцентных шариков. Теперь поместите пластину под флуоресцентный микроскоп и сделайте снимок смещенных флуоресцентных шариков. Затем добавьте желаемое количество трипсина в пластину, чтобы отсоединить клетки, и проанализируйте силу тяги, которую оказывают клетки, с помощью соответствующего программного обеспечения. В следующем протоколе мы выполним анализ тракционной силовой микроскопии для анализа клеточной тракции клеток рака толстой кишки человека.

- Для проведения анализа тракционной силовой микроскопии сначала нагрейте 0,25% раствор трипсина-ЭДТА 10% SDS до 37 градусов Цельсия на водяной бане в течение 10 минут до начала эксперимента по вытяжению. Извлекайте по одному гелю из инкубатора для клеточных культур и поставьте на предметный столик микроскопа. Обнаружив в поле зрения одну ячейку, снимите крышку чашки Петри и сделайте фазово-контрастное изображение ячейки.

Далее переключите режим визуализации на флуоресцентный и выберите подходящий фильтр. Не перемещайте предметный столик или образец микроскопа в течение этого времени. Затем сделайте снимок флуоресцентных шариков, вытесненных клеточным вытяжением. Теперь добавьте 1 миллилитр раствора Trypsin SDS в чашку Петри, чтобы отделить клетку от геля. Сделайте эталонное изображение бусин после того, как ячейка будет удалена.

13:30

Новый метод для локализации Reporter флуоресцентные шарики Ближних культуре клеток для увеличения силы сцепления силовой микроскопии

Related Videos

0 Views

08:48

Полиакриламидные Гели для Invadopodia и тяговое усилие Анализы на клетках рака

Related Videos

0 Views

09:28

Микроскопия силы тяги для изучения активации лимфоцитов B

Related Videos

0 Views

11:38

Подготовка жалобы матриц для Количественная Сотовая Сокращение

Related Videos

0 Views

03:25

Анализ цитоскелета и организации фокальной адгезии: иммунофлуоресцентный метод изучения клеточной адгезии и распространения на субстратах

Related Videos

0 Views

04:25

Анализ адгезии in vitro для выявления адгезии раковых клеток к нейтрофильным внеклеточным ловушкам

Related Videos

0 Views

09:28

Выделение первичных клеток человека Колон опухоль из хирургических тканей и культивирование их прямо на мягкий эластичный субстратов для тяговых цитометрии

Related Videos

0 Views

11:51

Несколько хорошо формат на основе полиакриламида Assay для изучения влияния внеклеточной матрицы жесткости на бактериальные инфекции адэрентных клеток

Related Videos

0 Views

13:34

Высокой пропускной силы тяги Микроскопия использованием PDMS показывает доз-зависимые эффекты преобразования фактор роста-я на Эпителиальный-к-мезенхимальный переход

Related Videos

0 Views

14:55

Интегративный инструментарий для анализа клеточных сигналов: сил, движения, морфологии и флуоресценции

Related Videos

0 Views

Last updated: 25 July 2026