-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Как культуре, запись и стимулировать нейронных сетей на микро-электрод массивы (МЭС)
Как культуре, запись и стимулировать нейронных сетей на микро-электрод массивы (МЭС)
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
How to Culture, Record and Stimulate Neuronal Networks on Micro-electrode Arrays (MEAs)

Как культуре, запись и стимулировать нейронных сетей на микро-электрод массивы (МЭС)

Full Text
55,649 Views
09:27 min
May 30, 2010

DOI: 10.3791/2056-v

Chadwick M. Hales1,2, John D. Rolston2,3, Steve M. Potter2

1Department of Neurology,Emory University School of Medicine, 2Coulter Department of Biomedical Engineering, Laboratory for Neuroengineering, Georgia Institute of Technology and Emory,University School of Medicine, 3Emory University School of Medicine

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Этот протокол обеспечивает необходимую информацию для создания, забота о, запись, и электрически стимулирует культур на МПС.

Общая цель этой процедуры заключается в культивировании, регистрации и стимуляции нейронных сетей на микроэлектродных решетках. Это достигается путем предварительной подготовки реагентов и микроэлектродных матриц к культивированию. Вторым этапом процедуры является диссоциация корковых нейронов из эмбриона крысы на 18-й день.

Третьим этапом процедуры является наложение микроэлектродов на микроэлектродные матрицы и культивирование в течение двух-трех недель. Заключительным этапом процедуры является экспериментирование с нейронными сетями путем стимуляции и записи с микроэлектродных матриц. В конечном счете, могут быть получены результаты, которые демонстрируют спонтанную и вызванную стимулом активность в нейронных сетях с помощью программного обеспечения для записи и стимуляции путем тщательного культивирования клеток на микроэлектродных массивах.

Здравствуйте, я профессор Стив Поттер. Я являюсь директором лаборатории нейроинженерии на факультете культуры биомедицинской инженерии в Технологическом институте Джорджии. Этот факультет находится в совместном использовании с Медицинской школой Университета Эмори.

Меня зовут Чад Хейлз, я работаю постдоком в лаборатории доктора Поттера. Я также являюсь научным сотрудником по когнитивно-поведенческому поведению на кафедре неврологии в Медицинской школе Университета Эмори. Сегодня мы покажем вам, как культивировать и ухаживать за нейронами на многоэлектродных решетках.

Вот такие. Мы используем их для изучения обучения и памяти in vitro и обработки сетевой информации. Итак, приступим к работе В ламинарном проточном колпаке начните подготовку многоканальных систем микроэлектродной матрицы или пипетки МЭА 100 микролитров полиэтиленамина в центр чистой и стерильной МЭА, отдыхающей в 100-миллиметровой чашке Петри, чтобы не повредить электроды.

Никогда не прикасайтесь к твердым предметам к поверхности MEA. Слегка накрываем тарелку стерильной крышкой, снабженной газопроницаемой тефлоновой мембраной и выдерживаем в вытяжке в течение 30 минут. Крышка из тефлоновой мембраны обеспечивает газообмен с минимальным испарением и возможностью культивирования в условиях более низкой влажности.

Более низкая влажность позволяет использовать в инкубаторе деликатную электронику и снижает уровень загрязнения. Отсадите PEI, промойте MEA три раза одним-двумя миллилитрами стерильной деионизированной воды. Дайте им высохнуть при снятой крышке в вытяжке не менее 30 минут или пока они полностью не высохнут.

Завершите диссоциацию корковых нейронов E 18, как описано в текстовой части данного протокола. Процедите клетки после процеживания. Переложите клеточную суспензию в коническую пробирку объемом 15 миллилитров и осторожно доведите объем клеточной суспензии до четырех миллилитров с помощью клеточной среды.

Нанесите слой 500 микролитров 5%-ного раствора BSA под центрифугу клеточной суспензии при давлении 200 G в течение шести минут. Пока клетки вращаются, убедитесь, что МЭА полностью сухие. Осторожно нанесите пипеткой 20 микролитров раствора ламината в центр МЭА.

Избегайте попадания пузырьков воздуха и убедитесь, что все электроды закрыты. Аккуратно положите тефлоновую крышку на MEA, чтобы предотвратить испарение ламинина. MEA должен находиться на абсолютно ровной поверхности, когда крышка установлена.

В противном случае давление может треснуть стеклянное дно массива. Выдерживайте чашку при температуре от 35 до 37 градусов Цельсия, 5% углекислого газа, 9% кислорода и влажности 65% в течение 20 минут. Теперь переложите закрученные ячейки в капот.

На дне пробирки должна быть видна клеточная гранула. Удалите и оставьте надосадочную жидкость на случай неполного гранулирования. Аккуратно ресуспендируйте гранулу.

Посчитайте количество клеток в 10 микролитрах суспензии на цитометре гемоцитометра и разведите суспензию до нужной концентрации. Обычно от 1000 до 3000 клеток на микролитр с клеточной средой. Когда инкубация ламината будет завершена, немедленно удалите каплю.

Пипеткой нанесите от 15 до 20 микролитров клеточной суспензии на покрытую ламинатом область MEA. Накройте посуду тефлоновой крышкой и поставьте в инкубатор на 30 минут. Под фазово-контрастным микроскопом осмотрите чашку, чтобы убедиться, что клетки прилипли и покрыли все электроды.

Если охват неполный, добавьте больше клеток и повторите инкубацию. Медленно залейте посуду одним миллилитром подогретой уравновешивающей клеточной среды. Установите на место тефлоновую крышку и поместите блюдо обратно в инкубатор на 24 часа.

На следующий день. Под фазово-контрастным микроскопом убедитесь, что культивируемые клетки прилипли и что количество мусора и гибель клеток ограничены при надлежащем уходе и питании. Как поясняется в сопроводительном тексте, нейроны, культивируемые таким образом, могут выжить более года.

Через две-три недели культуры достигли устойчивого состояния активности и могут быть записаны из этого видео, теперь будет продемонстрировано запись с помощью специально созданной программы нейрописателя. Перенесите чашку в регистрирующий инкубатор при температуре от 35 до 37 градусов Цельсия, 5% углекислого газа, 9% кислорода и 65% влажности. Чтобы поддерживать идеальную температуру и pH, при перемещении посуды передвигайте ее параллельно земле и избегайте быстрых движений, которые могут выбить клетки из субстрата.

Извлеките MEA из чашки и поместите его в многоканальные системы. Записывая усилитель preem, убедитесь, что внутреннее заземление правильно согласовано с заземлением усилителя Preem. Предварительный усилитель расположен на шкуре, которая функционирует для рассеивания тепла, как описано в сопроводительном тексте здесь, предварительный усилитель был перемещен из инкубатора.

Лучше покажите правильную посадку блюда. Используйте салфетку, смоченную в 70% этаноле, для очистки контактов по периметру массива. Убедитесь, что MEA правильно установлен ниже, и зафиксируйте крышку.

При необходимости с помощью ватной палочки совместите контакты массива. В neuro writer выберите настройки, подходящие для эксперимента. Переключатель записи должен быть поднят вверх.

Чтобы записать данные в файл, нажмите кнопку «Пуск», чтобы начать запись. На экране с пиками теперь будут отображаться бегущие следы активности и фоновый шум с редкими потенциалами действий и всплесками активности. Если электрод излучает слишком сильный шум, возможно, на крышке предварительного усилителя находится смещенный контакт, небольшой кусочек мусора, капля среды, поврежденная поверхность электрода или перекрывающаяся прозрачная мембрана от крышки, нарушающая контакт

.

Проверьте контактный штифт и при необходимости отрегулируйте ватным тампоном, смоченным в 70% этаноле. Нажмите на вкладку формы сигнала спайка, чтобы переключить вид экрана в режим обнаружения спайков, в котором потенциалы действия отображаются в статических окнах длиной три миллисекунды. Чтобы стимулировать нейронную сеть на MEA, обучите алгоритм сальпы на вкладке настроек записи, чтобы ограничить артефакт стимуляции, активируйте сальпу на вкладке онлайн-настроек.

После начала записи нажмите на вкладку STEM, чтобы настроить подходящую парадигму стимуляции, чтобы использовать программу с разомкнутым контуром для стимуляции одного электрода и наблюдать за реакцией в чашке. Выберите подходящие настройки в разделе разомкнутого цикла и нажмите кнопку «Пуск». Визуализируйте отклики на главной вкладке спайков и на вкладке форм волны спайков.

В этом фильме показано, как в пробирке развиваются семь нейронов и глиальные клетки, которые растут и образуют связанную сеть на MEA, где видны микроэлектроды. Это растровый график двухминутной спонтанной активности нейронной сети. Каждая черная точка представляет собой потенциал действия.

Два всплеска активности обозначены синими стрелками. Отклик на несколько электродов является функцией подключения к сети. Вот растровый график 16-секундной активности, вызванной стимулом.

Красные звезды обозначают раздражители. Красными стрелками показаны пять стимулов, которые успешно индуцировали всплески синаптической активности на нескольких электродах. Иногда стимул не приводит к взрыву.

Здесь, на синей стрелке, мы только что показали вам, как культивировать, записывать и стимулировать нейронные сети на микроэлектродных массивах. Вероятно, самое важное, о чем нужно беспокоиться, — это предотвратить заражение культур и уменьшить испарение. Если использовать крышки с полупроницаемыми мембранами, как эта, они герметичны и предотвращают испарение и инфекцию, и вы можете культивировать культуры в течение месяцев, возможно, даже более года.

Вот и все. Спасибо за просмотр и удачи в ваших экспериментах.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Neuroscience выпуск 39 микро-электрод многоэлектродной нейронные MEA сети пластичность шип стимулирование учет крыса

Related Videos

Multi-электрод массив записей из нейронов Лавины в органотипической культур

16:01

Multi-электрод массив записей из нейронов Лавины в органотипической культур

Related Videos

26.9K Views

Построение трехмерных нейронных сетей, сопряженных с микроэлектродными массивами

02:39

Построение трехмерных нейронных сетей, сопряженных с микроэлектродными массивами

Related Videos

393 Views

Измерение электрофизиологической активности нейронных сетей с помощью микроэлектродных матриц

02:05

Измерение электрофизиологической активности нейронных сетей с помощью микроэлектродных матриц

Related Videos

466 Views

Анализ нейронной активности в нейронах первичных спиральных ганглиозов мышей с использованием многоэлектродных матриц

02:40

Анализ нейронной активности в нейронах первичных спиральных ганглиозов мышей с использованием многоэлектродных матриц

Related Videos

467 Views

Электрофизиологические записи для оценки регенерации нейронов в сокультурных срезах спинного мозга

04:21

Электрофизиологические записи для оценки регенерации нейронов в сокультурных срезах спинного мозга

Related Videos

408 Views

Использование многоэлектродных матриц для измерения синаптической физиологии в сферах 3D-кокультуры

02:07

Использование многоэлектродных матриц для измерения синаптической физиологии в сферах 3D-кокультуры

Related Videos

497 Views

Взаимодействие 3D конструктивных нейронов культур Микро-матриц электродов: Инновационный In Vitro Экспериментальная модель

09:47

Взаимодействие 3D конструктивных нейронов культур Микро-матриц электродов: Инновационный In Vitro Экспериментальная модель

Related Videos

10.3K Views

Спирального ганглия Нейрон эксплант и электрофизиологии на многопроцессорных электродных Массивы

07:51

Спирального ганглия Нейрон эксплант и электрофизиологии на многопроцессорных электродных Массивы

Related Videos

10.2K Views

Зависящее от времени увеличение ответа сети на стимуляцию нейронных клеточных культур на микроэлектродных массивах

10:45

Зависящее от времени увеличение ответа сети на стимуляцию нейронных клеточных культур на микроэлектродных массивах

Related Videos

10.2K Views

Микрофлюидика сопряжения с микроэлектродные массивы для изучения нейронные связи и распространения аксональное сигнала

11:27

Микрофлюидика сопряжения с микроэлектродные массивы для изучения нейронные связи и распространения аксональное сигнала

Related Videos

8.4K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code