ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Эта работа была поддержана NIH грант DK080351 к ПК, а щедрый подарок от Терри и Кристин Гор семьи.

Экспериментальный протокол После гипофиза иммуногена готова (см. сопутствующую статью), он вводится подкожно в SJL мышей (Jackson Laboratories, акции 000 686). Второй идентичный инъекции повторяют через 7 дней. Мыши которые затем используются для сбора в естественных условиях и посмертные результаты. Шаг 1. Подкожные инъекции гипофиза иммуногена в SJL мышей Мыши первой анестезией путем введения 0,5 мл 20 мг / мл 2,2,2-Tribromoethanol (Avertin, TCI Америки, Т-1420) внутрибрюшинно. Мыши затем вводили подкожно по 100 мкл эмульсии гипофизом, что, как указано в спутник Юпитера 2181 статьи, содержит 1 мг экстракта гипофиза и 0,25 мг полного адъюванта Фрейнда. Эмульсии вводят в левый спинной задних регионе ноги ((50 мкл) и правой паховой области (50 мкл). Гипофиза эмульсии вводят снова на 7 день в противоположную сайтов (50 мкл в правой спинной задние ноги и область 50 мкл в левой паховой области). Мыши контролируется на ежедневной основе в течение первых 3 дней, а затем раз в неделю до дня жертвы, которые, как правило, через 28 дней после первой иммунизации. Шаг 2. Сборник в естественных результатах: Blood тесты Ткани наиболее часто используется для оценки результатов экспериментальных мышей в то время как все еще живы в крови. Кровь обычно обращается через 14 дней после первой иммунизации для измерения сывороточных уровней гипофиза антител или других маркеров, как цитокинов и хемокинов. Кровь собирается из живых мышей в следующем. Мыши проходят надежно шиворот и задней части челюсти находится. Как только заднюю часть челюсти находится, 4 ланцеты мм используются для прокалывания подчелюстной сосудистого пучка. После кровь собирается, давление на на области с помощью алкоголя тампон, чтобы избежать гематомы. Сборник крови центрифугируют при 2000 г в течение 20 минут, и хранится при температуре -80 ° С до использования. Шаг 3. Сборник посмертные результаты: гипофиз гистопатология Мыши, как правило, пожертвовал 28 дней после первой иммунизации. Кардинальной функции необходимо установить диагноз EAH является проникновение гипофиз от гемопоэтических моноцитов. Мыши эвтаназии, помещая их в герметичную камеру пластика, который озарен CO 2. Мыши держат в камере в общей сложности на 8 минут. После эвтаназии, гипофиз собираются, как описано в статье компаньона. Больные гипофиза появляется опухшие и более прочно приверженцем окружающей мозговой оболочки. Sharp щипцов используются, чтобы ослабить мозговых оболочек окружающих гипофиза. После гипофиза свободно перемещается на клиновидной кости, один конец гипофиз схватил пинцетом и гипофиза тщательно сняты. Железы помещают в пробирку, содержащую микроцентрифужных фиксатором 5 Beckstead в. Гипофиз фиксируется на ночь, завернутый в объектив бумаги, и помещают в кассету. Желез затем обрабатываются с помощью следующих протоколов: <table border="1"><tbody><tr><td> Номер станции </td><td> Реагент </td><td> Время в минутах </td><td> Температура (по Цельсию) </td></tr><tr><td> 1 </td><td> 70% алкоголя </td><td> 5 </td><td> 25 </td></tr><tr><td> 2 </td><td> 70% алкоголя </td><td> 15 </td><td> 25 </td></tr><tr><td> 3 </td><td> 95% алкоголя </td><td> 15 </td><td> 25 </td></tr><tr><td> 4 </td><td> 95% алкоголя </td><td> 15 </td><td> 25 </td></tr><tr><td> 5 </td><td> 100% спирта </td><td> 15 </td><td> 25 </td></tr><tr><td> 6 </td><td> 100% спирта </td><td> 7,5 </td><td> 25 </td></tr><tr><td> 7 </td><td> 100% спирта </td><td> 7,5 </td><td> 25 </td></tr><tr><td> 8 </td><td> ксилол </td><td> 20 </td><td> 25 </td></tr><tr><td> 9 </td><td> ксилол </td><td> 20 </td><td> 25 </td></tr><tr><td> 10 </td><td> ксилол </td><tг&gt; 20 </td><td> 25 </td></tr><tr><td> 11 </td><td> парафин </td><td> 30 </td><td> 58 </td></tr><tr><td> 12 </td><td> парафин </td><td> 5 </td><td> 58 </td></tr><tr><td> 13 </td><td> парафин </td><td> 5 </td><td> 58 </td></tr></tbody></table> После обработки, гипофиза железы в парафин и не менее 5 непоследовательных разделы (5 мкм) вырезаны из каждой железы. После секционирования, железы, окрашенных гематоксилином и эозином и анализировали количественно мононуклеарных инфильтрации. Раздел с наиболее тяжелой инфильтрации выбран для скоринга. Тяжести оценивается на основе субъективной оценки степени передней доли гипофиза замены или разрушения иммунных клеток: степень 0, никакой болезни, категория 1, 2% -20% участия; 2-й степени, 20% -30%, 3-й степени, 30% -50%, 4-й степени, 50% -90%, 5-го класса, больше 90%. Все разделы забил два человека знали о источник разделов.

<ol><li>Tzou, S. C., Lupi, I., Landek, M., Gutenberg, A., Tzou, Y. M., Kimura, H., Pinna, G., Rose, N. R., Caturegli, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autoimmune+Hypophysitis+of+SJL+mice%3A+Clinical+Insights+from+a+New+Animal+Model%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Autoimmune Hypophysitis of SJL mice: Clinical Insights from a New Animal Model.</a> Endocrinology. , (2008).</li>
<li>Twarog, F. J., Rose, N. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+production+of+thyroid+autoantibodies+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">The production of thyroid autoantibodies in mice.</a> J Immunol. 101, 242-2450 (1968).</li>
<li>Patrick, J., Lindstrom, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autoimmune+response+to+acetylcholine+receptor%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Autoimmune response to acetylcholine receptor.</a> Science. 180, 871-872 (1973).</li>
<li>Caturegli, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autoimmune+hypophysitis%3A+an+underestimated+disease+in+search+of+its+autoantigen%28s%29%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Endocrinol+Metab%22%5BJournal%5D)">Autoimmune hypophysitis: an underestimated disease in search of its autoantigen(s).</a> J Clin Endocrinol Metab. 92, 2038-2040 (2007).</li>
<li>Beckstead, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+technique+for+preservation+of+fixation-sensitive+antigens+in+paraffin-embedded+tissues%3A+addendum%5BTitle%5D)+AND+%22J+Histochem+Cytochem%22%5BJournal%5D)">A simple technique for preservation of fixation-sensitive antigens in paraffin-embedded tissues: addendum.</a> J Histochem Cytochem. 43, 345-345 (1995).</li>
<li>Levine, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Allergic+adenophypophysitis%3A+new+experimental+disease+of+the+pituitary+gland%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Allergic adenophypophysitis: new experimental disease of the pituitary gland.</a> Science. 158, 1190-1191 (1967).</li>
<li>Yoon, J. W., Choi, D. S., Liang, H. C., Baek, H. S., Ko, I. Y., Jun, H. S., Gillam, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+an+organ-specific+autoimmune+disease%2C+lymphocytic+hypophysitis%2C+in+hamsters+by+recombinant+rubella+virus+glycoprotein+and+prevention+of+disease+by+neonatal+thymectomy%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virology%22%5BJournal%5D)">Induction of an organ-specific autoimmune disease, lymphocytic hypophysitis, in hamsters by recombinant rubella virus glycoprotein and prevention of disease by neonatal thymectomy.</a> Journal of Virology. 66, 1210-1214 (1992).</li>
<li>Davis, J. R., McMahon, R. F., Lowenstein, P. R., Castro, M. G., Lincoln, G. A., McNeilly, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adenovirus-mediated+gene+transfer+in+the+ovine+pituitary+gland+is+associated+with+hypophysitis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Endocrinol%22%5BJournal%5D)">Adenovirus-mediated gene transfer in the ovine pituitary gland is associated with hypophysitis.</a> J Endocrinol. 173, 265-271 (2002).</li>
<li>Rotondo, F., Quintanar-Stephano, A., Asa, S. L., Lombardero, M., Berczi, I., Scheithauer, B. W., Horvath, E., Kovacs, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adenohypophysitis+in+rat+pituitary+allografts%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Exp+Pathol%22%5BJournal%5D)">Adenohypophysitis in rat pituitary allografts.</a> Int J Exp Pathol. , (2010).</li>
</ol>

Нет конфликта интересов объявлены.

Четыре методы были зарегистрированы, чтобы побудить гипофизит у экспериментальных животных. Методике, описанной в этой статье, то есть введение гипофиза белки смешать с адъювантом Фрейнда с, является старейшим, начиная с 1967 года 6, и был улучшен в последнее время 1. Другие методы инъекции растворимого гликопротеинов вируса краснухи в 1992 году 7, стереотаксической инъекции аденовируса прямо в гипофиз, в 2002 году 8, и трансплантация гипофиза с одной крысы деформации при поче...

<table><tbody><tr><td>мыши линии SJL (The Jackson Laboratories)</td><td></td><td>запас 000686</td><td></td></tr><tr><td>2,2,2-трибром&amp;#8211;триэтанол (Авертин)</td><td>TCI America</td><td>T-1420</td><td></td></tr><tr><td>Бекстед&amp;rsquo;фиксатор s</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

Индукция экспериментального аутоиммунного гипофизит в sjl Мыши

Induction of Experimental Autoimmune Hypophysitis in SJL Mice

Аутоиммунные гипофизит могут быть воспроизведены экспериментально инъекции гипофиза белки смешать с адъювантной в чувствительные мышей 1. Мышь модели позволяют исследовать как болезни разворачиваться, часто обеспечивая хорошее реплику одного и того же процессы, происходящие в организме человека. Для некоторых аутоиммунных заболеваний, как диабет типа 1А, Есть модели (NOD мыши), которые спонтанно развиваться болезнь похожа на человека коллегой. Для многих других аутоиммунных заболеваний, однако, модель должна быть вызвана экспериментально. Общий подход в этом отношении является для введения мышь с доминирующей антигена происходит от органов изучается. Например, исследователи заинтересованы в аутоиммунный тиреоидит вводят мышам с тиреоглобулина 2, и тех, кто интересуется миастения вводить их с рецептором ацетилхолина 3. Если аутоантиген для конкретного аутоиммунного заболевания неизвестна, исследователи вводят неочищенный экстракт белка из органов мишенью аутоиммунной реакции. Для аутоиммунной гипофизит, патогенных аутоантиген (ы) еще предстоит идентифицировать 4, и, таким образом сырой гипофиза подготовки белок используется. В этом видео статье мы покажем, как вызвать экспериментальный аутоиммунный гипофизит в SJL мышей.

Это видео показывает, как вызвать аутоиммунные гипофизит в SJL мышей и как оценить ее тяжесть по гистопатологии.

Индукция экспериментального аутоиммунного гипофизит в SJL Мыши

Аутоиммунный гипофизит может быть воспроизведен экспериментально путем введения восприимчивым мышам белков гипофиза, смешанных с адъювантом1. Мышь...

Аутоиммунный гипофизит характеризуется увеличением гипофиза и дефицитом одного или нескольких гипофизарных гормонов. Причинные аутоантигены остаются неизвестными. В сопроводительном видео демонстрируется протокол приготовления иммуногена из гипофиза мыши, который будет использован здесь для создания мышиной модели, имитирующей аутоиммунный лимфоцитарный гипофизит у человека.Иммуноген гипофиза вводят мышам чувствительной линии. Затем инъекцию повторяют через семь дней. Через 14 дней после введения собирают кровь для исследования биомаркеров. На 28-й день у эвтаназированных мышей извлекают гипофизы, которые затем подвергают секционированию и окрашиванию для определения степени лейкоцитарной инфильтрации.Аутоиммунный гипофизит — это заболевание, которое находит все большее признание в медицине; его бывает трудно отличить от других несекретирующих гормоны образований в области седла турецкого. Хотя болезнь была впервые описана около 50 лет назад, аутоантигены, распознаваемые иммунной системой пациента при аутоиммунном гипофизите, оставались неизвестными. В 2008 году мы опубликовали результаты разработки модели на мышах, которая точно воспроизводит человеческую болезнь, имитацию которой она призвана обеспечить.Данная модель мыши может быть использована для выявления вовлеченных аутоантигенов гипофиза, а также для более детального изучения патогенеза и естественного течения гипофизита. Модель основана на инъекции белков гипофиза мыши восприимчивой линии, например, линии SJL. Эти белки необходимо смешать с сильным адъювантом для создания локального воспалительного фона, который в конечном итоге индуцирует появление аутореактивных лимфоцитов к гипофизу.Сначала в лимфатических узлах, дренирующих место инъекции, а затем в гипофизе. Модель требует введения относительно больших количеств белков гипофиза — в общей сложности 2 мг на мышь. Это говорит о том, что целевой аутоантиген или аутоантигены присутствуют в гипофизе в ничтожно малых количествах. Инъекция правильно подготовленной эмульсии имеет решающее значение для индукции заболевания, так как она обеспечивает медленное и непрерывное высвобождение белков гипофиза в местах введения, что в конечном итоге способствует генерации и активации гипофиз-специфических лимфоцитов.В сопроводительном видео представлен метод приготовления иммуногена из гипофиза. Гипофизы, выделенные из эвтаназированных мышей, гомогенизируют и очищают с помощью центрифугирования при низких скоростях. Количественный анализ белковой смеси проводят с помощью колориметрического BCA-анализа, а качественный — методом полиакриламидного гель-электрофореза.Затем водный гомогенат белка смешивают с масляным адъювантом, содержащим инактивированные бациллы mycobacterium tuberculosis, для получения гипофизарной эмульсии. После приготовления эмульсии, как показано в сопровождающем видео, извлеките микроэмульсионную иглу из шприца объемом 1 мл и установите иглу 25-го калибра. Для каждой мыши, которой будет сделана инъекция, требуется 100 µL гипофизарной эмульсии.После анестезирования мыши с помощью Everton убедитесь в отсутствии реакции на щипок за палец ноги, затем подкожно введите 50 µL эмульсии в область левой дорсальной части задней конечности. Убедитесь, что кончик иглы полностью находится под кожей и эмульсия не вытекает из места инъекции. Затем введите 50 µL в правую паховую область.Снова убедитесь, что содержимое не вытекает. Обратите внимание, что эмульсия имеет беловатый цвет, и после инъекции ее может быть трудно различить на фоне белого меха мыши линии SGL L. Поместите мышь обратно в клетку и наблюдайте за ее состоянием в период восстановления.Ежедневно наблюдайте за введенными мышами в течение первых трех дней после инъекции, чтобы убедиться в отсутствии выраженного дистресса. Адъювант обладает провспалительным действием, так как содержит инактивированные бактерии m tuberculosis. На седьмой день повторите инъекцию на противоположных анатомических сторонах.Введите 50 µL в область правой дорсальной части задней конечности и 50 µL в левую паховую область. Наблюдайте за мышью, так как оценка результатов эксперимента будет проводиться после возникновения иммунного ответа. Кровь является наиболее часто используемой тканью для оценки результатов эксперимента, пока мыши еще живы.Кровь регулярно берут через 14 дней после первой иммунизации для измерения уровней антител к гипофизу в сыворотке или других маркеров, таких как цитокины и хемокины. Чтобы взять кровь у живой мыши, надежно зафиксируйте животное, удерживая его за загривок, и найдите заднюю часть челюстной кости. Как только это место будет определено, проколите подчелюстной сосудистый пучок четырехмиллиметровым ланцетом.Из места прокола начнет выделяться кровь. Соберите шесть капель крови в микроцентрифужную пробирку. Очистите место прокола влажным бумажным полотенцем, чтобы остановить кровотечение.Поместите пробирки с кровью в центрифугу и центрифугируйте при 2000 G в течение 20 минут. В результате центрифугирования клетки крови осядут в осадок, отделяясь от сыворотки. Перенесите сыворотку в новую микроцентрифужную пробирку.Храните сыворотку при температуре -80 °C до востребования. Иммунизированным мышам требуется примерно один месяц для развития полноценного аутоиммунного гипофизита. Поэтому мышей обычно забивают через 28 дней после первой иммунизации.После вскрытия черепа аккуратно поднимите головной мозг и отклоните его назад, чтобы обнажить гипофиз. Пораженный гипофиз выглядит отечным и более плотно прикрепленным к окружающим мозговым оболочкам. Кончиком острых пинцетов осторожно обведите гипофиз, чтобы отделить его от мозговых оболочек.Как только гипофиз начнет свободно перемещаться на этой клиновидной кости, захватите один конец железы пинцетом и осторожно поднимите её с этой кости. Поместите ткань в микроцентрифужную пробирку, содержащую один миллилитр раствора Бодда (фиксатора на основе цинка), и фиксируйте железу в течение ночи при комнатной температуре. На следующий день перенесите гипофиз на кусочек линзовой бумаги.Оберните гипофиз линзовой салфеткой и поместите его в гистологическую кассету. Подготовьте образец путем инкубации в растворах спирта возрастающей концентрации, а затем в ксилоле. Извлеките линзовую салфетку и поместите гипофиз в металлическую форму.Затем залейте гипофиз парафином. Поместите кассету с тканью в форму и заполните ее дополнительным количеством парафина. В завершение поместите всю конструкцию на лед, чтобы парафин затвердел.После затвердевания парафина с помощью микротома изготовьте срезы толщиной 5 мкм. Перенесите срезы на предметное стекло. Соберите не менее пяти непоследовательных срезов с каждой гипофизарной железы мыши на одном стекле.Окрасьте срезы гематилином и эозином с помощью автоматической станции окрашивания тканей. Изучите стекла под световым микроскопом для сбора результатов. Основным признаком гипофизита в гипофизе является инфильтрация лимфоцитами, которые выглядят как мелкие синие клетки, проникающие сквозь паренхиму гипофиза по отдельности или в виде скоплений.Лимфоциты связаны с различной степенью разрушения нормальных эндокринных клеток гипофиза. Срез с наиболее выраженной лимфоцитарной инфильтрацией и разрушением гипофиза выбирается для оценки двумя исследователями, не знающими об условиях эксперимента. Оценка основывается на субъективной estimation степени повреждения.Оценка ноль указывает на нормальное состояние гипофиза или на то, что лимфоциты и другие гемопоэтические мононуклеарные клетки встречаются редко. Оценка один означает, что мононуклеарная инфильтрация занимает от 2 до 20% общей площади передней доли гипофиза. Оценка два означает, что мононуклеарная инфильтрация занимает от 20 до 30% общей площади передней доли гипофиза.Балл три означает, что мононуклеарная инфильтрация занимает от 30 до 50% общей площади передней доли гипофиза. Балл четыре указывает на то, что мононуклеарная инфильтрация занимает от 50 до 90% общей площади передней доли гипофиза, а балл пять означает, что мононуклеарная инфильтрация занимает почти всю площадь передней доли гипофиза. После освоения методики введение иммуногена одной мыши может быть выполнено за 15 минут.Сбор периферической крови одной мыши занимает пять минут, а подготовка стекол для гистопатологического исследования — шесть часов при проведении процедуры иммунизации. Важно внимательно следить за состоянием здоровья мыши после применения анестезии и инъекции иммуногена. Кроме того, проводится гистопатологический анализ гипофиза.Данная процедура может быть использована для получения широкого спектра экспериментальных результатов с помощью различных методов, таких как оценка субпопуляций инвокационных клеток в дренирующих лимфатических узлах методом проточной цитометрии. Метод иммунизации тканевым экстрактом для индукции аутоиммунного заболевания открывает исследователям в области аутоиммунитета путь к выявлению ключевых событий в патогенезе заболевания. После просмотра данного видео зритель должен получить четкое представление о том, как проводить иммунизацию мышей для индукции экспериментального аутоиммунного гипофизита, а также о том, как оценивать частоту возникновения и тяжесть данного процесса.Не забывайте, что работа с микротомными лезвиями может быть опасной. В связи с этим следует всегда соблюдать меры предосторожности, такие как использование перчаток и работа при достаточном освещении.

induction-of-experimental-autoimmune-hypophysitis-in-sjl-mice

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Иммунология и инфекции

Замедленного типа гиперчувствительности (DTH) является воспалительная реакция опосредована CCR7-эффекторных памяти T (ПЭМ) лимфоцитов. Здесь мы показываем, как активировать антиген-специфические клетки ТЕМ, вызывают приемные DTH у крыс Льюиса и контролировать воспалительную реакцию.

Индукция и мониторинг приемных гиперчувствительности замедленного типа у крыс

Аутоиммунные гипофизит могут быть воспроизведены у мышей путем введения экстракта мыши белки гипофиза.

Подготовка Мышь гипофиза Иммуноген для индукции экспериментального аутоиммунного гипофизит

Видео демонстрирует индукцию экспериментального аутоиммунного энцефаломиелита в мышиной модели путем введения комбинации гликопротеинов миелина олигодендроцитов и инактивированной Mycobacterium tuberculosis. Модель позволяет исследователям изучать механизмы заболевания и тестировать терапевтические вмешательства.

Индукция экспериментального аутоиммунного энцефаломиелита на мышиной модели

В этом видео мышиная модель рассеянного склероза установлена с использованием экспериментального аутоиммунного энцефаломиелита (EAE). Мышке вводят эмульсию, содержащую нейрональный пептид и адъювант, что вызывает иммунный ответ, который активирует аутореактивные Т-клетки. Затем следует инъекция коклюшного токсина (ПТХ) для увеличения проницаемости гематоэнцефалического барьера, что позволяет автореактивным Т-клеткам проникать в мозг. Эта инфильтрация инициирует сигнальный каскад, который в...

Перенос лимфоцитов bm12 реципиенту C57BL/6 является установленной моделью системной красной волчанки. Здесь мы опишем, как инициировать заболевание с помощью этой модели и как охарактеризовать Т-фолликулярные хелперы, В-клетки зародышевого центра и плазматические клетки с помощью проточной цитометрии.

BM12 Индуцибельная Модель волчанка (СКВ) в C57BL / 6 мышей

В этой рукописи описываются методы индукции и оценки экспериментальной модели аутоиммунного энцефаломиелита (ЭАЭ), а также оценка распределения иммунных клеток и уровней мРНК-цитокинов в лимфатических узлах, селезенке, крови и спинном мозге с использованием проточной цитометрии и количественной ПЦР, соответственно, на различных фазах заболевания.

Индукция экспериментального аутоиммунного энцефаломиелита у мышей и оценка болезни зависимого распределения иммунных клеток в различных тканях

В настоящем докладе излагается простой подход к успешно побудить экспериментальной аутоиммунных неврит (EAN) с использованием миелиновый белок ноль (P0)180-199 пептида в сочетании с полного адъюванта Фройнд и коклюша токсин. Мы представляем современные парадигмы способны точно оценить степень функциональной дефицита и невропатологии, которые происходят в этом EAN.

Простой подход к побудить Экспериментальный аутоиммунный неврит мышей C57BL/6 для оценки функциональных и патологического

Мы описываем in vivo иммунизацию, трансляционную модель гепатита у мышей BALB / c, которая может быть использована для изучения патогенеза аутоиммунного гепатита, вызванного лекарственными средствами, включая половые различия, наблюдаемые при этом заболевании. Мы опишем, как эта модель демонстрирует воспроизводимый анализ с использованием экспериментальных методов in vivo и in vitro.

Индукция лекарственно-индуцированного аутоиммунного гепатита у мышей BALB/c для изучения его патогенных механизмов

Было установлено несколько типов животных моделей тиреоидита Хашимото, а также спонтанного аутоиммунного тиреоидита у мышей NOD. Мыши H-2h4 являются простой и надежной моделью для индукции HT. В этой статье описан этот подход и оценен патологический процесс для лучшего понимания мышиной модели SAT.

Генерация модели спонтанного аутоиммунного тиреоидита мыши

Экспериментальный аутоиммунный энцефаломиелит является одной из наиболее широко используемых мышиных моделей рассеянного склероза. В текущем протоколе мышей C57BL/6J обоих полов иммунизируют пептидом гликопротеина олигодендроцита миелина, что приводит в основном к восходящему парезу хвоста и конечностей. Здесь мы обсудим протокол индукции и оценки ЭАЭ.

Моделирование рассеянного склероза у лиц обоих полов: экспериментальный аутоиммунный энцефаломиелит, индуцированный MOG35-55

В данной работе мы сообщаем о протоколе, устанавливающем мышиную модель ревматоидного артрита (РА) путем адоптивного переноса CD4+ Т-клеток от мышей SKG, обеспечивая быстрый и надежный экспериментальный инструмент для изучения иммунологических механизмов, патологического прогрессирования и разработки новых методов лечения РА.

Адцептивная модель передачи ревматоидного артрита у мышей

Узнайте метод индукции экспериментального аутоиммунного гипофизита у мышей линии SJL с использованием иммуногена гипофиза. Этот протокол позволяет исследовать тяжесть заболевания через гистопатологический анализ инфильтрации лейкоцитами.

Индукция экспериментального аутоиммунного гипофизит в SJL Мыши

Больше видео