RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Эпителий предстательной железы в основном состоит из клеток базального эпителия и эпителия просвета. Монослой базальных клеток образует внешнюю оболочку железы и поддерживает выживание люминальных клеток. И наоборот, люминальные клетки выстилают просвет и секретируют белки, специфичные для простаты.
Чтобы изучить дифференцировку эпителия предстательной железы ex vivo, начните с суспензии клеток базального эпителия предстательной железы. Смешайте суспензию с охлажденной матрицей базальной мембраны в нужном соотношении. Пипетируйте эту смесь рядом с основанием внутренней стенки клетки-репеллентной культуральной пластины. Закрутите пластину, чтобы смесь образовала кольцо по окружности лунки.
Инкубируйте пластину, чтобы матрица затвердела. Дополните культуру предпочтительной средой. Факторы роста в среде поддерживают пролиферацию базальных эпителиальных клеток. В то же время, репеллентная природа чашки для культивирования предотвращает любое прикрепление клеток, стимулируя клетки к образованию трехмерных сфероидов внутри матрицы.
Со временем сфероиды развивают просветы, окаймленные многослойным эпителием. Базальные эпителиальные клетки, выстилающие просвет, в конечном итоге дифференцируются и образуют секреторные люминальные клетки, давая начало трехмерным железистым структурам.
Начните эту процедуру с препарирования базальных и просветных эпителиальных клеток предстательной железы мыши, как описано в текстовом протоколе. Промойте клеточную гранулу в 500 микролитрах мышиной органоидной среды. Затем повторно суспендируйте гранулу при плотности клеток 1000 клеток на микролитр. Для приготовления мастер-смесей смешайте эпителиальные клетки, взвешенные в органоидной среде мыши, с матриксным гелем для получения окончательной смеси, содержащей 25% клеток в среде и 75% матриксного геля. В зависимости от последующего применения, базальные клетки обычно покрываются в концентрации от 100 до 2000 клеток на 80 микролитров, тогда как люминальные клетки покрываются концентрацией от 2000 до 10000 клеток на 80 микролитров.
Для каждой клеточной смеси добавьте 80 микролитров матричного геля на лунку 24-луночного планшета. Пипетируйте каплю на нижнюю половину стенки лунки, избегая при этом прямого контакта с покрытием poly-HEMA. После добавления матричного геля поверните пластину, чтобы смесь ячеек матричного геля образовала кольцо вокруг края лунки. Поместите 24-луночный планшет в инкубатор с 5% CO2 при температуре 37 градусов Цельсия лицевой стороной вверх на 10 минут, чтобы матричный гель частично затвердел.
После инкубации в течение 10 минут переверните 24-луночный планшет вверх дном и инкубируйте еще 50 минут, чтобы матричный гель полностью затвердел. Затем добавьте по 350 микролитров предварительно подогретой органоидной среды для мыши, по каплям, в центр каждой лунки. После добавления среды верните 24-луночный планшет в инкубатор.
Чтобы пополнить органоидную среду мыши, наклоните 24-луночный планшет под углом 45 градусов и аккуратно удалите существующую среду из центра каждой лунки с помощью пипетки P1000, избегая матричного гелевого кольца. Добавьте 350 микролитров предварительно подогретых органоидных сред для мыши, как и раньше. Рекомендуется добавлять больший объем среды к органоидам, культивируемым дольше пяти дней, чтобы предотвратить быстрое истощение ключевых питательных веществ и факторов роста.
Related Videos
08:54
Related Videos
11.1K Views
08:36
Related Videos
11.4K Views
07:21
Related Videos
9.6K Views
03:17
Related Videos
2.8K Views
03:08
Related Videos
5.7K Views
09:23
Related Videos
8.7K Views
08:43
Related Videos
21.2K Views
08:45
Related Videos
17.6K Views
10:38
Related Videos
9.3K Views
11:53
Related Videos
9.2K Views