RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Лизат клеток, или жидкость, содержащая лизированное содержимое клеток, находит применение в последующих процессах, таких как экстракция и анализ белка. Изучение этих дробей позволяет получить информацию о характеристиках и функциях клеток.
Чтобы получить лизаты органоидных белков, начните с культуры органоидов, выращенных в нужной матрице базальной мембраны. Удалите отработанную питательную среду из чашки. Добавьте на матрицу теплые среды, содержащие протеазы. Пипеткой несколько раз выбить матрицу из чашки.
Инкубируйте смесь. Протеолитические ферменты в среде разрушают матрицу и высвобождают органоиды в раствор. Центрифугируйте образец для отделения органоидов от надосадочной жидкости, содержащей фермент
.Ресуспендируйте органоидную гранулу в подходящем буфере для лизиса белка. Инкубируйте образец. Детергенты в буфере разрушают клеточные мембраны органоидов, высвобождая внутриклеточное содержимое в раствор. В то же время белковые ингибиторы в буфере инактивируют любые высвобождающиеся ферменты протеазы и фосфатазы, предотвращая деградацию их белков субстрата.
Далее обработайте смесь ультразвуком, чтобы нарушить работу клеток полностью. Ядерная оболочка разрывает и высвобождает ядерные белки в раствор. Звуковые волны также сдвигают высвобождаемые нуклеиновые кислоты, предотвращая их загрязнение белкового лизата.
Чтобы собрать органоиды, многократно продуйте матричный гель, пипетируя 1 миллилитр предварительно подогретой диспазосодержащей среды непосредственно на матричное гелевое кольцо до тех пор, пока все кольцо не будет смещено. Перенесите вытесненную матричную гелевую органоидную смесь в микроцентрифужную пробирку объемом 1,5 миллилитров. После полного разложения, как описано в текстовом протоколе, добавьте фосфатно-солевой буфер в органоидную гранулу и повторно суспендируйте, осторожно взбивая.
Гранулируйте органоиды центрифугированием при концентрации 800 х г в течение 5 минут при комнатной температуре и удалите надосадочную жидкость с помощью микропипетки. Ресуспендируйте гранулы органоидов в 100 микролитрах буфера для лизиса белка на 10 микролитров объема упакованной клетки. Проведите по экрану для повторного выполнения. Теперь произведите ультразвуковую обработку органоидов, погрузив трубки во влажный лед и осторожно приложив наконечник звукового дисмембранора к внешней стороне микроцентрифужной трубки. Обрабатывайте ультразвуком в течение 40 секунд на частоте 20 кГц, прежде чем приступить к вестерн-блоттингу в соответствии с установленными протоколами.
Related Videos
08:59
Related Videos
8.2K Views
08:15
Related Videos
6.3K Views
09:57
Related Videos
9.8K Views
04:15
Related Videos
304 Views
01:58
Related Videos
510 Views
10:58
Related Videos
31.5K Views
09:09
Related Videos
13.9K Views
11:04
Related Videos
10.1K Views
10:38
Related Videos
9.3K Views
08:36
Related Videos
11.4K Views