$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Внеклеточный матрикс или ВКМ – неклеточный компонент тканевой среды – состоит из сложной сети структурных и регуляторных белков и полисахаридов, секретируемых клетками. ВКМ обеспечивает структурную и биохимическую поддержку клеток и регулирует их рост.
Чтобы подготовить язык из внеклеточного матрикса, начните с взятия свежесобранного мышиного языка. Промойте его этанолом, чтобы удалить липидный слой.
Далее подвергайте его чередованию циклов заморозки и оттаивания. Замораживание способствует внутриклеточному образованию кристаллов льда, в то время как оттаивание тает кристаллы льда, что приводит к нарушению клеточной мембраны.
Теперь подвешивайте язык в растворе антибиотика, чтобы подавить рост бактерий. Впоследствии обработайте орган гипертоническим солевым раствором. При наличии высокой концентрации растворенного вещества вода вытекает из клеток, вызывая их сжатие. Этот этап способствует клеточной гибели и отделению от внеклеточного матрикса.
Инкубируйте язык в неионогенном поверхностно-активном веществе. Поверхностно-активное вещество полностью растворяет клеточные и ядерные мембраны, способствуя выбросу внутриклеточного содержимого в раствор.
Наконец, подвешивайте язык в растворе, содержащем ионы кальция и магния, после чего проводите обработку нуклеазами. Ионы кальция и магния усиливают активность нуклеаз для расщепления любых свободных нуклеиновых кислот в растворе.
Храните децеллюляризированную ткань языка в подходящем буфере до дальнейшей обработки.
После выделения языков у усыпленных мышей согласно текстовому протоколу погрузите ткань в 75% этанол на 3 минуты. Затем переложите каждый язычок в микроцентрифужную пробирку объемом 1,5 миллилитра с 1 миллилитром 10 миллимоларного стерильного PBS. Чтобы провести лизис клеток, заморозьте языки при температуре минус 80 градусов Цельсия на 1 час. Затем разморозьте ткань при комнатной температуре в течение 45 минут. Повторите замораживание-размораживание еще два раза.
Затем в 3,5-сантиметровой или 6-сантиметровой чашке для культивирования, содержащей 75% этанола, с помощью хирургической иглы насадите каждый язык на кусок хирургического шва и с помощью небольшого кусочка стерильной оловянной фольги оберните конец шва. В чашке для культур размером 3,5 или 6 см используйте 3 миллилитра PBS для полоскания каждого языка в течение 30 секунд. Затем в бутылке с широким горлышком приготовьте 90 микрограммов на миллилитр ампициллина в 250 миллилитрах стерильной сверхчистой воды и добавьте перемешивание.
Опустите в бутылку до 5 язычков до тех пор, пока они не окажутся примерно в 2 сантиметрах от дна и затяните крышку так, чтобы часть шва осталась снаружи бутылки. Поместите бутылку на магнитную мешалку на 12 часов. Затем, после инкубации, готовят 250 миллилитров 90 мкг на миллилитр ампициллина в стерильном 1 моляре натрия хлорида. Переложите язычки и перемешайте брусок в бутылку и закрутите крышку. Поместите бутылку на магнитную мешалку на 24 часа.
Для проведения лизиса клеток приготовьте 90 мкг на миллилитр ампициллина в 250 мл стерильного 2% Triton X-100 в PBS. Переложите язычки и перемешивающую планку в бутылку и затяните крышку. Затем помешивайте бутылку в течение 48 часов. После приготовления хлорида кальция и хлорида магния с ампициллином переместите салфетку и перемешайте батончик в бутылку и помешивайте бутылку в течение 24 часов.
Приготовьте 1 миллилитр 300 микромолярной ДНКазы в HBSS в одной микроцентрифужной пробирке для каждого образца языка. Перенесите язычки в трубки с такой же порцией шва, свисающей наружу. Затем инкубируйте ткань при температуре 37 градусов Цельсия в течение 24 часов. Переложите образцы обратно в бутылку с широким горлышком со стерильным PBS с ампициллином и поместите ее на мешалку на 24 часа. После инкубации храните подготовленный язык из внеклеточного матрикса, или ПЭМ, в стерильном PBS при температуре 4 градуса Цельсия до использования.