Культивирование салисфер из ткани слюнных желез: метод получения салисфер из эпителиальных клеток, полученных из слюнных желез человека

0 просмотров4:41 мин • April 30th, 2023

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Салисферы представляют собой in vitro, самоагрегирующие культуры эпителиальных клеток, полученные из слюнной железы. Чтобы культивировать салисферы, начните со взятия ткани слюнных желез человека в культуральную тарелку.

С помощью ножниц измельчите ткань на мелкие кусочки. Затем дополните эти кусочки раствором диссоциации, содержащим коллагеназу и ферменты и инкубируйте. Эти ферменты переваривают внеклеточный матрикс, присутствующий в ткани.

Далее растираем для гомогенизации ткани. На этом этапе эпителиальные клетки и эритроциты высвобождаются в раствор. Затем используйте клеточный фильтр и отфильтруйте гомогенат ткани в свежую коническую трубку, чтобы удалить непереваренные кусочки ткани и мусор. Центрифуга для гранулирования ячеек.

После центрифугирования выбросьте надосадочную жидкость и повторно суспендируйте клеточную гранулу в буфере для лизиса эритроцитов. Этот буфер разрывает эритроциты, присутствующие в клеточной суспензии.

Теперь центрифуга для гранулирования эпителиальных клеток. Ресуспендируйте гранулу в соответствующую среду для роста эпителиальных клеток. Кроме того, подготовьте планшет для культивирования салисферы, покрыв его лункой матрицей с жидкой базальной мембраной или BMM. Инкубируйте, чтобы матрица затвердела.

Наконец, добавьте суспензию эпителиальных клеток в лунки, покрытые BMM. В присутствии питательной среды эпителиальные клетки прикрепляются к слою BMM и пролиферируют в сферические салисферы.

В течение двух-четырех часов после извлечения у пациента на культуральной тарелке с помощью стерилизованных ножниц и хирургических щипцов измельчите ткань слюнной железы на мелкие кусочки размером от 1 до 2 миллиметров. Добавьте 6 миллилитров раствора диспазы/коллагеназы в измельченную салфетку. Затем инкубируйте при температуре 37 градусов Цельсия в течение примерно от 30 минут до одного часа.

Нарушьте работу тканей путем пипетирования с помощью серологической пипетки объемом 5 миллилитров от 15 до 20 раз. Инкубируйте при температуре 37 градусов Цельсия еще от 30 минут до одного часа. Повторите пипетирование и этап инкубации еще два-три раза или до тех пор, пока ткань не станет похожа на кашицу и не сможет легко пройти через отверстие пипетки.

Чтобы покрыть лунки BMM, медленно пипетируйте 500 микролитров размороженного за ночь BMM в каждую лунку 6-луночного планшета. Медленно поворачивайте пластину, чтобы равномерно распределить BMM по лункам. Затем инкубируйте пластины с покрытием при температуре 37 градусов Цельсия в течение не менее 15 минут перед использованием, чтобы BIM затвердел.

Перенесите раствор диспазы/коллагеназы, содержащий гомогенизированную ткань, в 15-миллиметровую коническую трубку. Один раз промойте стенку пластины 6 миллилитрами DPBS, чтобы перенести оставшиеся клетки в коническую трубку. Затем через 70-микрометровое сетчатое сетчатое фильтр отфильтруйте гомогенат в новую 50-миллиметровую коническую трубку, чтобы удалить непереваренную ткань.

Центрифугой процеживают клетки в течение 5 минут при 500 х г. Отсасывайте надосадочную жидкость. Затем ресуспендируйте клеточную гранулу в 10 миллилитрах 1x буфера для лизиса эритроцитов. Выдерживать 5 минут при температуре 37 градусов Цельсия. Затем добавьте от 20 до 25 миллиметров DPBS, чтобы нейтрализовать буфер для лизиса эритроцитов и свести к минимуму лизис клеток слюны.

Центрифугируйте в течение 5 минут при 500 х г. Гранула лейкоцитов указывает на полный лизис всех эритроцитов. Если гранула имеет красный цвет, повторите обработку буфером для лизиса эритроцитов. Аспирируйте надосадочную жидкость и ресуспендируйте гранулу в 1-2 миллилитрах BEGM, а затем перенесите ресуспендированные клетки в лунки с покрытием BMM.

Инкубировать при температуре 37 градусов по Цельсию. После нанесения на BMM клетки формируются в сферические структуры или салисферы в течение двух-трех дней. Клетки могут сохраняться в виде салисфер в течение примерно пяти-семи дней, прежде чем BMM начнет разлагаться, позволяя клеткам получать доступ к пластику и прилипать к нему и расти в виде монослоя.

09:52

Выделение мышью слюнных желез стволовых клеток

Похожие видео

0 Просмотры

11:52

Изоляция базальных клеток и подслизистой Клетки Канальные железы от трахеи мыши

Похожие видео

0 Просмотры

07:15

Изоляция миоэпителиальных клеток от взрослых Мурина Лакрималила и Субмандибулярных желез

Похожие видео

0 Просмотры

09:29

Генетическая модификация и рекомбинации слюнных желез органной культуры

Похожие видео

0 Просмотры

05:56

Манипулируя мышиной слезной железы

Похожие видео

0 Просмотры

08:00

Поколение сфероидов человеческого носа эпителиальных клеток для исследования регулятор трансмембранной проводимости индивидуализированные муковисцидоза

Похожие видео

0 Просмотры

07:38

Лучевая терапия Органотипных культур от подчелюстной и околоушной слюнных желез модели ключ в естественных характеристик

Похожие видео

0 Просмотры

08:03

Изоляция слюнных эпителиальных клеток от слюнных желез человека для роста провитроки как салисферы или монослои

Похожие видео

0 Просмотры

07:49

Трехмерная система культивирования без сыворотки для стволовых клеток слезных желез

Похожие видео

0 Просмотры

07:02

Генерация 3D-сфер и 2D-культур воздушно-жидкостного интерфейса индуцированных человеком плюрипотентных стволовых клеток типа 2 альвеолярных эпителиальных клеток

Похожие видео

0 Просмотры

Последнее обновление: 15 августа 2026