Очистка субпопуляций внеклеточных везикул: методика очистки субпопуляций внеклеточных везикул с помощью ультрацентрифугирования с градиентом плотности

0 просмотров4:27 мин • April 30th, 2023

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Внеклеточные везикулы или ВВ представляют собой наноразмерные, гетерогенные мембраносвязанные везикулы, секретируемые различными клетками, включая опухолевые клетки головного мозга. Малые ВВ представляют собой субпопуляцию, состоящую из эндосомальных и мембранных ВВ.

Чтобы очистить небольшие электромобили, начните с приема предварительно экстрагированных электромобилей, взвешенных в буфере с добавлением сахарозы, который поддерживает однородный раствор и сохраняет структурную целостность электромобилей.

Затем к этому раствору добавьте соответствующий объем йодиксанола - инертной и нетоксичной среды для градиента плотности - для достижения желаемой плотности.

Йодиксанол растворяет загрязняющие белки, которые должны быть удалены позже.

Затем добавьте слои растворов йодиксанола с последовательно уменьшающейся плотностью, чтобы создать прерывистый градиент плотности.

Центрифугируйте пробирку на высокой скорости.

В зависимости от скорости плавучести, более плотные электромобили мигрируют в столь же плотный слой градиентной среды, в то время как менее плотные электромобили мигрируют дальше в более легкий слой, а самые плотные загрязняющие вещества образуют гранулу на дне трубы.

Теперь перенесите небольшие фракции слоев градиента в свежие пробирки, содержащие подходящий буфер.

После этого центрифугируйте пробирки на сверхвысокой скорости в охлажденных условиях.

Во время центрифугирования низкая температура предотвращает тепловое повреждение электромобилей, вызванное высокой скоростью.

После того, как чистые электромобили скатятся, удалите надосадочную жидкость. Восстановите суспендию EV в соответствующем буфере и приступайте к характеризации и протеомикальному анализу.

Сначала добавьте 1,5 миллилитра 60% йодиксанола к 1,5 миллилитрам буфера сахарозы/триса, который содержит EV, чтобы создать окончательный раствор, содержащий 30% йодиксанола. Пипеткой вверх и вниз несколько раз нужно тщательно перемешать раствор.

Переложите этот раствор на дно ультрацентрифугирующей пробирки объемом 5,5 миллилитров. Затем смешайте 60% йодиксанол со сверхчистой водой, чтобы приготовить не менее 1,5 миллилитров 20% и 10% раствора йодиксанола.

С помощью шприца и иглы 18G отмерьте 1,3 миллилитра 20% раствора йодиксанола и осторожно нанесите его поверх нижнего градиента.

Держите скос иглы в контакте с внутренней частью трубки чуть выше мениска и добавляйте раствор по каплям, чтобы избежать смешивания слоев на границе раздела плотности.

Затем нанесите слой 1,2 миллилитра 10% раствора йодиксанола поверх 20% слоя, используя ту же технику. Тщательно отбалансируйте и загрузите ультрацентрифугирующие пробирки в роторные ведра.

Установите скорости ускорения и замедления ротора качающегося ковша на минимальные скорости и центрифугируйте на 268 000 x g и при 4 градусах Цельсия в течение 50 минут.

Во время центрифугирования образца пометьте десять 1,5-миллилитровых микроцентрифужных пробирок для каждого образца, которые будут соответствовать фракциям от 1 до 10 градиента плотности.

После завершения центрифугирования аккуратно извлеките пробирки из ведер ротора и поместите их в устойчивый держатель. Пипеткой 10 серийных фракций по 490 микролитров от верха градиента в соответствующие пробирки.

С помощью рефрактометра измерьте показатели преломления фракций. Затем переложите каждую фракцию в чистую 12-миллилитровую ультрацентрифужную пробирку.

Добавьте 5 миллилитров 1x PBS в каждую пробирку и медленно перемешайте пипеткой вверх и вниз. Добавьте еще 6 миллилитров 1x PBS в верхнюю часть тюбика и снова тщательно перемешайте.

Ультрацентрифугируйте пробирки при давлении 100 000 x g и 4 градусах Цельсия для повторного гранулирования мелких пузырьков. Сцедите надосадочную жидкость и простультируйте пробирки насухо перед лизисом везикул для анализа белка или суспендированием EVs для морфологического анализа.

09:18

Изоляция внеклеточного Vesicles из мышиных Бронхоальвеолярный лаваж жидкости методом центрифугирования ультрафильтрации

Похожие видео

0 Просмотры

07:15

Очистка высокой урожайности Внеклеточных Препаратов Весикл вдали от вируса

Похожие видео

0 Просмотры

08:27

Изоляция и характеристика внеклеточных пузырьков, производимых железо-ограниченным имикобактериями

Похожие видео

0 Просмотры

03:15

Separation and Enrichment of Extracellular Vesicles in the Presence of Virions

Похожие видео

0 Просмотры

04:13

Экстракция внеклеточных везикул: метод выделения внеклеточных везикул из образцов цельных тканей с помощью дифференциального центрифугирования

Похожие видео

0 Просмотры

09:03

Извлечение внеклеточного Vesicles из цельной ткани

Похожие видео

0 Просмотры

09:56

Масштабируемое выделение и очистка внеклеточных везикул от кишечной палочки и других бактерий

Похожие видео

0 Просмотры

08:44

Выделение и характеристика цианобактериальных внеклеточных везикул

Похожие видео

0 Просмотры

10:46

Эксклюзионная хроматография для отделения внеклеточных везикул от кондиционированных клеточных культуральных сред

Похожие видео

0 Просмотры

10:16

Оптимизация параметров проточной цитометрической сортировки для высокопроизводительной изоляции и очистки малых внеклеточных везикул

Похожие видео

0 Просмотры

Последнее обновление: 15 августа 2026