$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
При патологических состояниях активированная микроглия – специализированные макрофаги головного мозга – способствуют устранению болезнетворных микроорганизмов и клеточного мусора. Эти микроглии экспрессируют уникальные рецепторы, которые отличают их от других макрофагов.
Чтобы выделить микроглию, начните с культуры клеток мозга, полученной из трансгенных рыбок данио, экспрессирующих специфические флуоресцентные молекулы в различных типах клеток.
Культура содержит смесь нейронов – экспрессирующих красную флуоресценцию, макрофагов – экспрессирующих зеленую флуоресценцию, и нефлуоресцентной микроглии.
Теперь добавьте блокирующий реагент и инкубируйте культуру с прерывистым перемешиванием. Блокирующий реагент связывается с неспецифическими участками на клетках и снижает фоновый сигнал.
Далее добавляем первичные антитела и инкубируем. Эти антитела связываются со специфическими рецепторами, экспрессируемыми на поверхности микроглии.
Центрифугируйте культуру и удалите надосадочную жидкость, содержащую несвязанные антитела. Повторно суспендируйте клеточную гранулу в свежей среде.
Впоследствии добавьте флуоресцентно-красящие конъюгированные вторичные антитела и инкубируйте. Эти антитела связываются с первичными антителами и придают красный цвет комплексу микроглия-антитело.
Центрифугируйте культуру и удалите несвязанные антитела. Повторно суспендируйте гранулу в свежей среде.
Отфильтруйте ячейки, чтобы удалить мусор.
Используя сортировщик флуоресцентных активированных клеток или FACS, отсортируйте популяцию клеток микроглии на основе их размера и флуоресценции.
Выделенная микроглия может быть использована для дальнейших применений.
Для иммуноокрашивания микроглии используйте 0,3 миллилитра среды А плюс 2% NGS для ресуспендирования клеточной гранулы. Затем разделите клетки между тремя 1,5-миллилитровыми пробирками: одну для неокрашенных клеток для измерения аутофлуоресценции, одну для измерения неспецифического связывания вторичного антитела с микроглией, а третью в качестве теста.
Во все пробирки добавьте 1% Low Endotoxin, Azide-Free (LEAF), чтобы блокировать взаимодействие CD16/CD32 с Fc-доменом иммуноглобулинов. Затем инкубируйте клетки в течение 10 минут с легким помешиванием каждые 5 минут.
Далее в третью пробирку добавьте антитело 4С4 и инкубируйте его в течение 30 минут при слабом перемешивании каждые 10 минут. Затем вращайте трубки при температуре 300 x g и 4 градусах Цельсия в течение 10 минут.
После удаления надосадочной жидкости промойте гранулу один раз 0,5 миллилитрами среды А плюс 2% NGS, прежде чем снова крутить пробирки. Повторно суспендируйте клеточную гранулу с 0,5 миллилитрами среды А плюс 2% NGS, затем добавьте 1% LEAF и инкубируйте клетки в течение 10 минут с легким перемешиванием каждые 5 минут.
В пробирки 2 и 3 добавьте вторичные антитела и поместите пробирки в темноту. После вращения пробирок и выброса надосадочной жидкости используйте 0,5 миллилитра среды А плюс 2% NGS для двукратной промывки образцов, затем повторно суспендируйте клеточные гранулы 1 миллилитром среды А плюс 2% NGS.
Пропустите клеточную суспензию через 35-микронный колпачок фильтра и перенесите ее в холодные 5-миллиметровые трубки FACS на льду, защищенном от света. Наконец, проведите сортировку FACS и экстракцию РНК в соответствии с текстовым протоколом.