$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Многофотонная микроскопия позволяет получать трехмерные изображения с высоким разрешением флуоресцентно меченой сосудистой сети в живой ткани. Начните с мыши, находящейся под наркозом, в положении лежа на спине.
Осторожно введите в его хвостовую вену суспензию конъюгированного флуорофора-декстрана. Введенные молекулы проходят через кровоток и достигают таких органов, как печень. Флуоресцентный краситель помечает сосудистую сыворотку, способствуя визуализации кровеносных сосудов, в то время как прикрепленный высокомолекулярный дестран предотвращает их вытекание из сосудистой системы.
Подготовьте область живота мыши. Перенесите его на основание рамки для визуализации органа, оснащенной всасывающим кольцом, содержащим линзу для визуализации, подключенным к вакуумному насосу. Надрезать по его нижней грудинной границе, чтобы обнажить печень.
Направляя всасывающее кольцо к печени, подайте вакуум или отрицательное давление, которое способствует адсорбции печени к линзе в аспирационном кольце. Этот шаг уменьшает артефакты движения во время визуализации. Перенесите рамку изображения, содержащую мышь, на предметный столик многофотонного лазерного сканирующего микроскопа.
Покройте линзу физиологическим раствором, который действует как иммерсионная среда для получения изображений с высоким разрешением. Во время визуализации сфокусированные длинноволновые фотоны с более низкой энергией обеспечивают более глубокое проникновение в ткани и возбуждают флуорофоры в кровеносных сосудах в фокусной точке, вызывая излучение и детектирование флуоресцентных сигналов.
Серия сканирований выбранных оптических срезов на разной глубине воссоздает полное трехмерное изображение кровеносных сосудов внутри ткани.
После подтверждения отсутствия рефлекса выпрямления у 8-недельного самца мыши C57BL/6, находящегося под наркозом, протрите хвост мыши 75% спиртом и с помощью шприца объемом 1 микролитр, оснащенного иглой 30-го калибра, введите 10 миллиграммов на миллилитр свежеприготовленного Rhodamine B isothiocyanate-dexin в 100 микролитры Rhodamine B isothiocyanate-dexin в хвостовую вену.
Когда весь раствор будет доставлен, с помощью ватного тампона надавите на место прокола и используйте марлю, смоченную стерильной водой, чтобы смочить шерсть живота. Бритвой побрейте живот, делая движения по направлению шерсти, и положите мышь на грелку, продезинфицированную спиртом при температуре 37 градусов Цельсия.
Чтобы зафиксировать печень мыши с помощью рамки для визуализации органов тела, сначала поместите чистую присоску диаметром 5 мм в неподвижное положение и протрите грелку и присоску 75% спиртом. Подсоедините присоску к шлангу вакуумного насоса и включите насос.
На 75% стерилизованном спиртом столе хирургическими ножницами отрежьте 2 сантиметра кожи от нижней грудинной границы мыши и обнажите печень. Поместите мышь и грелку на держатель рамы корпуса и отрегулируйте приспособление для визуализации органов так, чтобы присоска могла удерживать печень. Затем используйте отрицательное давление от 30 до 35 кПа для отсасывания, чтобы печень прикрепилась к чаше
.
Чтобы настроить многофотонный лазерный сканирующий микроскоп, включите микроскоп и выберите объектив 60x. Закрепите рамку и мышь под объективом и добавьте каплю обычного физиологического раствора в чашку, достаточно большую, чтобы покрыть линзу. Отрегулируйте объектив так, чтобы объектив касался только обычного физиологического раствора, и включите программное обеспечение лазера.