$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Отложение неправильно свернутых белковых агрегатов – амилоидов во внеклеточном тканевом пространстве является признаком различных протеопатических заболеваний. Эти амилоиды состоят из бета-листов, которые выравниваются перпендикулярно фибриллярной оси, образуя перекрестные бета-листовые повторы.
Чтобы обнаружить амилоидные отложения с помощью гептамер-формилтиофеновой уксусной кислоты или hFTAA, берут фиксированный формалином, залитый парафином срез ткани, содержащий амилоидные отложения.
Обработайте срезы ксилолом для депарафинизации ткани для улучшения доступности пятна на последующих этапах. Добавьте несколько капель окрашивающего раствора hFTAA на участок ткани и инкубируйте, чтобы краситель проник в ткань.
hFTAA содержит семь сопряженных серосодержащих тиофеновых звеньев и концевых карбоксильных групп, присоединенных к тиофеновой магистрали. Эти свойства обеспечивают гибкость несвязанного красителя. Во время инкубации конечные карбоксильные группы красителя связываются с положительно заряженными аминокислотными остатками, выстилающими гидрофобную канавку бета-листа посредством электростатических взаимодействий.
Следовательно, происходит конформационное изменение, которое снижает структурную гибкость связанного красителя hFTAA. Это увеличивает квантовый выход флуоресценции связанного красителя — относительное отношение поглощенных и испускаемых фотонов. Этот процесс помогает улучшить визуализацию амилоидов.
Понаблюдайте за предметным стеклом под флуоресцентным микроскопом. Наличие желто-красных флуоресцентных пятен свидетельствует о наличии амилоидов в срезах тканей.
Приготовьте люминесцентный конъюгированный раствор олиготиофена путем ресуспендирования лиофилизированного hFTAA в двух миллимолярных гидроксидах натрия для получения исходного раствора 1 мг/мл. Переложите исходный раствор в стеклянный флакон и храните при температуре четыре градуса Цельсия.
Если формалин фиксированный, залитый парафином, срезы используются, депарафинизируются в ксилоле в течение ночи. В день окрашивания погрузите секции в последовательные ванны с содержанием 99% этанола, 70% этанола, dH2O и PBS на 10 минут, каждый раз. Затем дайте участкам ткани высохнуть в условиях окружающей среды.
Пока ткань сохнет, приготовьте рабочий раствор hFTAA, разбавив бульон 1:10 000 в PBS. Когда ткань высохнет, добавьте капли рабочего раствора hFTAA на каждый участок ткани, чтобы покрыть его. Выдерживать 30 минут при комнатной температуре.
Смойте раствор для окрашивания 500 микролитрами PBS, а затем погрузите горку в ванну PBS на 10 минут.
После того, как секция высохнет в условиях окружающей среды, выполните монтаж с использованием флуоресцентной монтажной среды. Дайте монтажному материалу осесть на ночь.
Обнаружение амилоида может быть выполнено непосредственно после монтажа, или даже без монтажа. Однако, если целью эксперимента является сбор высококачественной спектральной информации, предпочтительна ночная инкубация.