JoVE Encyclopedia of Experiments
Биологические методы
0 просмотров • 4:38 мин • July 8th, 2025
Бактерии вырабатывают нуклеотидные вторые мессенджеры, NSM – внутриклеточные сигнальные молекулы – в ответ на соответствующие раздражители. Эти молекулы связываются с белками-мишенями и регулируют функции бактерий.
Для идентификации этих белков-мишеней с помощью дифференциального радиального капиллярного действия лигандного анализа берут многолуночный планшет с лизатом бактериальных клеток, содержащим растворимые белки. Эти белки получены из различных бактериальных клонов, экспрессирующих отдельные ORF - открытые рамки считывания - в геноме, гарантируя, что каждая лунка имеет отдельный белок.
Добавьте смесь тетра- и пентафосфатов гуанозина - НСМ, меченных радиоактивным фосфором. Эти молекулы связываются с белками-мишенями в лизате. С помощью булавочного инструмента соберите равное количество жидкости из каждой лунки. Поместите средство на нитроцеллюлозную мембрану, чтобы жидкость отложилась в виде пятен.
Белки-мишени связываются с мембраной посредством нековалентных взаимодействий, предотвращая их диффузию. Это изолирует связанные радиоактивно меченые NSM в центральной точке нанесения. Свободные NSM радиально диффундируют с жидкой фазой за счет капиллярного действия.
Используйте люминофорную визуализацию для обнаружения радиоактивных сигналов и получения цифрового изображения пятен. Определите пятна с помощью двух кругов. На внешнем изображена периферия диффузных НСМ. Внутренний круг представляет собой изолированные NSM.
Рассчитайте фракцию связывания - интенсивность радиоактивности, обнаруженной из внутреннего круга, над общей радиоактивностью диффузионного пятна. Найдите пятна с высокой долей связывания, чтобы идентифицировать лунки с NSM-связанными белками-мишенями.
Для скрининга целевых белков методом DRaCALA добавьте 20 микролитров размороженных цельноклеточных лизатов в отдельные лунки 96-луночного микротитровального планшета с V-образным дном и добавьте в каждую лунку по 2,5 единицы эндонуклеазы Serratia marcescens. Через 15 минут при температуре 37 градусов Цельсия поместите лизаты на лед на 20 минут.
Затем смешайте равные объемы фосфора 32-меченного пентафосфата гуанозина и тетрафосфата гуанозина и добавьте в смесь 1x буфер для лизиса #1 для получения четырех-наномолярного раствора пентафосфата гуанозина.
С помощью многоканальной пипетки и отфильтрованных наконечников пипетки смешайте 10 микролитров смеси гуанозина пентафосфата с клеточным лизатом для пятиминутной инкубации при комнатной температуре.
В конце инкубации трижды промойте штифтовый инструмент 96X в 0,01% растворе неионогенного моющего средства в течение 30 секунд, после чего высушите его в течение 30 секунд на бумажном полотенце за одну стирку, прежде чем поместить штифтовый инструмент в 96-луночный планшет для образцов. Через 30 секунд поднимите штифтовый инструмент прямо вверх и поместите его прямо вниз на нитроцеллюлозную мембрану на 30 секунд.
После пяти минут высыхания поместите нитроцеллюлозную мембрану в прозрачную пластиковую папку для хранения люминофорного экрана и визуализации с помощью люминофорной визуализации, как показано на рисунке.
Чтобы количественно оценить и идентифицировать потенциальные целевые белки в аналитическом программном обеспечении, связанном с люминофорным формирователем изображений, откройте файл .gel визуализированных планшетов.
Чтобы определить точки для анализа, используйте функцию "Анализ массивов", чтобы настроить сетку из 12 столбцов на 8 строк. Чтобы очертить внешний край всего пятна, определите большие круги. Экспортируйте "Объем+Фон" и "Область" определенных больших кругов в таблицу, чтобы описать маленькие внутренние точки. Уменьшите размер заданных кругов.
Экспортируйте "Объем+Фон" и "Область" определенных маленьких кругов и сохраните все данные в таблице. Расположите круги так, чтобы они перекрывались пятнами по мере необходимости, изменяя их размер, чтобы они были немного больше, чем фактические пятна.
Используйте уравнение для вычисления дробей связывания в таблице и построения графика данных. Затем определите потенциальные связывающие белки в лунках, которые демонстрируют высокие фракции связывания по сравнению с большинством других лунок.
В данной статье рассматривается идентификация белков-мишеней в бактериях, которые связывают нуклеотидные вторичные посредники (NSM), с использованием метода дифференциального радиального капиллярного действия лиганда (DRaCALA). Методология предполагает использование лизатов бактериальных клеток и радиоактивно меченных NSM для обнаружения взаимодействий связывания.
Метод DRaCALA позволяет осуществлять высокопроизводительную идентификацию внутриклеточных белков, связывающих нуклеотидные вторичные посредники, непосредственно из бактериальных лизатов, минуя этап очистки белков. Это ускоряет валидацию мишеней при поиске противомикробных средств, предоставляя количественные данные о связывании для снижения рисков при проверке терапевтических гипотез. Данный анализ поддерживает ранний скрининг сигнальных путей, имеющих критическое значение для вирулентности и персистенции бактерий.
Метод DRaCALA применяется на ранних этапах разработки для оптимизации идентификации ведущих соединений путем подтверждения взаимодействия с мишенью перед проведением скрининга соединений.
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Последнее обновление: 29 августа 2026