Иммунофлуоресцентная микроскопия для анализа двухцепочечных разрывов ДНК

0 просмотров5:23 мин • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Для визуализации специфических белков ответа на повреждение ДНК при двухцепочечном разрыве ДНК, DSB, участках с помощью иммунофлуоресцентной микроскопии, начинают со предметных стекол, содержащих монослои мононуклеарных клеток человека с DSB. Фиксируют клетки параформальдегидом.

Обработайте неионогенным моющим средством, проникающим мембранами для доступа к внутриклеточным мишеням. Добавьте белоксодержащий блокирующий раствор, блокирующий неспецифические сайты связывания клеток. Инкубируйте с первичными антителами, которые связываются с белками целевого ответа.

Обрабатывайте смесью вторичных антител, помеченных различными флуорофорами, чтобы специфически связываться с их соответствующими первичными антителами, прикрепленными к белкам. Окрашивание ДНК с помощью DAPI. Добавьте монтажную среду; Установите покровное стекло.

Во время флуоресцентной микроскопии падающий световой пучок достигает возбуждающего фильтра, пропуская свет с определенной длиной волны возбуждения. Достигая дихроичного зеркала — светоделителя — возбуждающий свет избирательно отражается в сторону линзы объектива, которая фокусирует свет на образце.

Падающий возбуждающий свет возбуждает электроны флуорофора до более высокого энергетического состояния. Возвращаясь в основное состояние, электроны излучают свет на более длинной длине волны, собираемый линзой объектива и возвращающийся обратно в дихроичное зеркало.

Зеркало позволяет излучаемому флуоресцентному свету проходить через эмиссионный фильтр, который позволяет только желаемому флуоресцентному свету достигать детектора. Обработайте изображения. Проанализируйте флуоресцентные очаги разного цвета, чтобы визуализировать ко-локализацию белков ответа на повреждение ДНК в сайте DSB.

Получить два цитоспина с мононуклеарными клетками образцов пациента путем центрифугирования 1 х 105 клеток для каждого препарата. Зафиксируйте клетки 200 микролитрами 4% PFA на 10 минут.

После фиксации аккуратно трижды промойте клетки 30 миллилитрами PBS по пять минут каждая на шейкере. Затем проникните в клетки 200 микролитрами 0,1% октоксинола-9 в течение 10 минут. Аккуратно промойте клетки три раза 30 миллилитрами 5% блокирующего раствора в течение пяти минут каждая на лабораторном шейкере. Заблокируйте клетки в 30 миллилитрах свежего 5% блокирующего раствора на один час.

Фиксация и пермеабилизация клеток 4% параформальдегида и 0,1% октоксинола-9 отчетливо сохранили очаги гамма H2AX и 53BP1.

Инкубируют один препарат клеток с мышиным моноклональным антителом против гамма H2AX, а другой препарат клеток с мышиным моноклональным антителом против гамма H2AX и поликлональным кроличьим антителом против 53BP1 в течение ночи при 4 градусах Цельсия.

Настоятельно рекомендуется использовать проверенные антитела против гамма H2AX и анти-53BP1.

После инкубации аккуратно промойте клетки три раза 30 миллилитрами 2% блокирующего раствора в течение каждых пяти минут на лабораторном шейкере.

Затем инкубируют первый препарат клеток с конъюгированным с Alexa488 козьим вторичным антителом против мыши, разведенным 1 к 500 в 2% блокирующем растворе. Инкубируйте второй препарат клеток с конъюгированным с Alexa488 козьим вторичным антителом против мыши и конъюгированным с Alexa555 ослиным вторичным антителом против кролика, разведенным 1 к 500 в 2% блокирующем растворе.

Аккуратно промойте клетки три раза 30 миллилитрами PBS на лабораторном шейкере. Снимите PBS и установите элементы с монтажным материалом. Осторожно наденьте покровное стекло поверх монтажного носителя, чтобы в него не застряли пузырьки воздуха. Подождите не менее трех часов, пока монтажная среда затвердеет, прежде чем анализировать клетки с помощью флуоресцентной микроскопии.

Наконец, проанализируйте очаги гамма-излучения H2AX и 53BP1 в ядрах клеток с помощью флуоресцентного микроскопа, оснащенного фильтрами для DAPI, Alexa488 и Cy3 во время визуализации со 100-кратным увеличением объектива.

08:31

Характеризуя процессов репарации ДНК в переходных и Long-lasting двухнитевые разрывы ДНК по микроскопии иммунофлуоресценции

Похожие видео

0 Просмотры

07:17

Иммунофлуоресценция Маркировка человека и Минин Нейтрофил Внеклеточные ловушки в парафин-встроенные ткани

Похожие видео

0 Просмотры

07:55

Визуализация взаимодействия белков ДНК по иммунофлюоресценции

Похожие видео

0 Просмотры

13:10

Анализ ДНК двухцепочечной Break (DSB) Ремонт в клетках млекопитающих

Похожие видео

0 Просмотры

08:56

В пробирке Ассамблеи Semi-искусственные молекулярные машины и его использование для обнаружения повреждений ДНК

Похожие видео

0 Просмотры

10:24

Двух-и трехмерных изображений живых клеток ДНК, белков реакции на повреждения

Похожие видео

0 Просмотры

05:42

Иммунофлуоресцентная визуализация белковых взаимодействий репарации ДНК

Похожие видео

0 Просмотры

08:18

Применение лазерной микро облучения для рассмотрения одного и двойной стренги перерыв ремонт в клетках млекопитающих

Похожие видео

0 Просмотры

10:47

Иммунофлуоресценции γH2AX и 53BP1 для анализа формирования и ремонт двухнитевые разрывы ДНК

Похожие видео

0 Просмотры

12:29

Расследование белка вербовки для поражения ДНК с помощью 405 нм лазер микро облучения

Похожие видео

0 Просмотры

Последнее обновление: 1 августа 2026