$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Для визуализации специфических белков ответа на повреждение ДНК при двухцепочечном разрыве ДНК, DSB, участках с помощью иммунофлуоресцентной микроскопии, начинают со предметных стекол, содержащих монослои мононуклеарных клеток человека с DSB. Фиксируют клетки параформальдегидом.
Обработайте неионогенным моющим средством, проникающим мембранами для доступа к внутриклеточным мишеням. Добавьте белоксодержащий блокирующий раствор, блокирующий неспецифические сайты связывания клеток. Инкубируйте с первичными антителами, которые связываются с белками целевого ответа.
Обрабатывайте смесью вторичных антител, помеченных различными флуорофорами, чтобы специфически связываться с их соответствующими первичными антителами, прикрепленными к белкам. Окрашивание ДНК с помощью DAPI. Добавьте монтажную среду; Установите покровное стекло.
Во время флуоресцентной микроскопии падающий световой пучок достигает возбуждающего фильтра, пропуская свет с определенной длиной волны возбуждения. Достигая дихроичного зеркала — светоделителя — возбуждающий свет избирательно отражается в сторону линзы объектива, которая фокусирует свет на образце.
Падающий возбуждающий свет возбуждает электроны флуорофора до более высокого энергетического состояния. Возвращаясь в основное состояние, электроны излучают свет на более длинной длине волны, собираемый линзой объектива и возвращающийся обратно в дихроичное зеркало.
Зеркало позволяет излучаемому флуоресцентному свету проходить через эмиссионный фильтр, который позволяет только желаемому флуоресцентному свету достигать детектора. Обработайте изображения. Проанализируйте флуоресцентные очаги разного цвета, чтобы визуализировать ко-локализацию белков ответа на повреждение ДНК в сайте DSB.
Получить два цитоспина с мононуклеарными клетками образцов пациента путем центрифугирования 1 х 105 клеток для каждого препарата. Зафиксируйте клетки 200 микролитрами 4% PFA на 10 минут.
После фиксации аккуратно трижды промойте клетки 30 миллилитрами PBS по пять минут каждая на шейкере. Затем проникните в клетки 200 микролитрами 0,1% октоксинола-9 в течение 10 минут. Аккуратно промойте клетки три раза 30 миллилитрами 5% блокирующего раствора в течение пяти минут каждая на лабораторном шейкере. Заблокируйте клетки в 30 миллилитрах свежего 5% блокирующего раствора на один час.
Фиксация и пермеабилизация клеток 4% параформальдегида и 0,1% октоксинола-9 отчетливо сохранили очаги гамма H2AX и 53BP1.
Инкубируют один препарат клеток с мышиным моноклональным антителом против гамма H2AX, а другой препарат клеток с мышиным моноклональным антителом против гамма H2AX и поликлональным кроличьим антителом против 53BP1 в течение ночи при 4 градусах Цельсия.
Настоятельно рекомендуется использовать проверенные антитела против гамма H2AX и анти-53BP1.
После инкубации аккуратно промойте клетки три раза 30 миллилитрами 2% блокирующего раствора в течение каждых пяти минут на лабораторном шейкере.
Затем инкубируют первый препарат клеток с конъюгированным с Alexa488 козьим вторичным антителом против мыши, разведенным 1 к 500 в 2% блокирующем растворе. Инкубируйте второй препарат клеток с конъюгированным с Alexa488 козьим вторичным антителом против мыши и конъюгированным с Alexa555 ослиным вторичным антителом против кролика, разведенным 1 к 500 в 2% блокирующем растворе.
Аккуратно промойте клетки три раза 30 миллилитрами PBS на лабораторном шейкере. Снимите PBS и установите элементы с монтажным материалом. Осторожно наденьте покровное стекло поверх монтажного носителя, чтобы в него не застряли пузырьки воздуха. Подождите не менее трех часов, пока монтажная среда затвердеет, прежде чем анализировать клетки с помощью флуоресцентной микроскопии.
Наконец, проанализируйте очаги гамма-излучения H2AX и 53BP1 в ядрах клеток с помощью флуоресцентного микроскопа, оснащенного фильтрами для DAPI, Alexa488 и Cy3 во время визуализации со 100-кратным увеличением объектива.