$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Некоторые грамотрицательные бактериальные патогены контактируют с клетками-хозяевами и используют системы секреции для введения эффекторных белков, облегчая вторжение в клетки.
Чтобы доставить эффекторные белки в клетки млекопитающих in vitro, пипетируйте клетки млекопитающих в охлажденную кювету. Добавьте бактериальные эффекторные белки, меченные стрептавидин-связывающим пептидом, и перемешайте.
Проводят электропорацию. Во время прогона короткие электрические импульсы разрушают липидный бислой мембраны клетки-хозяина, образуя переходные поры, облегчая клеточное проникновение эффекторных белков. Поместите клетки на стеклянную пластину, содержащую среду, что позволит клеткам восстановиться и прилипнуть к пластине. Поры снова запечатываются, захватывая белки внутри.
После восстановления клеток фиксируют и проникают в клетки для доступа антител к внутриклеточным мишеням. Инкубируйте с содержащим белок блокирующим раствором для предотвращения связывания неспецифических антител. Добавьте первичные антитела, которые специфически связываются со стрептавидин-связывающей пептидной меткой на внутриклеточных эффекторных белках.
Для визуализации введите меченные флуорофорами вторичные антитела, которые связываются с первичными антителами, связанными с эффекторными белками. Добавьте фторофор-конъюгированный агглютинин зародышей пшеницы и DAPI для окрашивания гликопротеинов и ДНК клеточных мембран соответственно.
С помощью конфокального микроскопа визуализируйте флуоресцентные сигналы от эффекторных белков, клеточных мембран и ДНК.
Успешно электропорированные клетки демонстрируют значимые внутриклеточные флуоресцентные сигналы от эффекторных белков, что свидетельствует об их внутриклеточной локализации.
Чтобы начать эту процедуру, перелейте 400 микролитров клеточной суспензии в предварительно охлажденную кювету, затем добавьте 20 микрограммов выбранного белка, чтобы достичь конечной концентрации 50 микрограммов на миллилитр. Осторожно взбейте кювету, около 10 раз, чтобы перемешать и не повредить клетки. После этого высушите внешнюю сторону кюветы бумажным полотенцем, чтобы избежать образования электрической дуги в электропораторе.
Поместите образец в электропоратор и установите его на 0,3 киловольта на 1,5–1,7 миллисекунды. Сразу после электропорации осторожно поверните кювету, около 10 раз, чтобы тщательно перемешать образец, прежде чем приступить к фиксации и иммунофлуоресцентному окрашиванию или аффинной очистке.
После четырех часов восстановления после электропорации промойте клетки стерильным ПБС. Затем зафиксируйте ячейки в 100% метаноле на две минуты при комнатной температуре. Впоследствии промойте клетки стерильным ПБС еще три раза. Пермеабилизируйте клетки 0,4% Triton X-100 в PBS в течение 15 минут. Отрегулируйте длину пермеабилизации и силу Triton X-100 в соответствии с эпитопом и расположением целевого белка. Затем заблокируйте клетки 5% BSA в PBS на один час при комнатной температуре.
После этого вымойте их три раза с PBS. Затем инкубируйте их с первичным антителом в растворе, связывающем антитела, в течение ночи, при температуре 4 градуса Цельсия с легким покачиванием.
На следующий день промойте клетки еще четыре раза PBS. Затем инкубируйте их с соответствующими флуоресцентно-конъюгированными вторичными антителами в растворе, связывающем антитела. При необходимости добавьте другие красители, такие как 5 микромолярных агглютинина зародышей пшеницы или WGA, конъюгированные с Alexa 647 или DAPI в течение одного часа при комнатной температуре и защищенные от света. Затем промойте клетки PBS пять раз и храните при температуре 4 градуса Цельсия в защищенном от света месте, пока они не будут готовы к визуализации.